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特應性皮炎患兒外周血巨噬細胞游走抑制因子及IL-17和IL-23的表達及其相關性研究

2014-02-08 06:57:20高梅蘭薛海波管秀好舒春梅張桂芹運蓓蕾
中國全科醫學 2014年8期
關鍵詞:血清水平

馬 蕾,高梅蘭,薛海波,管秀好,舒春梅,張桂芹,運蓓蕾

1 資料與方法

1.1 一般資料 選擇2010年4—11月在我院門診就診的36例AD患兒為病例組,其中男20例,女16例;年齡3~16歲,平均(9.9±3.7)歲;采用疾病的嚴重程度(SCORAD)評分[4]評價患兒疾病嚴重程度:中度26例(15分≤SCORAD評分<40分),重度10例(SCORAD評分≥40分);所有患兒于入組前1周停用抗組胺藥、外用糖皮質激素、免疫調節劑及免疫抑制劑,且6個月內未系統使用糖皮質激素及免疫相關制劑。選擇同期在我院體檢正常兒33例為對照組,其中男17例,女16例;年齡5~16歲,平均(10.8±3.2)歲。兩組受試者性別、年齡比較,差異均無統計學意義(χ2=0.113,t=1.144,P>0.05),具有可比性。本研究經我院倫理委員會審核通過,并由患兒監護人簽署知情同意書。

1.2 方法

1.2.1 PBMCs的分離 所有受試者于8:00~9:00采集空腹外周靜脈血5 ml,乙二胺四乙酸(EDTA)抗凝,聚蔗糖(Ficoll)(ρ=1.077)密度梯度離心法分離PBMCs。

1.2.2 PBMCs中MIF、IL-17及IL-23 mRNA的表達 采用實時定量RT-PCR,Trizol RNA提取試劑(美國Invitrogen公司)提取PBMCs總RNA,紫外分光光度儀測定RNA純度,吸光度值(A260/A280)介于1.8~2.0,1.5%瓊脂糖凝膠電泳鑒定RNA的完整性;采用PrimeScriptTMRT反轉錄試劑盒(TaKaRa,寶生物工程大連有限公司)合成cDNA第一鏈;設計MIF、IL-17和IL-23引物序列(見表1),經BLAST比對,由上海生工生物工程技術服務有限公司合成。采用SYBR Premix Ex TaqTMⅡ試劑盒(TaKaRa,寶生物工程大連有限公司)于Rotor-Gene 3000 real-time PCR儀(澳大利亞Corvett Research公司)上進行定量檢測;檢測數據用Rotor-Gene Real-Time Analysis Software 6.0軟件和雙標準曲線法進行分析。

1.2.3 血清MIF、IL-17和IL-23水平 采用ELISA法檢測,所有受試者于8:00~9:00采集空腹外周靜脈血3 ml,2 390×g離心5 min后吸取血清,-70 ℃保存待測。MIF、IL-17和IL-23試劑盒均購自美國R&D公司,嚴格按照試劑盒操作要求進行檢測。

表1 MIF、IL-17、IL-23及β-actin引物序列

注:MIF=巨噬細胞游走抑制因子

2 結果

2.1 PBMCs中MIF、IL-17和IL-23 mRNA表達水平

2.1.1 RT-PCR曲線 目的基因(MIF、IL-17和IL-23)和內參基因(β-actin)標準曲線直線擬合度良好,直線相關性好,可在較寬范圍內進行定量分析(見圖1);擴增曲線呈S型,整條曲線走行光滑,重復表現一致,擴增結果理想(見圖2);熔解曲線表現為單峰,擴增特異性和重復性良好(見圖3)。

2.1.2 mRNA表達水平 病例組MIF、IL-17和IL-23 mRNA表達水平高于對照組,差異均有統計學意義(P<0.01,見表2)。

2.2 血清MIF、IL-17和IL-23水平 病例組血清MIF、IL-17和IL-23水平高于對照組,差異均有統計學意義(P<0.01,見表2)。

注:MIF=巨噬細胞游走抑制因子

圖1 β-actin、MIF、IL-17和IL-23 RT-PCR的標準曲線

Figure1 The standard curve of β-actin,MIF,IL-17 and IL-23 by real-time RT-PCR

圖2 β-actin、MIF、IL-17和IL-23實時定量RT-PCR的擴增曲線

Figure2 The amplification curve of β-actin,MIF,IL-17 and IL-23 by real-time RT-PCR

2.3 相關性分析 線性相關分析結果顯示,AD患兒PBMCs中MIF mRNA表達水平(r=0.418,P=0.011,見圖4A)及血清MIF水平(r=0.419,P=0.011,見圖4B)與SCORAD評分均呈正相關;PBMCs中MIF mRNA表達水平與IL-17 mRNA、IL-23 mRNA表達水平均呈正相關(rIL-17 mRNA=0.395,P=0.017,見圖4C;rIL-23 mRNA=0.422,P=0.010,見圖4D),血清MIF水平與IL-17、IL-23水平均呈正相關(rIL-17=0.407,P=0.014,見圖4E;rIL-23=0.375,P=0.024,見圖4F)。

圖3 β-actin、MIF、IL-17和IL-23實時定量RT-PCR的熔解曲線

Figure3 The melt curve of β-actin,MIF,IL-17 and IL-23 by real-time RT-PCR

Table2 Comparison of mRNA expression of MIF,IL-17 and IL-23 in PBMCs and serum levels between the two groups

組別例數mRNA表達水平MIF IL-17 IL-23血清水平MIF(μg/L) IL-17(ng/L) IL-23(ng/L)對照組331.83±0.691.77±0.510.92±0.22 9.80±2.21 11.71±2.0818.97±4.39病例組365.93±2.356.76±1.873.21±0.7334.92±8.7333.29±5.7054.62±9.69t值10.03915.40517.91516.67821.23819.940P值<0.01<0.01<0.01<0.01<0.01<0.01

注:PBMCs=外周血單個核細胞

圖4 AD患兒MIF與疾病嚴重程度評分及IL-17、IL-23的相關性

Figure4 Correlation between MIF and SCORAD score,IL-17,and IL-23 in AD children

3 討論

MIF是一種重要的免疫調節因子,在多種變應性疾病的發生、發展中發揮著重要作用[7-10]。本研究結果顯示,病例組患兒PBMCs中MIF mRNA表達水平及血清MIF水平均高于對照組,且線性相關分析結果顯示,AD患兒PBMCs中MIF mRNA表達水平及血清MIF水平均與SCORAD評分呈正相關。MIF與T淋巴細胞存在相互作用,活化的T淋巴細胞是MIF的主要來源,當T淋巴細胞受到特異性抗原刺激后,T淋巴細胞中MIF mRNA表達水平和蛋白分泌量均明顯增多,應用抗MIF抗體后抗原特異性T細胞的增殖受到明顯抑制[11];反之,MIF又可促進T細胞的增殖及多種細胞因子的產生。

綜上所述,MIF在AD患兒中高表達,且與IL-17、IL-23密切相關,炎性因子間的相互作用可能共同參與了AD的發生、發展。但本研究樣本量較小,且為單中心研究,各細胞因子間的作用途徑、方式及可能機制尚有待深入探討,這也是今后的研究重點和方向。

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