杜仲葉乙醇提取物的降糖作用機理

張紅霞，楊丹丹，王 鳳，李伊嬌，范俊峰

杜仲葉乙醇提取物的降糖作用機理

張紅霞，楊丹丹，王 鳳，李伊嬌，范俊峰*

（北京林業大學生物科學與技術學院，北京 100083）

為了闡明杜仲葉的降血糖功效及其機制，采用酶-抑制劑模型，篩選高抑制率的杜仲葉乙醇提取物并判斷其對α-葡萄糖苷酶的抑制類型；借助Caco-2人結腸腺癌細胞模型，研究杜仲葉20%乙醇解吸物對α-葡萄糖苷酶活性及葡萄糖轉運蛋白的影響；氣相色譜-質譜聯用分析杜仲葉20%乙醇解吸物主要成分。杜仲葉20%乙醇解吸物可競爭性地抑制α-葡萄糖苷酶，其抑制常數Ki值為32.90 mg/mL。它對Caco-2細胞中的α-葡萄糖苷酶有較強抑制作用，其IC50為0.57 mg/mL，且對Caco-2細胞攝取葡萄糖也有一定抑制作用，1 mg/mL時抑制率可達26.25%。氣相色譜-質譜分析表明杜仲葉20%乙醇解吸物主要有DL-異檸檬酸內酯、百里酚、兒茶素、2,6-二羥基-苯甲酸和3,4-二羥基-苯丙烯酸等。這些結果表明，杜仲葉乙醇提取物可以通過抑制α-葡萄糖苷酶活性，降低葡萄糖吸收來實現降血糖的效果。

杜仲葉；Caco-2細胞；α-葡萄糖苷酶；降血糖；葡萄糖轉運；兒茶素

糖尿病已被列為繼心腦血管疾病、腫瘤之后的第三大致死性疾病[1]。碳水化合物在人體內必須經由α-葡萄糖苷酶水解其α-1,4糖苷鍵，生成葡萄糖、果糖、半乳糖后才能被小腸吸收。因此通過抑制α-葡萄糖苷酶活性，可延遲或阻礙多糖在消化道內水解，以降低人體血糖濃度，可有效防治糖尿病[2-3]。α-葡萄糖苷酶抑制劑，已第3次被亞太地區糖尿病治療藥物指南推薦為降餐后血糖的一線藥物。α-葡萄糖苷酶抑制劑越來越成為近年來藥物化學的研究熱點[4]。

杜仲（Eucommia ulmoides Oliver）是藥理性質很強的中藥材，杜仲有降血壓、提高免疫力、抗衰老、補腎、強筋健骨等作用[5-6]。同時，杜仲也是中國傳統的藥食同用的保健食品，以杜仲鮮葉為原料炮制而成的杜仲茶可減少體內多余脂肪和膽固醇[7]，在東亞非常流行。杜仲制成的杜仲晶、杜仲粉等都有一定的保健功效[8-9]。最近研究表明杜仲葉具有降血糖作用[7]，杜仲分離得到的黃酮醇糖苷可抑制糖化作用，作用可以與氨基呱相媲美[10]；杜仲葉水提物對鏈脲佐菌素誘導的糖尿病大鼠有一定的降血糖作用[11]；杜仲茶甲醇抽提物可有效抑制α-葡萄糖苷酶活性，維持體內適當的血糖值[12]。但是，目前對杜仲葉降血糖的研究大多停留在化學成分分析、降糖效果上，針對其在人體內降血糖機制尚不清楚。

本實驗借助Caco-2人結腸腺癌細胞模擬人體小腸壁環境，從腸道二糖酶系活性以及葡萄糖吸收的角度出發，研究了杜仲葉20%乙醇解吸物降血糖機制。本實驗首先對杜仲葉乙醇提取物（ethanol extract of Eucommia ulmoides leaves，EE）進行分離純化，并以酶-抑制劑為模型通過酶促反應動力學研究，判斷杜仲葉20%乙醇解吸物對α-葡萄糖苷酶的抑制類型及親和度；然后借助Caco-2細胞模型，研究了杜仲葉20%乙醇解吸物的降糖作用，并初步探討其作用機制；最后利用氣相色譜-質譜聯用儀（gas chromatograph-mass spectrometer，GC-MS）對杜仲葉20%乙醇解吸物主要降糖成分進行分析。本實驗可以從糖的消化轉運途徑闡明杜仲葉降血糖保健功效的原理，為進一步生產杜仲葉降血糖保健品提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

