于澤洋,于 濤,趙長(zhǎng)福,王志申
(吉林大學(xué)中日聯(lián)誼醫(yī)院 骨科,吉林 長(zhǎng)春130033)
骨折愈合是一個(gè)極其復(fù)雜的骨再生過(guò)程。其修復(fù)的過(guò)程就是正常胚胎骨發(fā)生過(guò)程的重演,是一系列的細(xì)胞和細(xì)胞外基質(zhì)的變化過(guò)程。骨折愈合機(jī)制受到機(jī)體及局部環(huán)境的多層面、多途徑的調(diào)節(jié),在不同的愈合階段有不同的細(xì)胞參與,且有許多生長(zhǎng)因子表達(dá)水平的改變,從而影響骨折愈合速度[1-3]。
神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(neurot rophic factors,NTFs)是由多種細(xì)胞所分泌的一類(lèi)對(duì)中樞和外周神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)揮營(yíng)養(yǎng)作用的非常規(guī)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),通常為大分子蛋白質(zhì)或小分子肽類(lèi)物質(zhì)[4]。它們可調(diào)節(jié)細(xì)胞的生長(zhǎng)分化,促進(jìn)和支持靶細(xì)胞的存活、生長(zhǎng)及發(fā)育,調(diào)節(jié)神經(jīng)系統(tǒng)的代謝和功能活動(dòng),它們對(duì)神經(jīng)系統(tǒng)疾病及神經(jīng)系統(tǒng)損傷后的再生修復(fù)也有著重要作用。
近來(lái),隨著研究的深入,不斷地發(fā)現(xiàn)有新的種類(lèi)的神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子。目前關(guān)于它們的分類(lèi)及歸屬仍不十分明確,研究比較集中的主要有神經(jīng)生長(zhǎng)因子(nerve growth factor,NGF),腦源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(brain derived neurot rophic factor,BDNF),神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)素(neurot rophin,NTs),睫狀神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(ciliary neurot rophic factor,CNTF),膠質(zhì)源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(glial derived neurot rophic factor,GDNF),胰島素樣生長(zhǎng)因子(insulin-like growth factor,IGF),轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子(transforming growth factor,TGFs),成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(fibroblast growth factor,F(xiàn)GF),表皮生長(zhǎng)因子(epidermal growth factor,EGF),血小板源性生長(zhǎng)因子(platelet derived growth factor,PDGF),血管內(nèi)皮細(xì)胞生長(zhǎng)因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)等。
對(duì)骨折愈合中神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子表達(dá)的研究表明,骨痂形成過(guò)程中有多種NTFs表達(dá),包括BDNF,NGF和神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子23(NT23)。骨形成細(xì)胞有NTFs受體trkA 和trkC的表達(dá)[5-7],提示 NTFs涉及骨形成的調(diào)節(jié),但機(jī)制不清。目前已知,NGF對(duì)骨折修復(fù)的研究始于Eppley等人,他們?cè)趹?yīng)用NGF修復(fù)兔下頜神經(jīng)缺損的實(shí)驗(yàn)中,不僅證實(shí)NGF能促進(jìn)神經(jīng)軸突再生,同時(shí)發(fā)現(xiàn)在再生軸突周?chē)行律?lèi)骨質(zhì)生成[8]。BDNF是NTFs家族中重要成員,是由神經(jīng)元的靶細(xì)胞分泌,逆向營(yíng)養(yǎng)神經(jīng)元,對(duì)神經(jīng)系統(tǒng)具有廣泛作用,尤其可以促進(jìn)感覺(jué)神經(jīng)元譜系分化,維持運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元的存活,對(duì)神經(jīng)細(xì)胞的生長(zhǎng)發(fā)育及保護(hù)修復(fù)有重要作用,其作用范圍甚至超過(guò)NGF。在骨折愈合過(guò)程中,神經(jīng)支配和調(diào)節(jié)也有著明顯的影響。腦外傷病人骨折愈合較快;此外,一些神經(jīng)疾病患者的骨骼外成骨量也較多。
