基質栽培鹽分積累成因的研究進展

（1北京市農林科學院蔬菜研究中心，北京100097；2中國農業大學資源與環境學院，北京100193）

基質栽培鹽分積累成因的研究進展

熊 靜1，2陳 清2劉 偉1*

（1北京市農林科學院蔬菜研究中心，北京100097；2中國農業大學資源與環境學院，北京100193）

基質栽培作為一種高產高效的栽培方式，也存在根際鹽分積累導致作物生理障礙、產量和品質下降等問題。本文從栽培環境、營養液、養分離子特性及基質種類等方面綜合分析了導致基質栽培根區鹽分積累的原因，并對今后的研究重點進行展望。

基質栽培；鹽分積累；栽培環境；營養液；養分離子

鹽分積累已成為導致作物產量和品質下降的主要農業環境問題之一（Parida & Das， 2005）。在蔬菜種植過程中，鹽分積累易導致多種蔬菜出現各種各樣的病癥，如番茄和甜椒的臍腐病、茄子內部腐爛、結球萵苣和大白菜的干燒心、芹菜的黑心病等（Savvas & Lenz，1996；Navarro et al.，2002）。鹽分主要通過兩個途徑影響作物的正常生長：① 根際環境的滲透勢上升，進而產生滲透脅迫，影響作物對水分的吸收，導致作物體內鹽分積累；② 作物養分失衡和產生特殊離子毒害（L?uchli & Epstein，1990）。累積的鹽分對作物的影響表現在生理水平、激素水平和蛋白水平三個方面，如易導致作物葉片數、根系面積、根系活力、蒸騰速率、水分利用率、光合速率降低和質膜透性升高（Albacete et al.，2008；Stella et al.，2011）；葉片、木質部汁液和根系中脫落酸、乙烯的含量上升，細胞分裂素和生長素的含量降低（Albacete et al.，2008）；高鹽脅迫下，番茄耐鹽基因HAL1表達力增強，合成新蛋白物質抵抗鹽脅迫及逆向運輸蛋白表達力增強和NHX活性降低（Amini et al.，2007；Mu?oz-Mayor et al.，2008）。

與土壤栽培相比，基質栽培具有根際環境可控性強，作物產量高、品質好、潔凈無污染等優點，是克服連作障礙、實現非耕地蔬菜生產的有效方式。但隨著基質使用時間的延長，基質栽培也存在根際鹽分積累的問題。本文從栽培環境、營養液、養分離子的特性和基質類型幾個方面綜合分析了基質栽培中鹽分積累的原因，旨在為今后開展避免或緩解基質鹽分積累的研究梳理思路。

1 栽培環境

設施栽培大多是在連棟溫室、日光溫室或塑料大棚等密閉的設施環境中進行，溫度、濕度和通氣狀況均與露地栽培有很大區別，鹽分積累現象較為嚴重。溫室四季被覆蓋，室內溫度一般比室外高7～20 ℃（傅理 等，2009；邱玉賓 等，2013），高溫致使土壤水分不斷從地表蒸發，導致根區鹽分離子濃度上升。其次，設施環境的高溫和通氣狀況差致使室內空氣濕度較高，陰天或灌水后濕度可高達90%以上（廉華，2001），高濕抑制了作物的蒸騰作用，使得礦質營養的運輸能力降低，生命力減弱，對養分的吸收量減少從而進一步導致根系環境中鹽分離子的累積。因缺乏雨水的沖洗，根區鹽分的積累難以得到緩解。以上現象在土壤設施栽培中十分明顯，設施基質栽培環境與設施土壤栽培基本一致，因此栽培環境對基質栽培鹽分積累的影響也類似。