杜仲葉采集自陜西漢中略陽縣。

大孔樹脂（A B-8） 天津市南開大學化工廠；α-葡萄糖苷酶、4-硝基苯基-α-D-吡喃葡萄糖苷（4-nitrophenyl-α-D-glucopyranoside，PNPG）、噻唑藍（3-（4,5-dimethyl-2-thiazolyl）-2,5-diphenyl-2-H-tetrazolium bromide，MTT） 美國Sigma公司；Caco-2細胞 北京協和醫院；MEM培養基、胎牛血清 美國Gibco公司；96孔培養板、24孔培養板、細胞培養瓶、磷酸鹽緩沖液（phosphate buffered saline，PBS）、胰蛋白酶 美國HyClone公司；阿卡波糖 拜耳醫藥保健有限公司；麥芽糖（分析純） 北京化工廠；葡萄糖試劑盒 上海超研試劑有限公司；N,O-雙（ 三甲基硅烷基）三氟乙酰胺（N,O-bis（trimethylsilyl）trifluoroacetamide，BSTFA）、三甲基氯硅烷（trimethylchlorosilane，TMCS）上海安普儀器試劑公司。

1.2 儀器與設備

LL-1500真空冷凍干燥機 賽默飛世爾科技有限公司；GC/MS-QP2010A氣質聯用儀 日本島津公司；CO2細胞培養箱 日本Yamato公司；超凈工作臺 蘇州醫療器械儀器廠；ST-360酶標儀 上?？迫A實驗系統有限公司；倒置顯微鏡 日本Olympuse公司。

1.3 方法

1.3.1 杜仲葉乙醇提取物的提取及純化

杜仲葉洗凈烘干粉碎，過20 目篩，40%乙醇溶液為提取液，料液比1∶60（m/V），浸泡2.5 h后，每次超聲提取1 h，重復提取2 次，合并濾液，用旋轉蒸發儀濃縮后冷凍干燥，備用[13]。

將所得樣品配制為質量濃度5 mg/mL，共100 mL的EE溶液。使用AB-8大孔樹脂裝入2.0 cm×40 cm玻璃色譜柱，柱床體積60 mL進行分離純化。首先，吸附過程中調節流速為1.0 mL/min，直到提取液完全進入樹脂層；充分吸附后依次使用200 mL的0、20%、40%、60%、80%乙醇溶液以2.0 mL/min流速進行洗脫，收集解吸液，分別為EEA、EEB、EEC、EED、EEE，濃縮后冷凍干燥，備用[14]。具體的提取分離流程如圖1所示。

圖1 杜仲葉活性成分提取分離流程Fig.1 Extraction and separation of bioactive components from Eucommia ulmoides leaves

1.3.2 杜仲葉乙醇提取物對酶-抑制劑模型的α-葡萄糖苷酶的抑制作用

在96 孔酶標板上，每個樣品做3 個平行實驗，在每個孔中先后加入120 μL 0.5 mol/L的磷酸緩沖液（pH 6.7），20 μL一定質量濃度的杜仲葉乙醇提取物，50 μL α-葡萄糖苷酶溶液（25 mg/mL）和50 μL PNPG（3 mmol/L），混勻后37 ℃反應1 h，然后加入50 μL碳酸鈉溶液（0.67 mol/L）終止反應，最后在405 nm波長處用酶標儀測定吸光度[15]。按公式（1）計算酶活性抑制率。

式中：A1為空白組吸光度，20 μL的去離子水代替提取液；A2為實驗組吸光度；A3為背景組吸光度，只加入提取物，以100 μL磷酸緩沖液代替α-葡萄糖苷酶及PNPG。

1.3.3 EEB對α-葡萄糖苷酶抑制的動力學實驗

選定質量濃度為10、20 mg/mL的EEB，分別加入濃度（[S]）為1、3、6、9、12 mmol/L的PNPG，按照1.3.2節方法作出不同濃度的PNPG吸光度A隨時間t變化圖，并以直線部分求速率V，同時測定不加抑制劑時不同濃度PNPG的反應速率[16]。按Lineweaver-Burk 作圖，以1/[S]為橫坐標，1/V為縱坐標，分別繪制不同濃度EEB的抑制作用動力學曲線，求出米氏常數Km并根據競爭性抑制動力學方程（2），確定抑制常數Ki值。

1.3.4 EEB的細胞毒性實驗

采用MTT法，選擇EEB對Caco-2細胞的安全質量濃度。將細胞懸液稀釋為3×104個/mL，混勻后每孔100 μL接種于96 孔板上，37 ℃、5% CO2環境中孵育24 h，棄上清液，貼壁細胞用于實驗，每孔加入含EEB的完全培養基（對照孔只加完全培養基）100 μL，培養48 h后檢測細胞增殖情況。加MTT（5 mg/mL）每孔20 μL，置37 ℃、5% CO2環境中孵育5 h，棄上清液，加二甲基亞砜（dimethyl sulfoxide，DMSO）每孔200 μL，避光振蕩15 min，于酶標儀570 nm波長處測定吸光度[17]。

