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反復凍融法輔助提取油菜花粉多糖的研究

2013-09-05 05:11:52郭衛蕓劉海英白玉敏楊公明
食品研究與開發 2013年13期
關鍵詞:提取

郭衛蕓,劉海英,白玉敏,楊公明

(1.許昌學院食品科學與工程學院,河南許昌 461000;2.西華大學生物工程學院,四川成都 610039;3.華南農業大學食品學院,廣東廣州 510642)

反復凍融法輔助提取油菜花粉多糖的研究

郭衛蕓1,劉海英1,白玉敏2,楊公明3,*

(1.許昌學院食品科學與工程學院,河南許昌 461000;2.西華大學生物工程學院,四川成都 610039;3.華南農業大學食品學院,廣東廣州 510642)

摘 要:通過對加水量、凍結時間、解凍溫度、凍融次數等進行單因素試驗及正交試驗,驗證反復凍融法對油菜花粉中多糖的輔助提取效果,確定最佳處理條件為:加水量40 mL/100 g,凍結時間4 h,解凍溫度80℃,凍融次數2次,在此條件下,油菜花粉可溶性多糖溶出率可達到21.79%。

關鍵詞:油菜花粉;多糖;反復凍融;提取

油菜為十字花科蕓苔屬中用于采籽榨油的植物,其花粉呈黃色,多數為近球形或長球形,表面呈顆粒狀,形體大且外壁薄、清香、無怪味[1]。花粉營養豐富,碳水化合物占40%~50%,其中絕大多數是多糖,長期合理食用花粉,可明顯增強體質、提高免疫力、延緩衰老[2]。我國是世界養蜂大國,蜂花粉年產量約1 500 t,居世界首位,但花粉資源利用率卻很低,開發花粉食品具有廣闊的市場前景和巨大的潛在價值[3]。由于花粉壁結構復雜,組織致密,對花粉營養物質的溶出起到較強的阻礙作用[4-6]。因此,研究合適的破壁工藝,對于提高多糖的得率意義重大。本研究主要驗證反復凍融法對花粉破壁的有效性,并試驗確定合適的處理條件。

1 材料與方法

1.1 材料與設備

油菜花粉:許昌地區市售;葡萄糖(標準品);苯酚(分析純);硫酸(分析純);95%的乙醇(分析純);YP2002型電子分析天平、BlueStar型紫外-可見分光光度計:萊伯泰科有限公司;TG16-WS臺式離心機:湘儀離心機儀器有限公司。

1.2 方法

1.2.1 流程及操作要點

1.2.1.1 流程

油菜花粉→加水溶脹→慢速冷凍→水浴中快速解凍→加水→攪拌→靜置1 h→離心→取上清液→定容[7]→測定多糖

1.2.1.2 操作要點

1)油菜花粉

要求油菜花粉籽粒飽滿,色澤金黃,無蟲蛀,無霉斑,并去除砂粒等雜質。各組取5 g花粉置于準備好的保鮮袋上。

2)加水溶脹

按照各組試驗要求快速準確的加一定量水,用保鮮袋將花粉包住密封,并輕輕揉揉之后室溫下放置30 min,使水分充分滲入到花粉中。

3)反復凍融

按照各組試驗要求在冰箱中緩慢冷凍一定時間后,取出,迅速放在水浴鍋中溶解,如此反復。

4)可溶性糖的溶出

將反復凍融后的花粉全部取出置于離心管中,加水15 mL并將花粉用玻璃棒輕輕搗碎,使溶液充分混合,室溫下放置1 h。

5)離心

以3 000 r/min的速度對上述溶液離心20 min。

6)定容

取離心后的上清液,定容至250 mL。

1.2.2 多糖含量的測定

利用苯酚-硫酸法測定多糖[7-9]。

1.2.2.1 標準曲線的繪制

準確吸取葡萄糖標準溶液(0.1 mg/mL)0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2、1.4 mL,分別置于試管中,各加入蒸餾水,使其體積為2.0 mL,再加入6%苯酚1.0 mL,并迅速滴加濃硫酸5.0 mL,靜置10 min,充分振蕩搖勻之后靜置20.0 min。另外以蒸餾水2.0 mL,加苯酚和濃硫酸,同上述操作做空白對照,于波長490 nm處測吸光度值,得標準曲線,如圖1。

