響應曲面法優化海紅果水溶性多糖提取工藝及抗氧化活性的研究

賈琳斐，郭 姣，李清宇，范巧寧，張偉剛，彭 晶，段玉峰

（陜西師范大學食品工程與營養科學學院，陜西西安710119）

響應曲面法優化海紅果水溶性多糖提取工藝及抗氧化活性的研究

賈琳斐，郭 姣，李清宇，范巧寧，張偉剛，彭 晶，段玉峰*

（陜西師范大學食品工程與營養科學學院，陜西西安710119）

采用響應曲面法優化海紅果水溶性多糖（MPB）提取工藝的條件。在單因素實驗基礎上依據回歸分析確定最佳工藝條件為：提取溫度86℃，提取時間4h，料液比1∶28g/mL，MPB的實際提取率可達8.33%。用MPB對羥基自由基（·OH）、超氧陰離子自由基（O2-·）、DPPH自由基進行清除能力和還原力的測定，研究MPB的抗氧化能力。結果表明，MPB對·OH、O2-·、DPPH均有一定的清除能力，對DPPH的清除作用尤為明顯，當質量濃度達到1mg/mL時，清除率達到87.12%，接近VC的94.47%，且MPB清除DPPH的IC50值為1.181mg/mL。

海紅果，多糖，響應面分析，抗氧化活性

海紅果（Malus prunifolia（wild）Borkh）是薔薇科蘋果屬楸子的果實[1]，學名西府海棠，又名海紅子、海棠果、子母海棠、小果海棠[2]，主要分布于我國的晉、陜、蒙三省交界處[3]。海紅果營養豐富，經常食用可健胃消食、增強食欲[4]，軟化血管，成分分析研究表明，海紅果中含有人體必需的氨基酸、維生素及各種微量元素，素有“鈣王”之稱[5]，某些地區以海紅果代替山楂入藥，具有醒腦提神、去膩除腥的功效。

目前海紅果的研究主要集中在果制品、保健食品等領域，應用在化妝品研發和藥物治療方面少之又少[6]。經研究，植物多糖具有增強免疫[7]、降血糖、降血脂、抗病毒、抗腫瘤、抗衰老[8-9]的作用。海紅果中含有大量的多糖[10]，多糖的提取方法有水提法、酶提法、微波提取法、超聲波輔助提取法等[11]，本研究以海紅果為原料，應用響應曲面法優化熱水浸提法提取海紅果中多糖的最佳工藝條件，以期為海紅果多糖的開發和綜合研究提供理論依據[12]。大部分多糖具有抗氧化作用[13]，目前對海紅果多糖抗氧化活性的研究尚未見相關報道。本實驗對海紅果多糖粗提物進行了抗氧化活性研究，以期為進一步研究海紅果多糖的性質及功能奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

海紅果 購于山西保德縣；95%乙醇、苯酚、濃硫酸、葡萄糖 均為分析純；1，1-二苯基-2-苦苯肼自由基（DPPH）、抗壞血酸（VC）、鐵氰化鉀（[K3Fe（CN）6]）、三羥基甲基氨基甲烷（Tris）、鄰苯三酚（焦性沒食子酸）、水楊酸 均為國產分析純試劑。

紫外分光光度計 北京普析通用儀器有限責任公司；旋轉蒸發儀 上海亞榮生化儀器廠；ALPHA 1-4型真空冷凍干燥機 德國CHRIST公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 海紅果多糖提取工藝 海紅果→粉碎→烘干（50℃）→取其粉末（加95%乙醇溶解）→水浴加熱（80℃，4h）→濾渣→烘干（50℃）→取粉末溶解（加蒸餾水）→水浴加熱→濾液→減壓濃縮至原溶液體積的1/3→醇沉（三倍體積95%乙醇，靜置12h）→取沉淀溶解（加蒸餾水）→脫蛋白（加入1/3體積氯仿∶正丁醇為3∶1）→攪拌→離心（30min，3000r/min）→上清液→透析48h→冷凍干燥→得海紅果粗多糖。

1.2.2 單因素實驗設計

1.2.2.1 時間對多糖提取率的影響 準確稱50g海紅果粉末分別置于500mL的圓底燒瓶中，按提取溫度為70℃，料液比為1∶20（g/mL），考察不同提取時間對多糖提取率的影響，設計提取時間為2、3、4、5、6h，采用苯酚硫酸法測其多糖提取率。