1.3.5 EEB對Caco-2細胞模型α-葡萄糖苷酶活性的抑制

實驗分為空白組、陰性對照組、陽性對照組、實驗組，Caco-2細胞接種于24 孔板上（4×104個/mL），培養至12 d。實驗前棄去培養液，細胞用PBS洗3 次，除去細胞表面附著物。空白組每孔加入l mL PBS；陰性對照組每孔加入800 μL 28 mmol/L麥芽糖溶液和200 μL PBS；陽性對照組每孔加入800 μL 28 mmol/L麥芽糖溶液和200 μL阿卡波糖溶液，使阿卡波糖終質量濃度為0.20 mg/mL；實驗組每孔加入800 μL 28 mmol/L麥芽糖溶液和200 μL EEB，使EEB終質量濃度為0.05、0.10、0.20、0.50、1.00 mg/mL；置37 ℃反應40 min后移入冰浴，迅速吸出反應液50 μL，分別加入200 μL的葡萄糖試劑盒中，37 ℃反應30 min，在490 nm波長處測定吸光度A并記錄，計算抑制率及IC[18-19]。50

酶活力單位定義：每分鐘分解1.0 μmol/L底物為一個酶活力單位[20]。按公式（3）計算二糖酶活力。

式中：c為反應所釋放的葡萄糖濃度/（μmol/L）；N為樣品稀釋倍數；t為反應時間/min；B為1個單位的二糖分解后葡萄糖釋放量（即麥芽糖B為2）。

1.3.6 EEB對Caco-2細胞模型葡萄糖吸收的影響

實驗在24 孔板的單層細胞上進行。實驗前棄去培養液，細胞用PBS洗3 次，除去細胞表面附著物。加入含EEB的PBS 0.4 mL，置37 ℃孵育10 min后加入0.55 mmol/L的葡萄糖溶液1.6 mL，使EEB終質量濃度分別為0.05、0.10、0.20、0.50、1.00 mg/mL；空白組以0.4 mL PBS代替含EEB的溶液。37 ℃培養箱中培養40 min，迅速吸出溶液，用冰冷（4 ℃）PBS洗細胞3 次，收集細胞，反復凍融破碎，分別測定細胞中葡萄糖及蛋白質含量[21]。細胞葡萄糖含量測定采用氧化酶-葡萄糖試劑盒法；細胞蛋白質含量測定采用考馬斯亮藍法[22]。

1.3.7 EEB成分分析

取干燥樣品EEB置于安培瓶中，無水分殘留，否則會影響衍生化的效果。以1∶1（V/V）的比例加入衍生化試劑，含0.1% TMCS的BSTFA，將安培瓶口封好，超聲波處理1 h，放入100 ℃的烘箱中加熱，取出后冷卻至室溫。

氣相色譜檢測條件：進樣量為1 μL，分流進樣，分流比30∶1；Rtx-5毛細管柱（30 m×0.32 mm，0.5 μm）；程序升溫柱溫設置：柱初溫50 ℃，升溫速率6 ℃/min，升至250 ℃，繼續升溫，速率15 ℃/min，升至280 ℃，保持時間不少于10 min；接口溫度250 ℃，進樣口溫度270 ℃。質譜條件：EI離子源溫度220 ℃，電離電壓70 eV，倍增器電壓350 V，掃描范圍33～500 amu，掃描速率0.5 s/次[23-24]。

1.4 數據處理

實驗最少重復3 次取平均值，表示為x±s，所有數據用SPSS 20.0軟件處理，用Duncan’s法進行方差分析，P＜0.05為差異顯著。

2 結果與分析

2.1 杜仲葉乙醇提取物對α-葡萄糖苷酶的抑制作用

圖2 大孔樹脂分離純化后各成分對α-葡萄糖苷酶抑制率Fig.2 Anti-α-glucosidase activity of the fractions separated from the 40% ethanol extract of Eucommia ulmoides leaves by macroporous resin adsorption

經大孔樹脂動態純化后的杜仲葉乙醇提取物對α-葡萄糖苷酶有一定的抑制作用，由圖2可知，EEB對α-葡萄糖苷酶的抑制率最高，為（43.08±0.55）%；其次是EEC，（26.74±0.32）%，比EEA高1.14%；而EED抑制率只有（13.87±0.20）%，是5 個組分中最低的。

2.2 EEB對α-葡萄糖苷酶抑制動力學

圖3 EEB的Lineweaver-Burk的雙倒數曲線Fig.3 Lineweaver-Burk curve of EEB

由圖3可知，最大反應速率（Vmax）隨著抑制劑質量濃度的增大保持不變，米氏常數（Km）增大，說明了EEB對α-葡萄糖苷酶底物在該酶上的絡合位點相同，互相競爭，屬競爭性抑制劑。根據競爭性抑制動力學方程1/Km’=1/{Km（1+[I]/Ki）}，從圖3中求得EEB質量濃度為10、20 mg/mL時Km’，再根據α-葡萄糖苷酶的Km和Vmax，可求出EEB質量濃度為10、20 mg/mL時Ki的均值為32.90 mg/mL。

