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火針干預脊髓損傷大鼠后血清對神經干細胞增殖分化的影響

2013-10-28 08:57:36程素利焦召華
天津中醫藥 2013年1期
關鍵詞:血清模型

李 巖 ,周 震 ,程素利 ,焦召華 ,陳 爽

(1.天津市公安醫院,天津 300042;2.天津中醫藥大學第二附屬醫院,天津 300150;3.天津中醫藥大學,天津 300193)

脊髓損傷(SCI)是交通事故、工礦事故及自然災害中常見的、嚴重危害人類健康的疾病,患者多出現損傷平面以下的感覺、運動障礙及尿便功能異常[1]。目前,國內外對于SCI的治療研究多集中在具有自我更新和定向分化潛能的神經干細胞(NSCs)上[2]。筆者在臨床應用火針多年,發現其對慢性SCI療效顯著[3]。前期研究也發現,火針對于脊髓神經細胞具有保護和抗凋亡作用[4-5]。但火針是否可能通過影響NSCs的增殖及分化產生作用尚不清楚。本課題應用細胞離體培養和血清藥理學的方法,就火針干預SCI大鼠后血清對脊髓NSCs增殖分化的影響進行相關研究。

1 材料與方法

1.1 實驗動物 1)孕14 d昆明小鼠2只,清潔級。2)健康SD大鼠15只,體質量250~300 g,由北京維通利華實驗動物技術有限公司提供,許可證號:SCXK(京)2007-0001,隨機分為假手術組、模型組與火針組,每組5只。

1.2 SCI模型動物建立 采用改良的Allen’s法[6]建立急性SCI動物模型。即采用20 g/L戊巴比妥鈉(40 mg/kg體質量)腹腔注射將大鼠麻醉,取后正中切口,切除T9棘突、部分T10棘突和部分椎板,暴露硬膜,10 g的鐵錘從25 mm高處自由落下,撞擊硬膜囊,撞擊能量為25mm×10g,損傷直徑為2.5mm。與脊髓接觸的撞桿底端呈弧狀凹陷,直徑2.5 mm,與脊髓表面相吻合。撞擊成功的標志為大鼠尾巴痙攣性擺動,雙下肢及身體回縮樣撲動,雙下肢呈弛緩性癱瘓。假手術組只做T9-T10椎板切除術。術后小心護理飼養,每天擠壓排尿3次,直到反射性膀胱排空建立。

1.3 干預方法 火針組選取大鼠脊髓損傷部位上下端的棘突間隙,相當于T7、T8及T11、T12部位,各旁開0.5 cm,共4個穴,8個針刺點,采用快針法火針針刺,每穴僅刺1針,深度為3~5 mm。造模后即行針刺1次,之后每隔24 h針刺1次,共治療3次。

1.4 目標血清制備 SD大鼠采血前禁食12 h,于第三次針刺后麻醉,無菌條件下腹主動脈取血,分離血清。56℃滅活30min,220nm濾膜濾過除菌,-20℃保存備用。

1.5 神經干細胞的分離、培養及鑒定 取孕14 d昆明小鼠,無菌取出胎鼠,經D-Hanks液反復沖洗,解剖鏡下剝離皮膚、肌肉等組織,眼科剪剪碎脊髓,0.25%胰蛋白酶消化,吸管吹打,200目銅網過濾,離心,棄上清,加入含有 DMEM/F12、2%的 B27、20ng/mL堿性成纖維生長因子(bFGF)、20 ng/mL、表皮細胞生長因子(EGF)、100 U/mL 青霉素、100 μg/mL 鏈霉素的生長培養基,以5×105個/mL密度接種入25cm2培養瓶中,置入37℃、5%CO2飽和濕度培養箱中培養。此后每3 d半量換液1次,每7 d左右傳代1次。傳代培養純化的細胞經Nestin鑒定,顯示Nestin免疫反應陽性,表明所培養的細胞為神經干細胞。

1.6 NSCs增殖及生長狀態觀察 離心收集傳代培養8代的NSCs,吸管機械吹打,分離制備單細胞懸液,顯微鏡下計數。將細胞接種于12孔培養板,接種密度為 2×105個/mL。

各組NSCs按培養基中所含血清成分的不同共分3組,即假手術組、模型組及火針組。各組培養基均為含10%濃度SD大鼠不同血清成分的DMEM/F12基礎培養基(不含B27、rhEGF和rhbFGF),每4孔為同一血清成分培養液。

培養7 d后,擬分孔收集呈球形懸浮生長的細胞,再次機械分離制備單細胞懸液,顯微鏡下細胞計數。實驗重復3次。

1.7 NSCs誘導分化觀察 離心收集傳代培養8代呈球形懸浮生長的NSCs,吸管機械吹打分離成約含十幾個細胞的干細胞小球,分別接種于預先鋪有多聚賴氨酸蓋玻片的12孔培養板,培養基分別為上述3組含10%不同血清成分的培養基,每4孔為同一血清成分培養液,誘導NSCs分化。實驗重復3次。

1.8 免疫熒光染色 細胞貼壁培養7 d后,取各組蓋玻片上的細胞,經磷酸鹽緩沖溶液(PBS)洗后,4%多聚甲醛固定30 min,后接常規免疫熒光染色步驟。以β-tubllin標記分化的神經元,4,6-聯脒-2-苯基吲哚(DAPI)標記細胞核,每張玻片采用雙盲法選擇5個視野計數神經元的比例。