圖1 標準曲線Fig.1 Standard curve

1.2.2.2 可溶性多糖溶出率測定

按1.2.1工藝處理樣品后,將得到的花粉上清液進行100倍稀釋,取稀釋后的樣品2.0 mL,經上述處理后測定吸光值,并計算可溶性多糖溶出率。

式中:A為試樣的吸光度;V為樣液的體積,mL;M為樣品質量,g。

2 結果與分析

2.1 加水量對油菜花粉可溶性多糖的溶出率的影響

共設 5個加水量處理,分別為 10、20、30、40、50 mL/100 g,每個處理重復2次。并在凍結時間3 h、凍結溫度-30℃、解凍溫度80℃、溶解時間20 min及反復凍融3次的條件下凍融,測定可溶性多糖溶出率,結果如圖2。

圖2 加水量對油菜花粉可溶性多糖溶出率的影響Fig.2 Effect of water addition to content of soluble polysaccharides

由圖2可以看出,可溶性多糖的溶出率隨加水量的增加先呈快速上升,后趨于平緩的趨勢。這主要是因為花粉中的水凍結形成冰晶體,加熱融化可以產生張力,從而破壞花粉壁的組織結構,而細胞內外的水分直接關系到冰晶體量的大小。當加水量為30 mL/100 g時可溶性多糖達到20.55%,加水量再繼續增加,可溶性多糖溶出率變化不大,說明在加水量為30 mL/100 g時水分完全填充了細胞內部間隙,導致在凍融過程中冰晶體對細胞的機械作用發揮到最大。

2.2 解凍溫度對油菜花粉可溶性多糖的溶出率的影響

共設5個解凍溫度處理,分別為60、70、80、90、100℃,每個處理重復2次。在加水量為20mL/100 g、凍結時間3 h、凍結溫度-30℃、溶解時間20 min及反復凍融3次的情況下凍融,測定可溶性多糖溶出率,結果如圖3。

由圖3可知,解凍溫度對油菜花粉可溶性糖溶出率影響較顯著。在溫度低于80℃時,可溶性多糖溶出率隨著溫度的升高而升高。當溫度超過了80℃后,可溶性多糖溶出率急劇減少,有人在進行烏龍茶多糖提取研究時也得到了相似的結果[10]。分析認為,溫度過高時,可能會使花粉多糖降解。而溫度太低,細胞破壁率低,多糖溶出不完全。可以認為油菜花粉破壁的解凍溫度在80℃較為合適。

圖3 解凍溫度對油菜花粉可溶性多糖溶出率的影響Fig.3 Effect of defrosted temperature to content of soluble polysaccharides

2.3 凍融次數對油菜花粉多糖溶出率的影響

共設 5個凍融次數處理,分別為 0、2、3、4、5次,每個處理設2個重復。在加水量為20 mL/100 g、凍結時間3 h、凍結溫度-30℃、溶解時間20 min及解凍溫度80℃的條件下進行凍融,測定可溶性多糖溶出率,得結果如圖4。

圖4 凍融次數對油菜花粉可溶性多糖溶出率的影響Fig.4 Effect of repeated freezing and melting times to content of soluble polysaccharides

根據圖4可知,隨著凍融次數的增多,油菜花粉可溶性多糖的溶出率逐漸增大。但開始時油菜花粉可溶性多糖的溶出率增大的幅度較大,在超過3次后,其多糖溶出率增大的幅度較緩慢。分析認為,經過3次凍融,大部分油菜花粉的細胞結構已被破壞。

2.4 凍結時間對油菜花粉多糖溶出率的影響

共設 5 個凍結時間處理,分別為 0、2、3、4、5 h,每個處理設2個重復。在加水量為20 mL/100 g、凍結溫度-30℃、溶解時間20 min、解凍溫度80℃及反復凍融3次、的條件下凍融,測定可溶性多糖溶出率,結果如圖5。

