摘 要 本文以韭蘭為材料,對植物染色體常規壓片、去壁低滲法制片技術染色效果進行了比較。實驗表明:去壁低滲法獲得細胞和染色體都較分散,Giemsa染色使得背景與材料的對比度較大,便與觀察。不足之處在于去壁低滲過程中,時間特別不易掌握,耗材多,且成功率較低,染色體容易丟失、形態也不太理想。常規壓片耗材少,成功率較高,但不易做分帶制片。
關鍵詞 植物染色體;常規壓片;去壁低滲
一、材料與方法
1.供試材料試驗用植株由校園內采集
2.根尖制片
(1)常規壓片。首先在早上9:00—10:00采集韭蘭的根,在室溫下放入0.1%秋水仙素溶液中進行預處理處理8h。然后在常溫下把材料放在卡諾氏固定液下固定10min,接下來就在1 mol/L鹽酸溶液中解離到松軟剛合適為止。最后用蒸餾水將韭蘭根沖洗干凈,這樣前處理就結束。處理完后就可以用醋酸洋紅染色或改良苯酚品紅染色。壓片/涂片后選取典型的染色體,在40倍物鏡及油鏡下顯微照相。
(2)去壁低滲法。首先把材料放0.1%秋水仙素溶液中進行預處理處理8h。然后前低滲,即將根尖放在0.075tool/LKCI低滲液中,在20-25℃條件下處理0.5h。接下來就是最關鍵的去壁,倒去KCI溶液,加入2.5%混合酶液,在25-30℃溫度下處理2-5h左右。去壁后要進行后低滲,使細胞完全膨脹,即是用20-30℃蒸餾水慢慢沖洗2-3次后,再將根尖放在0.075tool/LKCI低滲液中處理。將后低滲后的材料先經固定液固定后,就可以把去壁固定的根尖放在清潔的載片上,將材料夾碎,加1滴固定液。放于酒精燈上微微加熱烤干。最后用Giemsa染色,后選取典型的染色體,在40倍物鏡及油鏡下顯微照相。
二、結果與分析
1.常規壓片法
常規壓片法操作簡單,醋酸洋紅對于染色體染色均勻,由于它對RNA也有染色效果,以此種方法染色的染色體十分飽滿,倘若制片操作合適,加上脫色、沉淀等步驟,能夠制出背景清晰、效果良好的裝片,可供染色體核型分析。但由于細胞壁的存在使染色體分散不完全,染色體易重疊。另外,由于染料原因,染色體與細胞質反差小,不易于照相。醋酸洋紅的著色能力和分色效果會影響到顯微攝影的效果。
2.去壁低滲法制片
去壁低滲制片技術是利用前低滲先使細胞吸水膨脹,再經酶解細胞壁,便于染色體分散。去除細胞壁是該技術的關鍵。此方法可以提高染色體的分散程度和平整性。用Giemsa染色獲得的染色體形態比較完整均一,染色體各組成部分——長臂、短臂、著絲點、隨體的顯示都比較清楚,有利于染色體的測量和分析。試驗中染色體種制片技術的效果對比著色深,此法所得制片背景十分清爽,為染色體形態數目的觀察創造了良好的條件。
3.去壁低滲染色注意事項
壓片法是最常用的方法,去壁低滲法是較新的一種方法。采用常規壓片方法簡便、快捷、經濟、成功率高實用于材料較少的植物的核型分析制片,是研究細胞分裂和染色體動態變化首先使用的方法。但用壓片法制得的標本片在脫片過程中染色體易丟失。采用去壁低滲法,可得到染色體分散好的細胞,特別是對染色體數目多、形態小的植物。去壁低滲法使植物染色體分帶成為可能,從而為更高層次的研究植物染色體奠定基礎。因此,進行染色體分帶時,去壁低滲法比壓片法更易獲得完整染色體組的分裂相。但在去壁低滲法中要注意以下幾個因素:
第一,在去壁過程中,酶解的時間特別不易掌握,受材料種類(單子葉植物,雙子葉植物)、大小及溫度的影響。因為酶在25℃時活性最強,因此在這種情況下,酶解多幾分鐘就很可能造成酶解過度,材料解體,找不到染色體。而酶解少幾分鐘就又有可能使得酶解不足,達不到去壁的目的,染色體分散不開。因而在溫度上建議使用低溫最好是0—3℃酶在0—3℃時活性就大大降低了,酶解也就比較緩和了。這樣酶解多或少幾十分鐘關系均不甚大。酶解時間變幅寬,就較易掌握了。
第二,酶解去壁后,低滲的時間也很難掌握,細胞酶解去壁后,剩下的只是質膜了。這時,通過后低滲,水分子就會通過質膜向細胞質中滲透,使質膜漸漸膨脹。如果細胞質吸水過多,質膜的伸展性達到極限,勢必脹破,同樣造成材料解體;吸水不足,細胞質膨脹較小,體積小,染色體不能均勻地分散在細胞質中,所得分散相也不會太好。根據滲透原理在溫度上建議使用低溫最好是0—3℃,因為滲透速度隨溫度升高而加快,也就是說,在0—3℃時物質滲透速度比在25℃時要慢得多。因此在低溫下后低滲多或少幾十分鐘關系并不緊要。后低滲透時間變幅寬,就較容易掌握了。
第三,用火焰干燥制片時,務必使載片上有足夠的固定液。因為固定液過多,片上火焰燃燒時間長,染色體分散性可能較好,但染色體結構易受破壞,往往出現解螺旋現象,反之,固定液過少則染色體分散度差。
選擇適宜的染色體制片方法,對于確定染色體數目、倍性水平、染色體形態等有助于植物細胞水平的遺傳變異研究。
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作者簡介:顏彥杰(1983-),男,四川遂寧人,遂寧二中實驗學校,中學二級,理學學士,主要從事中學生物教學工作。