2.3 EEB的細胞毒性實驗

圖4 不同質量濃度EEB對Caco-2細胞生長的影響Fig.4 Effect of EEB on the growth of Caco-2 cells

由圖4可知，在0、0.05、0.10、0.20、0.50、1.00 mg/mL條件下吸光度A570nm分別為0.818±0.046、0.849±0.015、0.849±0.033、0.783±0.053、0.767±0.118、0.774±0.037。實驗組與空白組無顯著差異（P＞0.05）。這說明實驗質量濃度下，EEB對Caco-2細胞無明顯毒性。

2.4 Caco-2細胞中EEB的降血糖機制

2.4.1 EEB對Caco-2細胞模型的α-葡萄糖苷酶抑制作用

圖5 EEB對α-葡萄糖苷酶酶活性的抑制作用Fig.5 Anti-α-glucosidase activity of EEB in Caco-2 cells

如圖5所示，EEB在以麥芽糖為底物時對Caco-2細胞中α-葡萄糖苷酶活性有一定的抑制作用。當EEB質量濃度為0.05、0.10、0.20、0.50、1.00 mg/mL時，抑制率分別為（19.50±1.93）%、（32.07±1.08）%、（44.21±3.34）%、（49.11±3.78）%、（51.75±2.15）%。其IC50值為0.57 mg/mL。隨著EEB質量濃度的升高，α-葡萄糖苷酶活性逐漸降低，說明其抑制α-葡萄糖苷酶活性具有質量濃度依賴性。

2.4.2 EEB對Caco-2細胞模型葡萄糖吸收的影響

圖6 EEB對Caco-2細胞的葡萄糖吸收抑制作用Fig.6 Anti-absorption of glucose of EEB in Caco-2 cells

如圖6所示，空白組中葡萄糖吸收量為3.018 μmol/mg；添加EEB的實驗組中，Caco-2細胞對葡萄糖吸收量出現一定程度的降低。隨著EEB質量濃度的上升，抑制率逐漸上升。這說明EEB對Caco-2細胞模型葡萄糖吸收有一定的抑制作用，1 mg/mL時抑制率為（26.25±0.86）%。

2.5 EEB硅烷化衍生物GC-MS分析

EEB的GC-MS總離子流圖如圖7所示。其中一部分化合物由于含量少或者無法衍生化為揮發性物質，故無法確定其化學結構，也有一部分為雜峰，予以扣除后通過標準質譜庫檢索和人工解吸相結合，分析EEB中主要降血糖成分，結果見表1。

圖7 EEB的總離子流圖Fig.7 TIC profileof EEB

表1 EEB中抑制-葡萄糖苷酶成分的相對含量Table 1 Relative contents of -glucosidase inhibitors in EEB

由表1可知，EEB主要以內酯類、有機酸、酚類、單糖類、醇類、氨基酸為主。除此之外，還有核苷、醚類、胺類、烯烴類化合物。

EEB成分中含有的內酯類化合物相對含量最高，為16.75%。這其中DL-異檸檬酸內酯的相對含量最高，達到了13.79%，其次為D-甘露糖酸-1,4-內酯（0.73%），D-葡萄糖酸-1,4-內酯（2.23%）。EEB成分中含有的有機酸種類最多，包含飽和脂肪酸，不飽和脂肪酸以及芳香族脂肪酸。飽和脂肪酸中主要含有草酸（0.95%）、乳酸（0.57%）等；不飽和脂肪酸主要含有2-酮-D-葡萄糖酸（2.63%）、10,12-二十二碳二炔二酸（1.42%）（表中未列出）等；芳香族脂肪酸中2,6-二羥基-苯甲酸含量較高，為2.11%。酚類化合物總相對含量為4.36%，分別為百里酚（0.67%），鄰羥基苯乙醇（0.46%），3,4-二羥基-苯丙烯酸（1.9%），兒茶素（0.88%），4-羥基-3-甲氧基苯乙二醇（0.45%）。EEB還檢測到左旋葡聚糖（0.62%）、阿拉伯呋喃糖（1.46%）、呋喃半乳糖（1.81%）、吡喃葡萄糖（3.09%）、吡喃甘露糖（2.37%）、D-巖藻糖（0.65%）等單糖類化合物。就氨基酸而言，5-氧代脯氨酸相對含量為0.54%；4-羥基脯氨酸相對含量為1.25%。醇類物質而言，3,4-雙脫氧己糖醇相對含量為0.54%；桃金娘烯醇為0.54%。此外，EEB中還含有0.7%甲酚甘油醚；0.77%苯胺羰酸；0.45% VB6等物質。