露地基質栽培與露地土壤栽培類似，鹽分積累問題要小于設施栽培，鹽分積累的主要原因是由于肥料的過量投入，而環境因素的貢獻率相對較小。

2 營養液

營養液作為基質栽培中作物生長發育的養分和水分來源，對基質鹽分積累的影響也較大，主要從以下幾個方面影響著基質鹽分的積累。

2.1 水質

水質是保證作物安全高產的一個基本要素。配制營養液所用的水相當于一般農業生產中的灌溉水。農業用水的水質評價通常是考量其可溶性礦質元素和鹽分的含量，用電導率（EC值）來表征。適宜的灌溉用水標準為EC＜0.5 dS·m-1、Na+＜0.5 mmol·L-1，當灌溉水EC＞2 dS·m-1時，會對作物的生長產生鹽分脅迫，出現該現象的原因一是作物對水分的吸收量要大于礦質元素，使得礦質元素易濃縮在根區；二是水中的礦質元素還會改變營養液中的養分離子平衡，當營養液中的養分離子濃度超出作物的吸收量時根區就會出現養分離子的富集現象（Sonneveld，2000）。除了上述情況以外，水中還可能含有對作物生長產生危害的物質，導致作物出現病害進而減少養分的吸收，如富含過多的可溶性Fe2+與易造成作物葉片失綠，甚至枯死（van de Ende，1970）。針對水中的鹽分離子含量可能會導致根區鹽分的累積和對作物產生危害，Sonneveld（1993）提出了灌溉水中各礦質元素含量的適宜范圍，即Na+的適宜范圍為0.2～1.0 mmol·L-1、Cl-為0.3～1.5 mmol·L-1、Ca2+為0.7～2.0 mmol·L-1、Mg2+為0.3～0.7 mmol·L-1為0.5～1.5 mmol·L-1、Mn2+為5×10-3～15×10-3mmol·L-1、為10×10-3～55×10-3mmol·L-1、Zn2+為3×10-3～5×10-3mmol·L-1。

營養液用水主要為雨水或地下水。雨水具有低鹽分含量和低成本的優勢，但來源不穩定。地下水來源相對穩定、水質較安全，但面臨水資源緊缺的壓力。不同水源中可溶性礦質元素含量有很大的不同，如酸雨地區雨水中富含，沿海地區雨水中富含Na+和Cl-，鹽堿地地下水Na+、Cl-含量高，我國華北地區地下水Ca2+、Mg2+、等含量很高，給我國華北地區基質栽培的健康發展帶來了很大的挑戰（郭宇飛和井淼，2012）。在實際生產中，應對當地農業用水的可溶性礦質元素含量進行分析，根據其具體的鹽分組成和含量對營養液配方進行相應的調整。

2.2 肥料類型

不同化學離子對EC值的貢獻率不同，貢獻率的大小與離子的化合價、電離常數、離子活度、離子對的生成常數及液溫相關（McNel et al.，1970）。在配制營養液過程中所用肥料的種類不同，對根區EC值的貢獻率不同。不同肥料與根區EC的相互關系如圖1所示，其中K2SO4與EC的相關關系為EC=0.208 c+0.45、（NH4）2SO4為EC=0.204 c+0.44、Ca（NO3）2為EC=0.180 c+0.39、KNO3為EC=0.119 c+0.24、NaCl為EC=0.106 c+0.17、NaNO3為EC=0.100 c+0.18、MgSO4為EC=0.094 c+0.73。K2SO4的貢獻率最大，MgSO4的貢獻率最小（Sonneveld et al. ，1966）。因此在實際生產中，應根據作物對養分的需求量和EC值的需求特征來選擇肥料類型和用量。