因此,本實(shí)驗(yàn)圍繞神經(jīng)因素應(yīng)用于干細(xì)胞工程與骨組織工程的可行性方面,從體外實(shí)驗(yàn),對(duì)神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子與骨形成的關(guān)系進(jìn)行討論。探討骨折修復(fù)作用中BDNF對(duì)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的成骨細(xì)胞誘導(dǎo)分化、損傷修復(fù)的作用。證實(shí)神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)對(duì)骨形成的作用,為神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因素應(yīng)用于骨組織工程種子細(xì)胞研究打下基礎(chǔ)。
1.1 pECFP-C1-BDNF重組質(zhì)粒載體的構(gòu)建
EcoRⅠ及SalⅠ雙酶切已構(gòu)建的pUCm-T-BDNF質(zhì)粒及pECFP-C1質(zhì)粒,瓊脂糖電泳鑒定后回收純化目的片段。T4DNA連接酶作用下將測(cè)序正確的BDNF基因片段與雙酶切后的載體質(zhì)粒4℃連接過(guò)夜。轉(zhuǎn)化感受態(tài)大腸桿菌DH5α。小量抽提質(zhì)粒,EcoRⅠ/SalⅠ及EcoRⅠ/BamHⅠ兩種雙酶切方案進(jìn)行鑒定。
1.2 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的提取與培養(yǎng)
無(wú)菌條件下獲取的大鼠骨髓,吹打制成均勻的細(xì)胞懸液。將骨髓細(xì)胞懸液加于Percoll淋巴細(xì)胞分離液液面上(2∶1比例)。3 000rpm離心10min。去上清,吸取中間白膜層,加入PBS清洗2遍。1 800 r/min,離心10min。用含10%FBS的L-DMEM培養(yǎng)基懸浮細(xì)胞,計(jì)數(shù),將細(xì)胞密度調(diào)至2×106/ml,接種于25mm2培養(yǎng)瓶中。置于CO2培養(yǎng)箱中,37℃、5%CO2條件下培養(yǎng)。每隔3d換液。
原代細(xì)胞長(zhǎng)至80%-90%匯合時(shí),進(jìn)行傳代培養(yǎng)。胰酶消化后,加入含10%FCS的L-DMEM培養(yǎng)基重新懸浮,按1∶2比例傳代接種培養(yǎng)。
1.3 pECFP-C1-BDNF質(zhì)粒轉(zhuǎn)染骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞
將細(xì)胞等量分到6孔培養(yǎng)板中培養(yǎng),每孔約5×105個(gè)/ml,直至細(xì)胞密度約80%左右時(shí)進(jìn)行轉(zhuǎn)染。將FuGENE HD轉(zhuǎn)染試劑、無(wú)血清和抗生素的培養(yǎng)液恢復(fù)至室溫。轉(zhuǎn)染試劑與質(zhì)粒以3∶2的比例混合。轉(zhuǎn)染48h后收集細(xì)胞,以相應(yīng)的未經(jīng)轉(zhuǎn)染的細(xì)胞或轉(zhuǎn)染相應(yīng)的空質(zhì)粒的細(xì)胞作為陰性對(duì)照。Western Blot檢測(cè)轉(zhuǎn)染后BMSCs BDNF的表達(dá)。
1.4 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞向成骨細(xì)胞的誘導(dǎo)及鑒定
取P4代BMSCs,細(xì)胞正常消化,接種于6孔板內(nèi),接種密度為1×104個(gè)/ml,正常培養(yǎng)24h。轉(zhuǎn)染pECFP-C1-BDNF質(zhì)粒48h后,然后更換成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基,每2-3天換液一次,連續(xù)誘導(dǎo)3周。Von Kossa染色。將成骨誘導(dǎo)后的細(xì)胞,棄去培養(yǎng)基,PBS沖洗3遍,95%乙醇室溫固定10min;放入2%硝酸銀,置于強(qiáng)光處作用15-60min;蒸餾水沖洗3遍,2%硫代硫酸鈉還原1h;流水沖洗5min,1%伊紅復(fù)染5min,沖洗,顯微鏡觀察。
