鄧 燕
糖尿病腎病(DN)是糖尿病的一種常見全身性微血管病變并發癥,是終末期腎功能衰竭(ESRD)的重要原因之一。DN的病因主要涉及遺傳因素、腎臟血流動力學改變、糖代謝異常、細胞因子等因素,其發病機制復雜。其中,高血糖是引起糖尿病腎功能衰竭的最主要因素[1-2]。腎小球系膜細胞(GMC)是腎臟最易被激活的細胞,可被多種免疫反應產物、炎癥因子以及非免疫產物激活。因此,當DN患者腎臟發生損壞時,高血糖過度累積,導致腎臟腎小球受損,產生多種免疫反應產物、炎癥因子及非免疫產物,激活GMC;GMC同時釋放多種炎癥介質,細胞外基質大量聚集,進一步損害腎小球;如此惡性循環,導致腎小球硬化[3-4]甚至腎功能衰竭。有研究表明,普伐他汀聯合二甲雙胍治療2型糖尿病合并高脂血癥能明顯改善血糖血脂異常,效果良好,且無嚴重不良反應發生[5]。本文觀察2種藥物聯用對GMC增殖的影響,為臨床治療DN提供藥理依據。
1.1 實驗材料 腎小球系膜細胞(武漢博士德生物有限公司,批號:HBZY-1)。藥品:普伐他汀片(上海三共制藥有限公司,規格:20 mg×7片,批號:110615-12);鹽酸二甲雙胍緩釋片(中美上海施貴寶制藥有限公司,規格:0.5 g×20片,批號:110823-02)。試劑:D-Hanks溶液及1640營養液(上海研拓生物);胰蛋白酶(1∶250)(武漢禾元生物);胎牛血清(上海勁馬生物);乙二胺四乙酸二鈉(EDTA)(廣州市鼎盈貿易有限公司);二甲基亞楓(DMSO)及噻唑蘭(MTT)(西寶生物)。儀器:CO2培養箱(長沙長錦科技有限公司);微量加樣器、超凈工作臺、電子天平(精準度為0.01 g)、離心機,上海普林斯頓生物科技發展有限公司;Multiskan FC酶標儀(美瑞泰克科技);96孔板細胞培養板(上海研拓生物)。RPMI-1640(Roswell Park Memorial Institute,RPMI,洛斯維公園紀念研究所研發的一類培養基)培養液的配制:取1袋1640粉劑,溶于雙蒸水中,稱取2 g NaHCO3粉末、2.38 g谷氨酰胺,加入上述1640溶液中,加雙蒸水至1 000 mL,再用濃度均為0.1 mol/L的HCl溶液和NaOH溶液調節pH值至6.9,濾菌器過濾后分裝置于-20℃保存備用。EDTA-胰蛋白酶溶液的配制:分別稱取0.25 g胰蛋白酶粉末、0.04 g EDTA溶于100 mL D-Hank'S液,攪拌混勻,經微孔濾膜過濾除菌,即得0.04%EDTA-0.25%胰蛋白酶溶液,用小青霉素瓶分裝保存于-20℃恒溫箱備用。
1.2 方法
1.2.1 GMC的傳代培養[6]GMC購回即棄去培養液,加入含10%胎牛血清的RPMI-1640培養液,第2天開始取細胞株進行傳代培養:吸掉培養液,加1~2 mL EDTA-胰酶消化液,輕搖培養瓶,使所有細胞表面均有消化液。輕輕吹打細胞,吸出消化液和細胞,加入15 mL離心管內,2 000 r/min離心10 min,吸出上清液,加入培養液;再次以2 000 r/min離心10 min,吸出上清液;加入含20%胎牛血清的RPMI-1640培養液。分裝2個25 cm2培養瓶,置入飽和濕度、37℃、5%CO2恒溫培養箱培養。每3天換1次液并進行傳代,共傳3~4代。取第4代GMC進行下游操作。
1.2.2 高糖刺激GMC增殖 根據文獻報道[7-8],葡萄糖濃度為0.6 g/L時刺激作用最明顯。本試驗取上述第4代的細胞懸液,接種于96孔培養板,每孔200 μL,約含3×104個細胞,細胞貼壁后,使細胞生長同步于對數生長期,保持細胞間具有可比性。設 0.4、0.5、0.6、0.7、0.8 g/L 5 個葡萄糖組,另設空白組,每組16孔。空白組加入蒸餾水20 μL,各試驗組加入對應濃度葡萄糖20 μL。培養板置于飽和濕度、37℃、5%CO2培養箱內培養,各組分別培養 12、24、48、72 h,終止前 4 h 每孔加入0.5%MTT溶液。培養4 h后,棄去上清,加100 μL DMSO中止培養,輕微震蕩10 min使結晶溶解,用酶標儀在波長490 nm下檢測吸光度值。