2.3 營養液供應方式

營養液的供應方式分為開放式和封閉式。開放式是指營養液進入栽培系統后，回液不再被重新利用而直接排到環境中；封閉式是指營養液進入栽培系統后，回液經回收處理后繼續使用。開放式易造成水肥利用率低和農業環境污染；封閉式水肥利用率高，節水節肥效果明顯，是環境友好型的栽培方式（Savvas et al.，2005；Carmassi et al.，2007）。兩種供液方式均會有根區鹽分積累現象產生，原因一是養分供應與作物養分吸收之間的不匹配，在不同生育階段，作物對養分的選擇性吸收會導致不同生育期部分“無效離子”的積累；二是作物對營養液中水分的吸收量大于對養分離子的吸收量，營養液中的養分離子積累效果明顯（Zekki et al.，1996；Savvas & Manos，1999）。與開放式相比，封閉式基質栽培系統的根區鹽分積累問題更為嚴重，原因是營養液循環使用，營養液中積累的養分離子再次進入根區，更易導致根區EC值的上升。因此，為了減少根區鹽分的積累，Sonneveld等（1999）及De等（1999）研究建議，不同營養液供液系統中營養液配方也應相應有所調整（表1）。

關于封閉式無土栽培營養液EC值和離子濃度的變化與作物種植時間的相互關系已有學者進行了系統的研究，結果表明隨著種植時間的不斷推移，營養液的EC值和Ca2+、Mg2+、Na+、、Cl-的濃度逐漸增大，K+、的濃度逐漸降低（Myat et al.，2013），循環營養液中K+濃度范圍為5～8 mmol·L-1、Ca2+為11～14 mmol·L-1、Mg2+為2.0～2.7 mmol·L-1、Na+為0.5～0.6 mmol·L-1、為14～19 mmol·L-1、為4～5 mmol·L-1、為1～4 mmol·L-1、Cl-為0.3～0.5 mmol·L-1（Tae & Jung，2011）。隨著營養液循環時間的增加，對根區鹽分積累的貢獻率也增加。為減少封閉式系統中根區鹽分的累積，需要定期對營養液進行更換，更換周期要綜合考慮水肥利用率、作物產量與品質的最大化。營養液的更換方式分為兩種：一是將循環營養液全部排出，使用全新的營養液；二是循環營養液與新鮮的營養液按比例進行混合。在實際生產中，為了操作的方便常根據循環營養液的EC值來判斷是否更換營養液，同時還應建立相應的營養液更換時間預測模型（Carmassi et al.，2005；Savvas et al.，2005）。

表1 不同供液系統中適宜的營養液配方（巖棉）

Myat（2013）對巖棉封閉系統中種植辣椒時營養液的更換頻率進行了研究，結果表明，當營養液配方為14.17 mmol·L-1、1.14 mmol·L-1、5.92 mmol·L-1K+、8.85 mmol·L-1Ca2+、3.17 mmol·L-1Mg2+、3.2 mmol·L-1，微量元素濃度為1.05 mg·L-1Fe2+、0.64 mg·L-1Zn2+、0.09 mg·L-1Cu2+、0.57 mg·L-1Mn2+、0.08 mg·L-1，EC為2.5 dS·m-1，營養液更換頻率為8周1次時，辣椒的產量和水肥利用率最高，當周期更換為4周或12周時，水肥利用率或產量較低。營養液的更換周期受作物品種、作物生長狀況、營養液配方、當地溫光環境等因素的影響，因此建立EC值在線反饋調控和鹽分積累預測模型是實現基質栽培高產高效的技術保障。

2.4養分供應與吸收的關系

同一作物在不同生育期對各種養分的需求量不同，進而導致在不同生育期吸收量較少的離子易成為無效離子，殘留在循環營養液中加大基質中鹽分的積累，即產生養分供應與吸收的不匹配。甜菜在整個生育期內，對N的吸收速率表現出慢-快-慢的規律，對P、K的吸收速率則表現出逐漸上升的規律（趙沛義 等，2008）；黃瓜對N、P、K的吸收規律均呈S型曲線，結瓜期的養分吸收量最高（王麗英 等，2012）；番茄的吸K量則表現為營養生長階段低，坐果期高，Ca、Mg吸收量表現為營養生長階段高，結果期相對較低（Voogt，1988；Voogt & Sonneveld，1997）。