1.9 統計方法 數據統計采用SPSS18.0軟件,進行單因素方差分析,兩兩間均值比較采用Student-Newman-Keuls檢驗。

2 結果與分析

2.1 各組NSCs增殖及生長情況 在相差顯微鏡下,細胞接種于12孔培養板后,第1天,模型組細胞死亡較多,假手術組和火針組無明顯變化,細胞死亡尚少。各組形成了懸浮的、數量不等、大小不一的細胞團。3 d后,各組細胞多數呈球形且開始貼壁,并發出細小的突起。3組中,火針組細胞最多,開始貼壁時間最早,模型組細胞數最少,貼壁出現最晚。

2.2 各組NSCs分化情況 各組神經干細胞向神經元分化情況見表1和圖1。從表1可看出,3組NSCs均出現神經元分化,與模型組及假手術組相比,火針組神經元比例顯著增高,差異具有統計學意義(P<0.05)。

表1 神經干細胞培養7 d后各組NSC分化為神經元的比例(±s)Tab.1 The proportion of NSC differentiated neuron after neural stem cells cultured 7 days(±s)%

表1 神經干細胞培養7 d后各組NSC分化為神經元的比例(±s)Tab.1 The proportion of NSC differentiated neuron after neural stem cells cultured 7 days(±s)%

注:經多因素方差分析,與模型組相比,▲P<0.05。

組別 n 神經元比例假手術組 5 25.28±1.03模型組 5 14.43±0.85火針組 5 28.22±1.21▲

圖1 不同血清作用7 d后,神經干細胞分化情況Fig.1 The differentiation of neural stem cells affected by the different blood serum after 7 days

3 討論

NSCs為中樞神經系統中的原始細胞,具有自我更新和多潛能分化的特性,可以分化為神經元、星形膠質細胞和少突膠質細胞[7-8]。自1992年Renyolds等[9]從成年小鼠紋狀體分離得到能在體外不斷增殖且可多向分化的NSCs,為中樞系統神經損傷的治療提供了新思路。

SCI的病理過程分為原發性損傷和繼發性損傷,其中神經細胞的病理性凋亡是繼發性損傷的關鍵病理基礎[10],故適當誘導NSCs增殖并向神經元分化以彌補其損失,將成為SCI的潛在治療方法。

課題組在前期研究中證實,火針能減少SCI大鼠白介素-1β(IL-1β)、Caspase-3、p38MAPK 等凋亡相關蛋白的表達[10],抑制凋亡細胞發生[11],表明火針能抑制SCI大鼠炎癥反應及細胞凋亡,從而發揮神經保護作用。那么火針在抑制SCI大鼠細胞凋亡的同時,能否通過誘導NSCs增殖并向神經元分化以彌補凋亡的神經細胞,從而治療SCI?為探討此問題,課題組設計實施了本次研究。

本研究結果發現,火針干預后的SCI大鼠血清可促進離體狀態下的NSCs增殖,與假手術組及模型組相比細胞數目明顯增多;從神經元分化角度,火針組神經元分化比例增高,與另兩組比較差異具有統計學意義,表明火針干預后的SCI大鼠血清可促進NSCs增殖并可誘導其向神經元分化,這為火針治療SCI提供了部分實驗依據。但本實驗僅為離體細胞培養,火針能否對SCI大鼠內源性NSCs的增殖及向神經元分化產生作用及其作用機制,尚需進一步研究證實。

[1]王俊娟,許華燕,黃 波,等.脊髓損傷的研究進展[J].四川解剖學雜志.2011,19(4):37-41.

[2]Zhang N,Wimmer J,Qian SJ,et al.Stem cells:Current approach and future prospects in spinal cord injury repair[J].Anat Rec(Hoboken).2010,293(3):519-530.

[3]焦召華,李 巖,程素利,等.火針治療脊髓損傷后排尿困難13例[A].“針灸臨證經驗、醫案學術研討會”論文匯編,天津:2012.

[4]孫立明,李 巖,周 震,等.火針對脊髓損傷模型大鼠凋亡細胞的影響[J].針灸臨床雜志.2011,27(1):58-61.

[5]李 巖,程素利,周 震,等.火針對大鼠脊髓損傷后運動功能及BDNF 表達的影響[J].2012,29(6):545-547.

[6]Khan T,Havey RM,Sayers ST,et al.Animal models of spinal cord contusion injuries[J].Lab Anim Sic.1999,49(2):161-172.

[7]Taga T,Fukuda S.Role of IL-6 in the neural stem cell differentiation[J].Clin Rev Allergy Immunol.2005,28(3):249-256.

[8]范英昌,華聲瑜,李廣斌,等.中藥干預骨髓基質細胞移植心肌再生的實驗研究[J].天津中醫藥,2008,25(3):180.

[9]Reynold BA,Weiss S.Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system[J].Science.1992,255:1707-1709.

[10]Zhang N,Yin Y,Xu SJ,et al.Inflammation&apoptosis in spinal cord injury[J].Indian J Med Res.2012,135(3):287-296.

[11]孫立明,李 巖,周 震,等.火針對脊髓損傷模型大鼠凋亡相關蛋白表達的影響[J].針灸臨床雜志.2010,26(12):49-53.

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