常濤濤 郝國平
原發性免疫性血小板減少癥,過去也稱為特發性血小板減少性紫癜是一種獲得性自身免疫性疾病,以沒有明顯原因的單純性血小板減少(血小板計數<100×109/L)為特征[1]。目前研究普遍認為,原發性ITP發病機制不僅與抗血小板抗體所介導的血小板破壞有關,同時血小板生成減少、T細胞的介導影響也發揮了重要作用[2],但確切機制仍未完全明確。本文就血小板相關抗體、淋巴細胞亞群與原發性ITP發生的關系及其臨床意義進行探討。
1.1 一般資料 89例原發性ITP患兒均為2011年9月-2012年8月本院收治的住院患兒,診斷符合文獻診斷標準[3]。其中男54例,女35例,年齡2個月~14歲,平均(4.69±2.79)歲,均為初次發病。新診斷組(診斷后3個月以內血小板減少)66例,持續性組(診斷后3~12個月血小板持續減少)23例。選擇25例體檢健康兒童作對照組,男15例,女10例,年齡9個月~12歲,平均(5.07±2.12)歲。兩組性別、年齡比較,差異無統計學意義(P>0.05),具有可比性。
1.2 主要試劑與儀器 單克隆抗體CD41-PE、FITC標記的羊F(ab’)2抗 IgG(陰性對照)、羊 F(ab’)2抗人 IgG(γ)FITC、羊F(ab’)2抗人IgM(μ)FITC、羊F(ab’)2抗人IgA(α)FITC單克隆抗體均為Coulter公司產品。CD4-FITC/CD8-PE/CD3-PC5、CD3-FITC/CD(16+56)-PE、CD19-PC5及溶血素均為Coulter公司產品。FC500型流式細胞儀為美國Coulter公司。
1.3 方法
1.3.1 流式細胞術檢測血小板相關抗體 將EDTA抗凝全血經低速離心富集、洗滌血小板后,以CD41-PE進行熒光標記處理,然后分別以FITC標記的羊F(ab’)2抗IgG(陰性對照)、羊F(ab’)2抗人IgG(γ)FITC、羊F(ab’)2抗人IgM(μ)FIT、羊F(ab’)2抗人IgA(α)FITC標記血小板,洗滌后上機測定。
1.3.2 流式細胞術檢測淋巴細胞亞群 采集空腹靜脈血2ml(EDTA抗凝)取2支流式細胞儀專用試管分別標記1、2,管1加5μl CD4-FITC/CD8-PE/CD3-PC5,管2分別加5μl CD3-FITC/CD(16+56)-PE、CD19-PC5,在每支試管中再加入20 μl抗凝全血,充分混勻,室溫避光孵育30 min后,加入溶血素100 μl使紅細胞溶解,1200 r/min離心5 min,棄上清液,PBS洗滌1次,最后以500 μl PBS緩沖液懸浮,上機測定。
1.4 統計學處理 使用SPSS 17.0統計軟件進行分析,計量資料以(±s)表示,首先對檢測數據采用非參數Kruskal-Wallis檢驗,組間比較采用秩變換分析,P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 原發性ITP患者外周血PAIg檢測結果 新診斷組與持續性組PAIg(G、M)水平顯著高于對照組,比較差異有統計學意義(P<0.001);新診斷組與持續性組間血小板抗體水平比較,差異無統計學意義(P>0.05)。見表1。
2.2 原發性ITP患者外周血淋巴細胞亞群檢測結果 新診斷性ITP組與持續性ITP組和對照組比較,CD3+T細胞、CD4+/CD8+T細胞比值、CD3-CD(16+56)+NK細胞降低,CD3+CD8+T細胞、CD19+B細胞升高,比較差異均有統計學意義(P<0.05);新診斷性ITP組與持續性ITP組比較,組間CD3+T細胞、CD3+CD4+T細胞、CD4+/CD8+T細胞比值、CD19+T細胞、CD3+CD8+T細胞差異均有統計學意義(P<0.05),兩組CD3-CD(16+56)+NK細胞比較差異無統計學意義(P>0.05)。見表2。
表1 原發性ITP患兒與對照組血小板抗體檢測結果比較(±s)%

表1 原發性ITP患兒與對照組血小板抗體檢測結果比較(±s)%
*與對照組比較,P<0.01
表2 原發性ITP患兒淋巴細胞亞群水平與對照組比較(±s) %

表2 原發性ITP患兒淋巴細胞亞群水平與對照組比較(±s) %
*與對照組比較,P<0.05,△與新診斷組比較,P<0.05
原發性ITP是兒童期好發的一種自身免疫性出血性疾病,以自身抗體產生導致血小板破壞增多而致外周血血小板減少。關于ITP的發病機制復雜多樣,其中單核-巨噬細胞系統中自身抗體介導的血小板破壞增加、骨髓巨核細胞損傷或功能異常使血小板生成減少,被認為是經典的ITP發病機制[4]。這些抗體主要表現為IgG增高,有時表現為IgM或IgA增高[5]。本文實驗結果顯示,新診斷組與持續性組PAIgG、PAIgM和對照組相比顯著增高(P<0.001),而持續性組PAIg水平與新診斷組相比差異無統計學意義(P>0.05),這與文獻[6]報道基本一致,提示PAIg檢測無法鑒別新診斷ITP與持續性ITP,但可作為ITP診斷的輔助指標。
近年來隨著研究的深入,發現ITP患者體內存在著多種T淋巴細胞異常,Cines D B等[7]認為T細胞異常導致B細胞激活可能才是ITP真正的發病機制。本文結果顯示,新診斷組與持續性組CD3+T細胞、CD4+/CD8+T細胞比值細胞明顯低于正常兒童,CD3+CD8+T細胞、CD19+B細胞明顯高于正常兒童,比較差異均有統計學意義(P<0.05);持續性組與新診斷組比較,除NK細胞差異無統計學意義(P>0.05)外,其他淋巴細胞亞群差異均有統計學意義(P<0.05)。NK細胞對B細胞分化有抑制作用,能調節吞噬作用和抗體依賴細胞介導的細胞毒作用。研究發現激活的NK細胞能夠抑制ITP的自身免疫反應[8]。ITP患兒NK細胞數量和對照組相比顯著降低(P<0.05)提示其對B細胞激活、增殖、分化和抗體應答抑制能力下降,從而使B細胞異常活化,體液免疫過強而發病。
綜上所述,細胞免疫與體液免疫在ITP發病中起了重要作用,血小板相關抗體和淋巴細胞亞群水平檢測的聯合使用對ITP的診斷及療效觀察有較好的實用價值,在治療上要注意糾正免疫失衡,運用免疫調節手段治療ITP。
[1]Rodeghiere F, Stasi R, Gernsheimer T, et al. Standardization of terminology, definitions and outcome criteria in immune thrombocytopenic purpura of adults and children: report form an international working group[J]. Blood,2009,113(11):2386-2393.
[2]Zhang F, Chu X, Wang L, et al. Cell-mediated lysis of autologous platelets in chronic idiopathic thrombocytopenic purpura[J]. Eur J Haematol,2006,76(5):427-431.
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[6]尹亞飛,羅自勉.血小板相關抗體在特發性血小板減少性紫癜診治中的臨床意義[J].臨床醫學,2012,32(1):4-5.
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