1.2.2.2 溫度對多糖提取率的影響 準確稱50g海紅果粉末分別置于500mL的圓底燒瓶中，按提取時間為4h，料液比為1∶20（g/mL），考察不同提取溫度對多糖得率的影響，設計提取溫度為50、60、70、80、90℃，采用苯酚硫酸法測其多糖提取率。

1.2.2.3 料液比對多糖提取率的影響 準確稱50g海紅果粉末分別置于500mL的圓底燒瓶中，按提取時間為4h，提取溫度為80℃，考察不同提取溫度對多糖提取率的影響，設計料液比為1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶30g/mL，采用苯酚硫酸法測其多糖提取率。

1.2.3 海紅果多糖提取工藝條件優化 在單因素實驗的基礎上，采用Design Expert 7.1.6統計分析軟件中Box-Behnken實驗設計原理[14]，設計響應曲面分析實驗。各因子編碼值見表1。

表1 響應面分析因素與水平Table 1 Factors and levels of RAS test

1.2.4 葡萄糖標準曲線的繪制 精確稱取葡萄糖標準溶液0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2mL分別置于干燥的試管中，各以水補至2.0mL，然后加入5%的苯酚溶液1.0mL及濃硫酸5mL，充分搖勻，室溫放置30min后在488nm處測定各溶液的吸光度，以2.0mL水按同樣步驟作為空白對照，再以葡萄糖濃度x（μg/mL）為橫坐標，吸光度y（Abs）為縱坐標制作標準曲線，得到葡萄糖標準線性回歸方程。

1.2.5 多糖提取率計算

1.2.5.1 葡萄糖標準曲線的繪制 采用苯酚-硫酸法[15]。

1.2.5.2 多糖提取率的測定 稱取海紅果粗多糖20.0mg，用蒸餾水溶解并轉移至500mL容量瓶中，定容至刻度，搖勻之后，吸取2mL按照1.2.4制作標準曲線的操作方式操作后在488nm處測定吸光度，代入回歸方程計算多糖含量，根據公式計算多糖的提取率：

式中：W1：海紅果粉末的質量（g）；W2：由W1提取的粗多糖的質量（g）；W3：從W2中稱取的用于分析測定的粗多糖的質量（g）；V：溶解W3定容后的體積（L）；C：由回歸方程計算所得的多糖的濃度（g/L）。

1.2.6 體外抗氧化活性的研究

1.2.6.1 MPB對羥基自由基（·OH）的清除作用 采用水楊酸法[16]，向試管中依次加入2mL 6mmol/L的FeSO4以及2mL不同濃度的多糖溶液，6mmol/L的H2O2溶液2mL，搖勻，靜置10min，再加入6mmol/L的水楊酸溶液2mL，搖勻，靜置30min后與510nm處測定吸光值，以VC作陽性對照，·OH的清除率按以下公式計算：

式中：A0—不加樣品溶液的吸光值；As—加入樣品溶液反應后的吸光值；Ax—不加水楊酸溶液時MPB的吸光值。

1.2.6.2 MPB對超氧陰離子自由基（O2-·）的清除作用 采用鄰苯三酚自氧化法[17]。取pH為8.12的Tris-HCL緩沖液6mL，分別加入不同質量濃度MPB溶液0.5mL，37℃水浴10min，最后加入預熱過的7mmol/L鄰苯三酚鹽溶液（PR）1mL，混勻后精確反應4min，用0.5mL濃鹽酸終止反應，測325nm處吸光度值A，即為加入MPB溶液后鄰苯三酚的自氧化速率A樣品。以VC作陽性對照，O2-·的清除率按以下公式計算：

式中：A0—鄰苯三酚自氧化速率空白對照；A—加入樣品溶液反應鄰苯三酚自氧化速率。

1.2.6.3 MPB對DPPH·的清除作用 采用DPPH氧化法[18]，反應的總體積為4mL，首先加入1mL不同濃度的MPB溶液，再加入3mL 2×10-4mol/L DPPH·溶液（用95%乙醇配制）充分搖勻，室溫靜置35min，以95%乙醇調零，陰性對照不加樣，并以VC作為陽性對照，最后在517nm處測各自的吸光度。DPPH·的清除率按以下公式計算：