3 討 論

小腸絨毛壁上皮的二糖酶系豐富，可引起餐后血糖升高，其中最重要的是α-葡萄糖苷酶[25]。本實驗發現，杜仲葉20%乙醇解吸物（EEB）有很強的體外抗α-葡萄糖苷酶活性，并且EEB與α-葡萄糖苷酶有較高的親和性（Ki值為32.90 mg/mL）。進一步的實驗結果表明，EEB對于Caco-2細胞中α-葡萄糖苷酶活性也具有較強抑制作用，并且可以抑制Caco-2細胞對葡萄糖的吸收。GC-MS分析表明，杜仲葉EEB含有重要的抗α-葡萄糖苷酶成分，包括百里酚、兒茶素、2,6-二羥基-苯甲酸、3,4-二羥基-苯丙烯酸和DL-異檸檬酸內酯等成分，含量最高可達13.79%。

正常人進食后，食物中的碳水化合物如淀粉先在α-淀粉酶作用下生成麥芽糖、麥芽三糖等，隨后經α-葡萄糖苷酶水解作用生成葡萄糖等，經腸壁細胞吸收而被機體利用。因此抑制α-葡萄糖苷酶活性，阻礙二糖進一步分解對于延緩餐后血糖值升高有著重要作用?，F在研究多采用PNPG為底物的酶-抑制劑模型，篩選強活性的α-葡萄糖苷酶抑制劑。但是這種模型無法直接評價篩選得到的降糖物質在體內的藥效作用，存在假陽性率高、體內外活性差異較大、臨床效果不理想等弊端[26]。因此本實驗在采用PNPG為底物的酶-抑制劑模型基礎上，借助Caco-2細胞模擬人體小腸壁環境，克服了體內外活性差異大等缺點，并在此基礎上研究了EEB降血糖機制。Caco-2細胞來源于人結腸腺癌細胞，體外培養達到融合后，可自然分化為與成熟小腸細胞具備類似形態和生化特性的細胞。目前Caco-2細胞主要用于藥物吸收轉運機制研究，可表現出與人小腸上皮細胞相似的與糖消化、吸收有關的酶以及蛋白質[27]。故可借助Caco-2細胞所表達的α-葡萄糖苷酶構建模型來研究EEB對α-葡萄糖苷酶的作用。

首先在酶-抑制劑模型中，EEB抑制率最高，為（43.08±0.55）%。其次酶促反應動力學研究發現，EEB對α-葡萄糖苷酶抑制類型為競爭性抑制且Ki值僅為32.90 mg/mL，這說明EEB與α-葡萄糖苷酶有很高的親和性。之后進一步利用Caco-2細胞模型發現，EEB以麥芽糖為底物時對細胞內α-葡萄糖苷酶有較強抑制率。EEB抑制α-葡萄糖苷酶活性隨著EEB質量濃度升高而升高，IC50值為0.57 mg/mL。對比常用降血糖藥物-阿卡波糖在0.20 mg/mL時對α-葡萄糖苷酶活性抑制率為67.92%，同等質量濃度的杜仲葉乙醇提取物抑制率達到了57.57%。

葡萄糖吸收過程中主要涉及鈉葡萄糖共轉運載體1（sodium/glucose cotransporter-1，SGLT-1）、葡萄糖協助擴散轉運載體2（glucose transporter 2，GLUT-2）兩種跨膜轉運載體蛋白[28]。其中位于小腸細胞黏膜表面上的SGLT-1起主導作用，其在細胞基底膜Na+-K+-ATP酶作用下逆Na+濃度差，消耗能量，主動轉運葡萄糖[29-30]。因此，腸道葡萄糖的跨膜吸收主要涉及SGLT-1、GLUT-2和Na+-K+-ATP酶共3 種蛋白。Caco-2細胞模型中，EEB除可抑制α-葡萄糖苷酶活性外還可抑制葡萄糖攝取吸收，1.00 mg/mL時抑制率26.25%。針對EEB抑制Caco-2細胞中葡萄糖吸收的具體機制尚不清楚。但研究表明，茶葉提取物可通過競爭性抑制Caco-2細胞膜上SGLT-1、GLUT-2、GLUT-5等葡萄糖轉運蛋白的活性來抑制細胞對于葡萄糖的吸收[31]。夏枯草提取物可能通過抑制SGLT-1、GLUT-2及Na+-K+-ATP酶在mRNA水平上的表達，抑制轉運蛋白生成量，從而降低葡萄糖吸收量[32]。因此，EEB可能通過抑制葡萄糖轉運蛋白的活性或者抑制葡萄糖轉運蛋白在mRNA水平上的表達，從而實現對葡萄糖吸收的抑制。

在本實驗基礎上，可通過繼續實驗研究在Caco-2細胞模型上EEB對于蔗糖酶、乳糖酶、海藻糖等其他二糖酶的抑制效果，研究其對葡萄糖轉運蛋白的影響，以便于進一步研究EEB的降血糖機制。綜上可得，EEB可通過抑制α-葡萄糖苷酶活性及葡萄糖吸收，起到降血糖的效果。