1.5 Western Blot檢測(cè)
收集各組細(xì)胞總蛋白。制備12%SDS-聚丙烯酰胺凝膠,取100μg總蛋白上樣,電泳1.5h;室溫、恒壓220V條件下,半干轉(zhuǎn)移法轉(zhuǎn)膜1h。PBST配制的5%脫脂奶粉溶液用作封閉液,室溫封閉1h;兔抗BDNF多克隆抗體(1∶1 000)4℃孵育過(guò)夜;PBST漂洗3次,每次10min;加入HRP-抗兔IgG(1∶5 000)孵育1h,PBST 洗3次,每次10min;PBS洗膜10min;ECL反應(yīng)3min后,暗室中X光片曝光;室溫顯影、定影。用凝膠成像系統(tǒng)對(duì)膠片進(jìn)行薄層密度掃描,記錄相應(yīng)條帶的透射光積分光密度(IOD)值反映蛋白含量。
1.6 堿性磷酸酶的檢測(cè)
經(jīng)重組質(zhì)粒pECFP-C1-BDNF轉(zhuǎn)染的細(xì)胞與未轉(zhuǎn)染的細(xì)胞分別制成5×104個(gè)/孔的密度,鋪于24孔板中,每孔1ml,檢測(cè)堿性磷酸酶含量的變化情況。以未轉(zhuǎn)染的細(xì)胞作對(duì)照。采用堿性磷酸酶定量檢測(cè)試劑盒檢測(cè)培養(yǎng)液中堿性磷酸酶的含量。
2.1 pECFP-C1-BDNF重組質(zhì)粒載體的構(gòu)建
pUCm-T-BDNF克隆后經(jīng)EcoRⅠ及SalⅠ雙酶切后得到BDNF基因目的片段,回收純化測(cè)序結(jié)果正確無(wú)突變或缺失。重組質(zhì)粒pECFP-C1-BDNF經(jīng)EcoRⅠ/SalⅠ及EcoRⅠ/BamHⅠ兩種雙酶切方案鑒定、測(cè)序后得出相同結(jié)果(見(jiàn)圖1.A,B)。
2.2 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的分離和培養(yǎng)
倒置顯微鏡下觀察,原代細(xì)胞接種24h后,部分細(xì)胞貼壁,貼壁細(xì)胞呈長(zhǎng)梭型。接種3d后,長(zhǎng)梭形細(xì)胞增多(圖2.A)。培養(yǎng)5d左右,細(xì)胞胞體變大呈典型成纖維細(xì)胞樣,大量細(xì)胞向外放射狀生長(zhǎng),細(xì)胞排列整齊,克隆顯著增多并融合成片。原代細(xì)胞培養(yǎng)7-10d左右即可傳代。培養(yǎng)在25cm2培養(yǎng)瓶中,第3代以上的細(xì)胞按1∶2比例傳代6d可長(zhǎng)至80%左右,第20代左右的細(xì)胞按1∶3比例傳代僅3d可達(dá)90%以上匯合。

圖1 A:pECFP-C1-BDNF重組質(zhì)粒經(jīng)EcoRⅠ/SalⅠ酶切鑒定。B:pECFP-C1-BDNF經(jīng)EcoRⅠ/BamHⅠ酶切鑒定

圖2 人骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞形態(tài)圖
2.3 pECFP-C1-BDNF質(zhì)粒轉(zhuǎn)染骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞
熒 光 顯 微 鏡 下 可 見(jiàn) pECFP-C1-BDNF 轉(zhuǎn) 染BMSCs效率可達(dá)80%左右(圖3.A,B)。Western blot檢測(cè)結(jié)果顯示,pECFP-C1-BDNF轉(zhuǎn)染BMSCs 48h表達(dá)分子量約為30kD的融合蛋白條帶(圖3.C)。

圖3 A,B:pECFP-C1-BDNF重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染BMSCs。C:Western blot檢測(cè)pECFP-C1-BDNF轉(zhuǎn)染BMSCs后BDNF蛋白表達(dá)。
2.4 轉(zhuǎn)染pECFP-C1-BDNF質(zhì)粒的BMSCs向成骨細(xì)胞誘導(dǎo)分化
轉(zhuǎn)染pECFP-C1-BDNF與未轉(zhuǎn)染質(zhì)粒的BMSCs組均加入成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)基培養(yǎng)。細(xì)胞誘導(dǎo)成骨培養(yǎng)5-8天后,細(xì)胞有長(zhǎng)梭形逐漸變成多角形或不規(guī)則狀,并且體積增大。誘導(dǎo)21天后,有鈣結(jié)節(jié)產(chǎn)生。鈣結(jié)節(jié)的形成為成骨細(xì)胞特有。我們利用Von kussa染色礦化結(jié)節(jié)的經(jīng)典方法,細(xì)胞鈣結(jié)節(jié)的主要成分鈣鹽與硝酸銀復(fù)分解形成可被還原的銀鹽,在強(qiáng)光或式紫外光下生成黑色金屬銀。因此在染色結(jié)束后,粉紅色背景上有黑色顆粒的產(chǎn)生。