式中：A—樣品的吸光度；Ai—陰性對照。

1.2.6.4 還原能力的測定 MPB的還原力的測定按文獻[19]進行，往配制好的不同濃度的MPB溶液中加入3mL，0.2mol/L的磷酸鹽緩沖液（pH=6.8）和2.5mL 1%的鐵氰化鉀（[K3Fe（CN）6]）溶液，45℃水浴30min，加入2mL蒸餾水和1mL FeCl3（0.1%），以VC作為陽性對照，與700nm處測定吸光值，吸光度值越大，還原能力越強。

2 結果與分析

2.1 葡萄糖標準曲線方程

葡萄糖標準線性回歸方程為y=0.1013x+0.0886，R2=0.9983。

2.2 單因素實驗結果與分析

2.2.1 時間對海紅果多糖提取率的影響 如圖1所示，時間對海紅果多糖提取率的影響顯著，在2～4h內海紅果多糖提取率隨提取時間的延長而呈逐漸上升趨勢；當時間超過4h，隨時間的延長提取率逐漸下降，這可能是因為，加熱時間過長，多糖易發生水解，導致提取率下降。綜合考慮，選定提取時間為3～5h為最佳提取時間。

圖1 提取時間對多糖提取率的影響Fig.1 Effect of extraction time on extraction rate

2.2.2 溫度對海紅果多糖提取率的影響 由圖2可知，當溫度在50～80℃之間時，海紅果多糖提取率隨提取溫度的升高而呈逐漸上升趨勢，當溫度超過80℃時，多糖提取率隨溫度的升高而逐漸下降，這可能是由于溫度過高會影響多糖結構導致其降解，所以，選70～90℃作為最佳提取溫度。

圖2 提取溫度對多糖提取率的影響Fig.2 Effect of temperatures on extraction rate

2.2.3 料液比對海紅果多糖提取率的影響 由圖3可看出當料液比在1∶10、1∶15、1∶20、1∶25g/mL時，多糖的提取率隨加水量的增加而呈上升趨勢，這是由于水量多有利于多糖的擴散傳質；當料液比超過1∶25時，由于水量過多導致蒸發困難，而底物濃度過低，多糖的提取率呈逐漸下降趨勢，所以，選擇料液比為1∶20～1∶30g/mL為最佳料液比。

2.3 響應面優化海紅果多糖提取工藝

2.3.1 響應面實驗設計與結果 根據Box-Benhnken中心組合實驗設計原理，綜合單因素實驗結果，選取提取時間、提取溫度、料液比三個因素，在單因素實驗的基礎上采用三因素三水平的響應面分析方法，研究三因素不同組合對海紅果提取率的影響。實驗因素和水平及實驗結果見表2。

圖3 料液比對多糖提取率的影響Fig.3 Effect of ratio of material to water on extraction rate

表2 Box-Benhnken實驗設計及海紅果多糖提取率的響應曲面值Table 2 Box-Behnken design matrix and response values for the yield of MPB

通過中心組合實驗設計，得到17組實驗，其中1、2、8、10、13是中心實驗，用來估計實驗誤差，其余是析因實驗。對提取溫度、提取時間、料液比作如下換算：A=（T-80）/10，B=（t-4）/1，C=（a-25）/5，以三次實驗所得多糖的平均值為響應值（D），得到回歸方程：D=8.00-0.29A-0.18B+0.33C+0.068AB+0.025AC+0.93BC-1.53A2-0.43B2-0.9C2，實驗設計與實驗結果見表3。

由表3可知，模型的校正決定系數R2adj=0.9713，說明該模型可以解釋97.13%的響應值變化，相關系數R=0.9975，說明響應值（提取率）的變化有99.75%來源于所選變量，即提取溫度、提取時間和料液比，表明此模型擬合度較好，實驗誤差小。模型變異系數CV值為4.26，CV值越小說明實驗穩定性越好。由表4可知，各因素中一次項A、B、C是顯著的，交叉項BC是極顯著的，二次項A2、C2是極顯著的，B2是顯著的。

表3 模型方差分析Table 3 Variance for regression equation

2.3.2 響應曲面分析 根據回歸方程，作響應曲面圖，考察所擬合的響應曲面的形狀，分析提取時間、提取溫度和料液比對海紅果得率的影響，響應曲面如圖4～圖6所示，3組圖直觀地反映了各因素對響應值的影響。