藥用植物中，具備抗α-葡萄糖苷酶活性的有效成分主要由多酚、黃酮及黃酮苷、生物堿、三萜及其苷類、肽類、酯類、酸類等組成[33]。GC-MS分析EEB主要成分含有酸類、單糖類、多酚、酯類、氨基酸等物質。有研究發現，利用高效液相色譜法分離杜仲茶甲醇提取物可得到5 種α-葡萄糖苷酶抑制劑分別為：槲皮素、兒茶素-α（7,8-b.c）-4d-（3,4-二羥基）-α（3H）吡喃糖、兒茶素-α（7,8-b.c）-4β-（3,4-二羥基）-α（3H）葡萄糖、山奈酚α-3-O-β-葡萄糖和杜仲醇[9]。本實驗分析得到了兒茶素，含量為0.88%。由于提取分離杜仲葉方法不同，并未檢測到槲皮素、山奈酚α-3-O-β-葡萄糖和杜仲醇。但是，EEB中的其他成分可能具備抑制α-葡萄糖苷酶的活性。桂花中的脂肪酸具有良好的α-葡萄糖苷酶抑制活性[34]。EEB成分中含有有機酸的種類最多，包含10 種飽和脂肪酸，6 種不飽和脂肪酸以及3 種芳香族脂肪酸。其中不飽和脂肪酸含量最高，達6.86%。杜仲多糖對四氧嘧啶致糖尿病小鼠有一定的降血糖作用[35]?？喙隙嗵呛吞J薈多糖都有降血糖的作用，而苦瓜多糖主要由阿拉伯糖、半乳糖和鼠李糖等構成；蘆薈多糖以甘露糖、阿拉伯糖等構成[36]。本實驗發現EEB含有的單糖類化合物相對含量為13.25%，其中吡喃甘露糖含量相對較高，為2.37%；阿拉伯呋喃糖含量為1.46%；呋喃半乳糖為1.81%。茶多酚對α-葡萄糖苷酶有較強的抑制活性且延緩小腸對糖的消化吸收起到降糖作用[37]。EEB中兒茶素含量為0.88%。除此，EEB中還檢測到百里酚、3,4-二羥基-苯丙烯酸、4-羥基-3-甲氧基苯乙二醇等酚類物質。海帶中提取得到的D-甘露醇與丙酮合成的二異亞丙基甘露醇可抑制α-葡萄糖苷酶活性[38]。EEB中可分離得到5 種醇類成分（3.27%）。EEB中內酯類化合物的相對含量最高，為16.75%，其中DL-異檸檬酸內酯的相對含量最高，達到了13.79%。此外，EEB中還檢測出2 種氨基酸（1.79%），分別為5-氧代脯氨酸和4-羥基脯氨酸。L-羥基脯氨酸能使正常小鼠進食量明顯增加時而不增加體質量增長速率，減少營養性肥胖模型大鼠的體質量[39]。根據以上成分結構鑒定，本實驗發現EEB含有兒茶素、百里酚、吡喃甘露糖、2,6-二羥基-苯甲酸，3,4-二羥基- 苯丙烯酸和DL-異檸檬酸內酯等成分，含量最高可達13.79%。推測這些成分可以抑制α-葡萄糖苷酶活性，為測定其在杜仲葉中的含量以及進一步研究它們對α-葡萄糖苷酶的抑制作用奠定了基礎。

4 結 論

本實驗發現，杜仲葉乙醇提取物降血糖效果主要是通過抑制α-葡萄糖苷酶活力，減少葡萄糖吸收，降低餐后高血糖實現的。本實驗從糖的消化轉運途徑闡明了杜仲葉降血糖保健功效的原理，為杜仲葉治療糖尿病的開發利用打下了理論基礎。

[1] 王華. 糖尿病藥物治療的研究進展[J]. 臨床合理用藥雜志, 2010, 3(3): 123-124.

[2] 季芳, 肖國春, 董莉, 等. 藥用植物來源的α-葡萄糖苷酶抑制劑研究進展[J]. 中國中藥雜志, 2010, 35(12): 1633-1640.

[3] 李玉萍, 白冰, 葉軍, 等. α-葡萄糖苷酶抑制劑的制備和活性研究進展[J]. 食品科學, 2008, 29(9): 617-620.

[4] KRENTZ A J, BAILEY C J. Oral antidiabetic agents current role in type 2 diabetes[J]. Drugs, 2005, 65(3): 385-411.

[5] 彭紅梅, 李小姝. 杜仲的藥理研究現狀及應用展望[J]. 中醫學報, 2013, 28(1): 72-73.

[6] 晏媛, 郭丹. 杜仲葉的化學成分及藥理活性研究進展[J]. 中成藥, 2003, 25(6): 491-492.

[7] 李躍中, 陳怡平. UHPE-HPLC法測定杜仲茶中桃葉珊瑚甙的含量[J].中國衛生檢驗雜志, 2007, 17(12): 2203-2204.

[8] 宗留香, 康懷斌, 毛薇, 等. 杜仲保健面條的研制[J]. 食品科技, 2003, 28(3): 80-81.