隨機(jī)16個(gè)視野中觀察,結(jié)果發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染pECFPC1-BDNF質(zhì)粒組,細(xì)胞鈣結(jié)節(jié)的Von kussa染色黑色顆粒含量和范圍都較未轉(zhuǎn)染質(zhì)粒組的多,初步證明了,轉(zhuǎn)染pECFP-C1-BDNF質(zhì)粒后BMSCs向成骨細(xì)胞誘導(dǎo)分化的效率比未轉(zhuǎn)染質(zhì)粒的BMSCs較高。BDNF在細(xì)胞中的表達(dá)有利于BMSCs向成骨細(xì)胞的誘導(dǎo)分化。

圖4 轉(zhuǎn)染pECFP-C1-BDNF質(zhì)粒的BMSCs向成骨細(xì)胞誘導(dǎo)分化后鈣結(jié)節(jié)形成的Von kussa染色圖
2.5 堿性磷酸酶合成變化
當(dāng)誘導(dǎo)培養(yǎng)至第9天時(shí),轉(zhuǎn)染重組質(zhì)粒組BMSCs細(xì)胞與未轉(zhuǎn)染組細(xì)胞堿性磷酸酶含量與對(duì)照組比較均顯著升高。未轉(zhuǎn)染組細(xì)胞堿性磷酸酶含量為(4.78±0.30)IU/ml;而轉(zhuǎn)染的BMSCs細(xì)胞堿性磷酸酶含量為(5.88±0.19)IU/ml。提示pECFP-C1-BDNF轉(zhuǎn)染BMSCs細(xì)胞后,BDNF蛋白的表達(dá)使細(xì)胞更易于向成骨細(xì)胞誘導(dǎo)分化,使細(xì)胞所分泌的堿性磷酸酶量呈顯著性升高(P<0.05)。

圖5 轉(zhuǎn)染pECFP-C1-BDNF質(zhì)粒后BMSCs向成骨細(xì)胞誘導(dǎo)時(shí)堿性磷酸酶合成含量的變化
骨折愈合是指骨折斷端間的組織修復(fù)反應(yīng),是成骨細(xì)胞、破骨細(xì)胞及其他多種細(xì)胞和細(xì)胞因子參與的復(fù)雜過(guò)程。骨折不同的愈合階段有不同的細(xì)胞及細(xì)胞因子參與,骨形成過(guò)程受多種因素調(diào)控[5-7]。
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)是骨髓內(nèi)除造血干細(xì)胞之外的一類(lèi)具有多向分化潛能的成體干細(xì)胞,是骨髓基質(zhì)的重要組成成分[9-11]。在一定的誘導(dǎo)條件下,BMSCs具有向成骨細(xì)胞,軟骨細(xì)胞,神經(jīng)細(xì)胞,脂肪細(xì)胞,心肌細(xì)胞等多向分化的能力,并可通過(guò)分泌一些可溶解因子,如腦源性神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(BDNF),bFGF和睫狀神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子(CNTF)等促進(jìn)神經(jīng)再生。BMSCs由于具有多分化潛能,容易在體外擴(kuò)增,容易轉(zhuǎn)染等特點(diǎn)而成為基因治療的良好靶細(xì)胞。BMSCs已經(jīng)在眾多臨床前期實(shí)驗(yàn)中被用于修復(fù)各種組織損傷。已有研究表明,骨折治療中,導(dǎo)入NGF-BMSC,不僅能誘導(dǎo)BMSC向成骨細(xì)胞轉(zhuǎn)變,它分泌的NGF還能加速骨折愈合,從而達(dá)到更理想的效果。Eppley等發(fā)現(xiàn),NGF具有骨折修復(fù)的潛能[8,12,13]。
BDNF是NTFs家族中重要成員,是由神經(jīng)元的靶細(xì)胞分泌,逆向營(yíng)養(yǎng)神經(jīng)元,對(duì)神經(jīng)系統(tǒng)具有廣泛作用,尤其可以促進(jìn)感覺(jué)神經(jīng)元譜系分化,維持運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元的存活,對(duì)神經(jīng)細(xì)胞的生長(zhǎng)發(fā)育及保護(hù)修復(fù)有重要作用,其作用范圍甚至超過(guò)NGF。
本實(shí)驗(yàn)成功構(gòu)建了真核表達(dá)質(zhì)粒pECFP-C1-BDNF。在研究中發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)染pECFP-C1-BDNF質(zhì)??梢杂行У脑贐MSCs內(nèi)表達(dá)BDNF蛋白,并且加速BMSCs向成骨細(xì)胞的誘導(dǎo)分化的進(jìn)程,有利用BMSCs在骨損傷部位分化為成骨細(xì)胞,促進(jìn)骨折愈合,對(duì)骨折后損傷部位的組織修復(fù)等具有重要的作用。本研究對(duì)BDNF基因修飾型細(xì)胞移植治療臨床疾病提供了一條有效、安全的新的發(fā)展方向。
[1]Grills BL,Schuijers JA,Ward AR.Topical application of nerve growth factor improves fracture healing in rats[J].J Orthop Res,1997,15(2):235.