圖4 D=F（A，B）的響應面Fig.4 Responsive surface plot D=F（A，B）

由圖4可知，當料液比為最佳值（1∶28）時，提取溫度和提取時間對多糖提取率的交互作用。隨著溫度的上升、時間的延長多糖提取率均呈現先上升后下降的趨勢。提取溫度和提取時間分別在70～90℃和3～5h的范圍內，多糖提取率可以達到本次實驗的最大值。

圖5 D=F（A，C）的響應面Fig.5 Responsive surface plot D=F（A，C）

由圖5可知，當提取時間為最佳值（4h）時，提取溫度和料液比對多糖提取率的交互作用。隨溫度的上升，料液比的增大多糖提取率均呈現先上升后下降的趨勢。提取溫度在70～90℃范圍，液料比在1∶20～1∶30范圍時有較高的多糖提取率。

圖6 D=F（B，C）的響應Fig.6 Responsive surface plot D=F（B，C）

由圖6可知，當提取溫度為最佳值（86℃）時，提取時間和料液比對多糖提取率的交互作用。隨著提取時間的延長和料液比的增加呈現先升高后降低的趨勢。提取時間在3～5h范圍，料液比在1∶20～1∶30范圍時有較高的多糖提取率。

由軟件可得海紅果多糖的最佳提取條件工藝為：提取溫度85.8℃，提取時間3.95h，料液比1∶28.08，此時提取率達8.36%。為實際操作方便，將工藝條件修正為：提取溫度86℃，提取時間為4h，料液比為1∶28g/mL，此時提取率為8.33%，實際測定值與理論預測值相差0.03%。

表4 提取回歸分析結果Table 4 Results of extraction regression analysis

2.4 MPB體外抗氧化活性結果與分析

2.4.1 MPB對·OH清除作用 MPB和VC對·OH的清除效果見圖7。由圖7可知，MPB和VC在0.2～1mg/mL范圍內清除·OH有較好的量效關系，二者均隨濃度的增加清除率增強。MPB對·OH的清除率由27.69%增至48.41%，低于同質量濃度下抗壞血酸的清除率。

圖7 MPB和VC對·OH清除效果Fig.7 Scavenging effect of MPB and VCon hydroxyl free

2.4.2 MPB對O2-·清除作用 MPB和VC對O2-·清除作用見圖8，由此圖可以看出，在0.2～1mg/mL的范圍內，MPB和VC對O2-·自由基的清除具有量效關系。在小于0.4mg/mL的范圍內，MPB對O2-·的清除作用不明顯；0.4～1mg/mL時，隨著MPB濃度的增加對O2-·的清除率逐漸增強，由1.98%增至14.66%。

圖8 MPB和VC對O2-·清除效果Fig.8 Scavenging effect of MPB and VCon superoxide anion free radicals

2.4.3 MPB對DPPH·清除作用 MPB和VC對DPPH·清除作用見圖9，由圖9可以看出，MPB對DPPH自由基具有一定的清除作用。隨著質量濃度增大清除率逐漸增加，在0.2～1mg/mL的范圍內，清除率由49.24%增至87.12%，在1mg/mL濃度時，接近VC的清除率94.47%。對MPB作回歸曲線，得到方程：Y=0.929x+ 0.3057（R2=0.909），計算得出MPB清除DPPH的IC50值為0.209mg/mL；同法，得到VC回歸曲線方程：Y=0.4948x+ 0.3711（R2=0.9852），計算得出，VC的IC50值為0.058mg/mL，小于DPPH的IC50值。

2.4.4 MPB還原能力測定 MPB和VC的還原力測定結果見圖10。由圖10可以看出隨著VC和MPB濃度增加，吸光度值逐漸增加，還原力逐漸增強；在0.2～1mg/mL范圍內，MPB和VC還原力表現出一定的量效關系。同濃度VC的還原力略大于MPB。

圖9 MPB和VC對DPPH·清除效果Fig.9 Scavenging effect of MPB and VCon DPPH radical

圖10 MPB和VC的還原能力Fig.10 Reducing power of MPB and VC

3 結論

本研究通過單因素及響應曲面法實驗，確定海紅果多糖的提取率的最佳工藝參數為：提取溫度86℃，提取時間4h，料液比1∶28g/mL，海紅果多糖的實際提取率可達8.33%。體外抗氧化實驗結果表明，MPB對、和自由基均有一定的清除活性，且MPB的還原能力較佳，其中MPB對DPPH·清除活性尤其明顯，IC50可達1.181mg/mL。

[1]劉軍海，黃寶旭，蔣德超.響應面分析法優化艾葉多糖提取工藝研究[J].食品科學，2009，30（2）：114-118.