1.2.3 普伐他汀聯合二甲雙胍對高糖刺激GMC增殖的影響 采用“1.2.2”項下的方法,在葡萄糖0.6 g/L 20 μL刺激結束后,設5組:空白組為未經葡萄糖處理的細胞,加入20 μL蒸餾水;高糖組加入20 μL蒸餾水;大劑量組加入5.3 mg/L普伐他汀和400 mg/L二甲雙胍各10 μL;中劑量組加入2.7 mg/L普伐他汀和200 mg/L二甲雙胍各10 μL;小劑量組加入 1.3 mg/L普伐他汀和100 mg/L各10 μL。每組18個孔,同步進行,各組在24、48、72 h后分別取出20 μL 加入 0.5%MTT溶液,后續操作同“1.2.2”項。高糖組及藥物組在藥物干預期間均未再加糖處理。
1.3 統計學處理 采用SPSS 17.0軟件,計量資料以±s表示,組間比較采用t檢驗,P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 不同濃度葡萄糖不同時間點對GMC增殖的影響 在相同培養條件下,空白組細胞在不同時間點細胞生長明顯比葡萄糖各組慢(P<0.05);0.6 g/L組對GMC增殖的刺激作用明顯比其他劑量組強(P<0.05),見表1。

表1 不同濃度葡萄糖不同時間點對GMC增殖的影響
2.2 普伐他汀聯合二甲雙胍對高糖刺激的大鼠GMC增殖的影響 在相同培養條件下,高糖組細胞生長速度明顯高于空白組(P<0.05),表明葡萄糖誘導大鼠GMC細胞增殖模型成功;普伐他汀聯合二甲雙胍不同劑量組細胞在48、72 h生長速度較高糖組明顯減緩(P<0.05);大劑量組與中劑量組48、72 h生長速度差異無統計學意義(P>0.05);大劑量組與小劑量24 h生長速度差異無統計學意義(P>0.05),而72 h生長速度較小劑量組明顯減緩(P<0.05),見表2。

表2 普伐他汀聯合二甲雙胍不同濃度在不同時間點對高糖刺激大鼠GMC的影響
GMC是腎臟血管周圍反應活躍的腎小球細胞,具有多種功能,可產生細胞外基質和細胞因子,且可通過吞噬、處理免疫復合物,清除大分子蛋白,保持腎小球濾過膜的通透性。當腎小球受局部因素和體循環而來的介質損傷時,GMC首先受損害[9-10],因此,GMC是腎小球腎炎病變的關鍵環節。正常情況下GMC不發生明顯增殖,但在高糖等因素作用下,可見GMC及細胞外基質同時發生異常增生,導致腎組織纖維化和硬化。DN以腎臟硬化性病變為主,病理可見毛細血管基底膜增厚,系膜區擴張、基質增多。DN早期,GMC在高糖環境下可代償性調控葡萄糖的異常代謝,出現細胞肥大,但數目增加不顯著。因此,若能有效控制GMC異常增生,對延緩腎臟纖維化、腎小球硬化的發生、發展有重要意義[11]。有報道,高濃度葡萄糖可以促進GMC迅速增殖[12]。本研究通過觀察不同濃度葡萄糖對GMC增殖的影響,發現0.6 g/L濃度最佳。然后在同樣孵育環境下,以濃度為0.6 g/L的葡萄糖誘導GMC增殖,并觀察普伐他汀聯用二甲雙胍不同劑量對GMC增殖的影響。在兩藥聯合作用下,高糖誘導的GMC在約24 h時增殖放緩,并于48、72 h時增殖速度明顯下降,在72 h后高劑量組的GMC增殖速度最慢(與中劑量組比較差異無統計學意義),但與小劑量組差異有統計學意義(P<0.05),提示該劑量對GMC增殖的抑制作用最強。因此,筆者認為普伐他汀與二甲雙胍聯用具有抑制高糖刺激的大鼠GMC增殖的作用,為臨床治療DN提供了實驗依據,但其作用機制尚待后續研究。
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