[2]Brian L Grills,Johannes A Schuijers,Alex R Ward.Topical Application of Nerve Growth Factor Improves Fracture Healing in Rats[J].The Journal of Bone and Joint Surgery,1997,15:35.
[3]Asaumi K,Nakanishi T,Asahara H,et al.Expression of neurotrophins and their receptors(TRK)during fracture healing[J].Bone,2000,26(6):625.
[4]Frostick SP,Yin Q,Kemp GJ.Schwann cells,neurotrophic factors and peripheral nerve regeneration[J].Microsurgery,1998,18:397.
[5]Maisonpierre PC,Belluscio L,F(xiàn)riedman B,et al.NT-3,BDNF,and NGF in the developing rat nervous system:Parallel as well as reciprocal patterns of expression[J].Neuron,1990,5:501.
[6]Sasaki M,Radtke C,Tan AM,et al.BDNF-h(huán)ypersecreting human mesenchymal stem cells promote functional recovery,axonal sprouting,and protection of corticospinal neurons after spinal cord injury[J].J Neurosci,2009,29(47):14932.
[7]Koyama R,Yamada MK,F(xiàn)ujisawa S,et al.Brain-derived neurotrophic factor induces hyperexcitable reentrant circuits in the dentate gyrus[J].J Neurosci,2004,24(33):7215.
[8]Eppley BL,Snyders RV,Winkelmann TM,et al.Efficacy of nerve growth factor in regeneration of the mandibular nerve:apreliminary report[J].J Oral Maxillofuc Sur,1991,49:61.
[9]Liechty KW,MacKenzie TC,Shaaban AF,et al.Human mesenchymal stem cells engraft and demonstrate sitespecific differentiation after in utero transplantation in sheep[J].Nat Med,2000,6:1282.
[10]Westerlund U,Moe MC,Varghese M,et al.Stem cells from the adult human brain develop into functional neurons in culture[J].Exp Cell Res,2003,289:378.
[11]Tondreau T,Lagneaux L,Dejeneffe M,et al.Bone marrowderived mesenchymal stem cells already express specific neural proteins before any differentiation[J].Differentiation,2004,72:319.
[12]Woo-Kie Min,Jae-Sung Bae,Byung-Chul Park,et al.Proliferation and osteoblastic differentiation of bone marrow stem cells:comparison of vertebral body and iliac crest[J].Eur Spine J,2010,19(10):1753.
[13]Zhou Zhi-lin,Sun Jun,Zhao Yu,et al.Expression of recombinant coexpression plasmid of pIRES-h(huán)VEGF121cDNA/hBMP-4in bone marrow mesenchymal stem cells and its effects on osteogenic differentiation.Journal of Clinical Rehabilitative Tissue Engineering[J].Research,2010,49(14):1368.