[2]郝志鵬，馬麗杰，吳敬，等.海紅果多糖提取工藝及體外抗氧化活性研究[J].食品科學，2012，33（18）：88-92.

[3]程正濤，丁慶波，張昊，等.海紅果多酚提取工藝優化[J].食品科學，2010，31（24）：172-176.

[4]趙亮，劉恩荔，李青山，等.紫外分光光度法測定海紅果中總黃酮的含量[J].山西醫科大學學報，2006，37（2）：169-171.

[5]趙福詩，趙麗芹.我國華北地區海紅果生產現狀及發展前景[J].內蒙古農業科技，2008（2）：94-96.

[6]趙亮.海紅果藥用價值的初步研究[D].太原：山西醫科大學，2006.

[7]Yang Yue-hui，Jiang Qing-hua，Ding Ping-tian.Advances in studies on analytical methods of polysaccharides in plant[J]. Chinese Traditional and Herbal Drugs，2011，42（6）：1239-1242.

[8]Jin Di，Liang Ying，Sun Gong-bing，et al.Research progresses on extracting techniques of plant polysaccharide[J].Journal of Heilongjiang Bayi Agricultural University，2011，23（5）：76-79.

[9]Ge Y，Duan Y F，Fang G Z，et al.Study on biological activities of Physalis alkekengi var francheti polysaccharide[J].J Sci Food Agric，2009，89（9）：1593-1598.

[10]楊翠玲.海紅果化學成分的研究[D].太原：山西醫科大學，2007.

[11]伊艷，高文宏，于淑娟.多糖提取技術的研究進展[J].食品工業科技，2007，28（2）：248-249.

[12]王晶.基于響應曲面法的多響應文穩健性參數優化方法研究[D].天津：天津大學，2009.

[13]劉杰超，焦中高，周紅平，等.水果活性多糖的研究現狀與展望[J].食品科學，2008，29（10）：675-679.

[14]張惟杰.糖復合物生化研究技術[M].浙江：浙江大學出版社，2003：10-12.

[15]董艷紅，李姝婧，鄭惠華，等.響應曲面優化超聲波提取靈芝多糖工藝研究[J].食品科學，2009，30（16）：98-101.

[16]吳蘭芳，景永帥，張振東，等.吊燈花提取物體外抗氧化活性評價[J].食品工業科技，2010，31（11）：78-80.

[17]何釗，馮穎，孫龍，等.黃粉蟲多糖響應面法提取及抗氧化活性[J].食品與生物技術學報，2011，30（5）：641-647.

[18]聶少平，謝明勇，羅珍.用清除有機自由基DPPH法評價茶葉多糖的抗氧化活性[J].食品科學，2006，27（3）：34-36.

[19]Isabel C F R Ferreira，Maria-Joao R P Queiroz，Miguel Vilas -Boas，et al.Evaluation of the antioxidant properties of diarylamines in the benzo[b]thiophene series by free radical scavenging activity and reducing power[J].Bioorganic＆Medicinal Chemistry Letters，2006，1384-1387.

表5 L9（34）正交實驗設計及結果Table 5 The design and results of orthogonality experiment

3 結論

從徐州地區的24份天然發酵泡菜和50份天然發酵酸菜中初篩出174株產酸菌株；復篩后選出6株發酵乳pH低于3.6的菌株，進行耐酸性實驗，發現菌株HLAB0143能在pH2.5的條件下生長，具有良好的耐酸能力，紙層析顯示其發酵液主要為乳酸。采用形態學、生理生化實驗和16s rDNA測序分析，確認該菌株為干酪乳桿菌。通過正交實驗，確定了該菌株的最佳生長條件，即溫度為37℃、接種量為1%（v/v）、初始pH控制為5。該菌株耐受低pH的主要機制為具有谷氨酸脫羧酶系活性，可轉化谷氨酸為γ-氨基丁酸。生長特性和耐酸機制的定性研究為該菌株的后續研究和開發應用奠定了基礎。

參考文獻

[1]趙婧，李慧，張玉玉，等.高產酸乳酸菌的篩選、鑒定和生長特性研究[J].食品工業科技，2013，23（3）：173-176.