根據圖5可知,在試驗條件下,隨著凍結時間的增多,油菜花粉可溶性多糖的溶出率逐漸增大,當凍結時間超過3 h后,多糖溶出率增大的幅度開始緩慢。分析原因可能是在凍結3 h時,油菜花粉的細胞壁已被破壞,致使大部分可溶性多糖可以突破細胞壁三維網狀結構的束縛而溶出。凍結時間加長,花粉多糖溶出率增加也緩慢。

圖5 凍結時間對油菜花粉可溶性多糖溶出率的影響Fig.5 Effect of freezing time to content of soluble polysaccharides

2.5 正交試驗

為選擇反復凍融法破壁油菜花粉的最佳工藝條件,設計以加水量、解凍溫度、凍融次數、凍結時間為考察因素,以油菜花粉可溶性多糖的溶出率為考查目標的L9(34)正交試驗,因素水平見表1。

表1 正交試驗因素水平表Table 1 Factors and levels of the orthogonal test

經過試驗,結果見表2。

表2 正交試驗結果Table 2 Result of orthogonal test

由表2可知各因素對油菜花粉可溶性多糖溶出率的影響作用是不同的,4個因素對油菜花粉可溶性多糖溶出率的影響大小順序依次為:B>C>A>D。經過極差分析發現,反復凍融法對油菜花粉破壁的最佳工藝組合為A3B3C1D3,即:加水量40 mL/100 g,凍結時間4 h,解凍溫度80℃,凍融次數2次時,油菜花粉可溶性多糖溶出率較高。在此工藝條件下做驗證試驗,得到3組數據:21.82%、21.75%、21.80%,驗證的平均值為21.79%。

3 結論

1)各因素對油菜花粉可溶性多糖溶出率的影響順序為:凍結時間>凍融次數>解凍溫度>加水量。

2)反復凍融法破壁油菜花粉最佳的工藝組合是:加水量40 mL/100 g,凍結時間4 h,凍融次數2次,解凍溫度80℃,在此條件下,油菜花粉可溶性多糖溶出率可達到21.79%。

[1]王娟,余少文.花粉的營養成分、結構及破壁方法[J].食品研究與開發,2007,28(8):7

[2]何余堂,解玉梅,趙麗紅,等.玉米花粉功能食品的研究與開發[J].食品科學,2007,28(9):617-621

[3]朊征,鄧擇元,吳龍耀,等.HPLC測定油菜花粉中黃酮含量及六種破壁方法對黃酮提取的影響[J].食品科學,2008,29(10):455-458

[4]唐維,張星海.花粉破壁方法的進展[J].食品與發酵工業,2003,29(2):86-92

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[6]楊曉萍,余志勤.油菜花粉破壁方法研究[J].華中農業大學學報,2004,23(6):671-672

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[10]周向軍,高義霞,袁毅君,等.烏龍茶多糖提取工藝及抗氧化作用研究[J].中國釀造,2011,233(8):80-84

Technics of Extracting Polysaccharides from Rapeseed Pollen with Repeated Freezing and Thawing Method

GUO Wei-yun1,LIU Hai-ying1,BAI Yu-min2,YANG Gong-ming3,*
(1.College of Food Chemistry and Engineering,XuChang University,Xuchang 461000,Henan,China;2.School of Bioengineering ,Xihua Ucniversity,Chengdu 610039,Sichuan,China;3.College of Food Science,South China Agricultual University,Guangzhou 510642,Guangdong,China)

Abstract:Rapeseed pollen was taken as the main raw material and repeated freezing and thawing method was adopted to break the wall of the pollen.The effects on the wall-broken of the rapeseed pollen made by the water content, freeze time, defrosting degree, freezing-thawing times was studied.Through the orthogonal test, the water content was 40 mL/100 g,the freeze time was 4 hours,the defrosting was 80℃,the freezing-thawing was twice.Under the optimal conditions,the dissolving rate of soluble polysaccharide of the rapeseed pollen was 21.79%.

Key words:rapeseed pollen;polysaccharides;repeated freezing and thawing method;extracting

DOI:10.3969/j.issn.1005-6521.2013.13.007

許昌學院優秀青年骨干教師資助項目;許昌學院科研基金(2013063)

郭衛蕓(1981—),男(漢),講師,碩士,研究方向:農產品貯藏與加工。

2012-10-29

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