[9] 劉亮, 盧琪, 段加彩, 等. 杜仲茶酸奶的研制及茶粉、綠原酸對酸奶品質的影響[J]. 食品科學, 2010, 31(12): 114-118.

[10] KIM H Y, MOON B H, LEE H J, et al. Flavonol glycosides from the leaves of Eucommia ulmoides O. with glycation inhibitory activity[J]. Journal of Ethnopharmacology, 2004, 93(2/3): 227-230.

[11] LEE M K, KIM M J, CHO S Y, et al. Hypoglycemic effect of Duzhong (Eucommia ulmoides Oliv.) leaves in streptozotocin-induced diabetic rats[J]. Diabetes Research and Clinical Practice, 2005, 67(1): 22-28.

[12] WATANABE J, KAWWABATA J, KURIHARA, et al. Isolation and identification of α-glucosidase inhibitors from tochu-cha (Eucommia ulmoides)[J]. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, 1997, 61(1): 177-178.

[13] 賈正, 黃文, 薛安. 杜仲葉黃酮的超聲提取及其抗氧化性研究[J]. 安徽農業科學, 2008, 36(4): 1286-1288.

[14] 劉志祥, 曾超珍, 張玥. AB-8大孔樹脂分離純化枸骨葉總黃酮的工藝研究[J]. 食品科學, 2010, 31(12): 76-79.

[15] ZHU Yunping,YIN Lijun, CHENG Yongqiang, et al. Effects of sources of carbon and nitrogen on production of α-glucosidase inhibitor by a newly isolated strain of Bacillus subtilis B2[J]. Food Chemistry, 2008, 109(4): 737-742.

[16] 馬慶一, 陳麗華, 楊海延, 等. 山茱萸中α-葡萄糖苷酶抑制活性因子的篩選(Ⅰ)[J]. 食品科學, 2007, 28(1): 167-170.

[17] 王立平. 瑞士乳桿菌酪蛋白源活性肽制備及其生理功效研究[D]. 北京: 北京林業大學, 2008.

[18] 馬慶一, 陳麗華, 楊海延, 等. 山茱萸中α-葡萄糖苷酶抑制活性因子的篩選(Ⅱ)[J]. 食品科學, 2007, 28(2): 73-78.

[19] OGAWA N, SATSU H , WATANABE H, et al. Acetic acid suppresses the increase in disaccharidase activity that occurs during culture of Caco-2 cells[J]. The Journal of Nutrition, 2000, 130(3): 507-513.

[20] 許梓榮, 李衛芬, 孫建義. 豬胃腸道黏膜二糖酶的性質[J]. 動物學報, 2002, 48(2): 202-207.

[21] 潘國宇, 王廣基, 孫建國, 等. 小檗堿對葡萄糖吸收的抑制作用[J].藥學學報, 2003, 38(2): 911-914.

[22] BRADFORD M M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of proteindye binding[J]. Analytical Biochemistry, 1976, 72(1): 248-254.

[23] 劉振華, 王如偉, 何厚洪, 等. 三甲基硅烷衍生化GC-MS 研究延胡索中水溶性非生物堿類化學成分[J]. 中國中藥雜志, 2012, 37(14): 2108-2112.

[24] ZHOU Yiqi, WANG Zijian, JIA Ning. Formation of multiple trimethylsilyl derivatives in the derivatization of 17-ethinylestradiol with BSTFA or MSTFA followed by gas chromatography-mass spectrometry determination[J]. Journal of Environmental Science, 2007, 19(7): 879-884.

[25] 吳濤, 鄭娟, 張程亮, 等. 中藥腸吸收的研究進展[J]. 藥物與臨床, 2013, 10(6): 30-35.

[26] 吳酬飛, 許楊, 李燕萍. α-葡萄糖苷酶抑制劑篩選模型的研究進展[J].國際藥學研究雜志, 2008, 35(1): 9-12.

[27] 楊秀偉, 楊曉達, 王瑩, 等. 中藥化學成分腸吸收研究中Caco-2細胞模型和標準操作規程的建立[J]. 中西醫結合學報, 2007, 5(6): 634-641.

[28] GOULD G W, HOLMAN G D. The glucose transporter family: structure, function and tissue-specific expression[J]. Biochemical Journal, 1993, 295(Pt 2): 329-341.

[29] JOOST H G, WANDEL S, SCHURMANN A. Structure function relationship of glucose transporters catalyzing facilitated diffusion[J]. Experimental and Clinical Endocrinology, 1994, 102(6): 434-438.

[30] DYER J , DALY K, SALMON K S H, et al. Intestinal glucose sensing and regulation of intestinal glucose absorption[J]. Biochemical Society Transactions, 2007, 35(5): 1191-1194.

[31] SHIMIZU M, KOBAYASHI Y, SUZUKI M, et al. Regulation of intestinal glucose transport by tea catechins[J]. Biofactors, 2000, 13(1/4): 61-65.