[2]張大為，張潔，丁成華.嬰兒腸道內嗜酸乳桿菌L2的篩選及菌株代謝產物的初步研究分析[J].食品科學，2008，29（4）：221-226.

[3]馬德功，王成忠，崔文文，等.發酵香腸乳酸菌發酵劑篩選標準[J].肉類研究，2007，21（12）：36-38.

[4]茍興華，王艷文，李翔，等.耐酸乳酸菌的篩選及初步鑒定[J].成都大學學報，2010，29（2）：95-97.

[5]鄭睿行，馬力，曾劍超，等.嗜酸乳桿菌發酵乳飲料生產工藝和穩定性的研究[J].農產品加工，2008（1）：41-42.

[6]金蘇.發酵菌種和益生菌在乳酸菌相關產品中的健康新應用[C].乳酸菌與健康國際研討文集，2005：73.

[7]Rajiv I，Dave，Nagendra P.Viability of Yoghurt and Probiotic Bacteria in Yoghurts Made from Commercial Starter Cultures[J]. International Dairy Journal，1997（5）：31-41.

[8]Kalantzopoulos G.Fermented Products with Probiotic Qualities [J].Anaerobe，1997，10：185-190.

[9]Cathy J，Saloff C.Health benefits of fermented milks and probiotics：an overview[J].Danone World Newsletter，1997（15）：1-10.

[10]Fumiyasu I.Probiotics from Present to Future[J].The 2nd International symposium on Lactic Acid Bacteria and Health，2006（5）：30-31.

[11]金龍，王志耕，薛秀恒，等.優良發酵劑的篩選鑒定及菌株生長條件優化的研究[J].包裝與食品機械，2010（2）：21-26.

[12]茍興華，王艷文，李翔，等.耐酸乳酸菌的篩選及初步鑒定[J].成都大學學報，2010，29（2）：95-97.

[13]東秀珠，蔡妙英，等.常見細菌系統鑒定手冊[M].北京：科學出版社，2001：364-366.

[14]霍貴成.乳酸菌的研究與應用[M].北京，中國輕工業出版社，2007：54-56.

Study on optimization of water-soluble polysaccharides extraction from Malus prunifolia（wild）Borkh using response surface methodology and its antioxidant activities in vitro

JIA Lin-fei，GUO Jiao，LI Qing-yu，FAN Qiao-ning，ZHANG Wei-gang，PENG Jing，DUAN Yu-feng*
（College of Food Engineering and Nutritional Science，Shaanxi Normal University，Xi’an 710119，China）

Box-Behnken design was used to optimize the extraction conditions of water-soluble polysaccharides from Malus prunifolia（wild）Borkh.The experimental data were fitted to a second-order polynomial equation using multiple regression analysis and also examined using the appropriate statistical methods.The optimum extraction conditions were：optimized extraction time 4h，extraction temperature 86℃，and ratio of water to raw material 1∶28g/mL，the predicted yield of polysaccharides extracted was 8.33%.The antioxidant activity of the extraction was evaluated by scavenging hydroxyl radical（·OH），superox ide an ion free radical（O2-·），1-diphenyl-2-picrylhydrazy（DPPH·）and reducing power.The in vitro antioxidant results showed that the inhibition effects of MPB on·OH，O2-·，DPPH significant，MPB showed significant inhibitory effects on DPPH with IC50values of 1.181mg/mL，when the concentration of polysaccharides up to 1mg/mL，the scavenging capacity reached 87.12%，close to 94.47%by VC.

Malus prunifolia（wild）Borkh；polysaccharides；response surface methodology；antioxidation

TS201.2

B

1002-0306（2014）10-0252-06

10.13386/j.issn1002-0306.2014.10.048

2013－08－28 *通訊聯系人

賈琳斐（1987-），女，碩士研究生，研究方向：食品功能成分開發及利用。

陜西省自然科學基金項目（2003B08，2006B16）。