[32] 吳慧平, 哈團柱, 郜明. 夏枯草提取物對Caco-2細胞α-葡萄糖苷酶、SGLT-1、GLUT-2、Na+-K+-ATP酶mRNA表達的影響[J]. 中國生化藥物雜志, 2010, 31(6): 373-376.

[33] ROBLEDO S, OSORIO E, MU?OZ D, et al. in vitro and in vivo cytotoxicities and antileishmanial activities of thymol and hemisynthetic derivatives[J]. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2005, 49(4): 1652-1655.

[34] 陳百泉, 王金梅, 苑鵬飛, 等. 4種桂花脂肪酸成分及α-葡萄糖苷酶抑制作用[J]. 精細化工, 2009(12): 1188-1191.

[35] 劉國榮, 邱立朋, 周延萌, 等. 杜仲多糖對糖尿病小鼠降血糖作用及其機制研究[J]. 泰山醫學院學報, 2010, 31(9): 659-661.

[36] 崔旻. 苦瓜多糖和蘆薈多糖的降血糖作用及其機理的研究[D]. 濟南: 山東師范大學, 2003.

[37] 楊馮, 趙國華. 茶多酚降血糖研究進展[J]. 食品工業科技, 2009, 30(9): 324-327.

[38] 詹天榮, 鄭立, 陳海敏, 等. 二異亞丙基甘露醇的合成及其抑菌和抑制葡萄糖苷酶活性[J]. 海洋與湖沼, 2003, 34(5): 572-576.

[39] 賈曉波, 龐會從, 趙瑞芹. L-羥脯氨酸用于減肥的實驗研究[J]. 中國藥科大學學報, 2003, 34(3): 276-278.

Ethanol Extract of Eucommia ulmoides Leaves Inhibits Alpha-Glucosidase in Caco-2 Cells

ZHANG Hong-xia, YANG Dan-dan, WANG Feng, LI Yi-jiao, FAN Jun-feng*
(College of Biological Sciences and Technology, Beijing Forestry University, Beijing 100083, China)

The inhibitory effects of 40% ethanol extract of Eucommia ulmoides leaves on alpha-glucosidase and glucose transport were investigated in Caco-2 cells in vitro to elucidate the anti-hyperglycemic mechanism of Eucommia ulmoides leaves. The alpha-glucosidase inhibitors in the ethanol extract were also identified by GC-MS analysis. The kinetic study showed that the 20% ethanol elution fraction (EEB) from macroporous resin AB-8 of the ethanol extract of Eucommia ulmoides leaves could competitively inhibit alpha-glucosidase with a Kivalue of 32.90 mg/mL, indicating that alphaglucosidase has a strong affinity with the extract. Meanwhile, the inhibition was found to be reinforced as the concentration of EEB increased. For investigation of the inhibitory effect of EEB in Caco-2 cells, cytotoxicity assays were firstly conducted by using different concentrations of EEB (0.05, 0.10, 0.20, 0.50 and 1.00 mg/mL) to determine the safety level at which cell growth and viability could not be affected. All tested concentrations of EEB had no effect on the growth or viability of Caco-2 cells. Subsequently, EEB at various concentration exhibited effective suppression on alpha-glucosidase by using maltose (28 mmol/L) as the substrate in Caco-2 cells in a concentration-dependent manner with an IC50of 0.57 mg/mL. Furthermore, EEB could also attenuate glucose transport in Caco-2 cells, which could be decreased to 26.25% by EEB (1 mg/mL). These results indicate that EEB exerts strong anti-hyperglycemic effect by suppressing disaccharidase and glucose transportors. GC-MS analysis was conducted to elucidate the composition of the ethanol extract of Eucommia ulmoides leaves. It was found that acids, monosaccharides, polyphenols, esters, amino acids were the main components of EEB. Further analysis by GC-MS revealed that the ethanol extract was rich in DL-isocitric acid lactone, thymol, catechin, 2,6-dihydroxybenzoic acid and 3,4-dihydroxy cinnamic acid. These compounds may play important roles in the hypoglycemic effect of the extract. The present study suggests Eucommia ulmoides leaves are a medicinal food material for preventing and treating diabetes, and could be further developed into healthful products.

Eucommia ulmoides leaves; Caco-2 cells; α-glucosidase; hypoglycemic; glucose transport; catechin

TS252.1

A

1002-6630（2014）17-0197-07

10.7506/spkx1002-6630-201417038

2013-11-03

國家自然科學基金面上項目（J1103516）

張紅霞（1988—），女，碩士研究生，研究方向為功能性食品。E-mail：Luludeer0305@sina.cn

*通信作者：范俊峰（1970—），男，副教授，博士，研究方向為植源性多肽和黃酮的抗血栓、抗糖尿病功能。

E-mail：fanjunfeng@bjfu.edu.cn