在基質栽培中養分來源于營養液，理論上講，為減少鹽分的累積可按照作物對養分的吸收規律來調整營養液配方。因此，Voogt（1993）給出了營養液配方的調整方案（表2）。但在實際生產中，實現配方的精準化調整難度較大，主要原因為：① 營養液配方含有Ca2+、Mg2+、Fe3+等陽離子和、等陰離子，由于不存在單一元素的肥料，因此根據養分吸收規律來調整某一元素含量時會帶入伴隨離子，導致該伴隨離子的濃度發生改變，成為過剩離子，同樣會造成鹽分積累；② 作物對養分的吸收受作物品種、生育階段、環境條件、作物生長狀況等諸多因素的影響，很難做到隨時根據作物的變化調整營養液配方；③ 關于營養液配方與作物的養分吸收及根區鹽分累積之間的相互關系研究還比較欠缺。在未來的研究工作中，需要探明作物的養分吸收與根區鹽分累積之間的相互關系，從而反饋調節營養液配方。

表2 循環系統中番茄不同生育期營養液配方參照標準配方的調整方案mmol·L-1

3 養分離子

導致根區EC值提高的主要養分離子為Ca2+、K+、Mg2+、Na+、、、Cl-（余海英，2006；曾希柏 等，2010）。養分離子主要從兩方面影響根區的鹽分累積，一是養分離子自身的理化性質；二是養分離子之間的相互作用。養分離子理化性質不同，被作物的吸收速率、在根區的停留時間和移動性也不同（Bugbee，2004；Gransee & Fǖhrs，2013）。如表3所示，作物易吸收N、P、K等元素，且在根區易被去除，因此它們對根區鹽分累積的貢獻率較低；Ca、Mg、S屬于中量元素，含量較高，而作物對其吸收速率較低，難以去除，因此它們對根區鹽分累積的貢獻率較高（Bugbee，2004）。

表3 營養液中養分元素的吸收特性和去除率分類

養分離子的累積從兩方面影響著作物對無機養分的吸收，一是根區溶液的養分離子總濃度（EC值），不論其組成成分是什么，EC值過高均會抑制作物對水分和養分的吸收和轉運；二是養分離子之間的比例，某些離子之間比例失衡會產生拮抗作用，其中一種離子的富集會導致其他離子的吸收障礙，最終造成作物的生理缺素。如在陽離子中，Ca2+與Mg2+屬于被動吸收，它們的吸收與、K+、Na+之間存在相互競爭的關系，當、K+、Na+含量過高時，會抑制Ca2+、Mg2+的吸收（Mills et al.，1996；Li et al.，2013）。Ca2+的缺乏易使番茄和辣椒患臍腐病，JeongSim等（2012）研究了Ca2+/對辣椒臍腐病發病率的影響，結果表明隨著比例的逐漸降低，辣椒的發病率逐漸上升，辣椒臍腐病的患病率與K+和濃度的相關系數分別達到了0.82和0.65，與濃度總和的相關系數達到了0.92。除了Ca2+與其他陽離子產生直接的拮抗作用以外，Na+對其他陽離子吸收也有明顯的抑制作用。在陰離子中，Cl-與之間拮抗作用較為明顯，主要表現為Cl-會抑制的吸收（Fried & Broashaed，1967）。

關于鹽脅迫對養分吸收的影響已經有了大量的研究成果，也逐步開始重視關于作物養分吸收受到抑制導致整個栽培系統離子間濃度失衡，進而加重鹽分積累的研究。離子的失衡主要包括營養液和根區環境中的離子失衡。目前，對隨著生育期的推移，營養液離子平衡的研究已取得實質性的進展，未來的研究工作將逐漸向根區環境推進。

4 基質種類

基質主要包括無機基質、有機基質和混合基質。基質顆粒一般帶負電荷，其對陽離子的吸附性強（李天林 等，1999；郭世榮，2011），不同種類基質的陽離子交換量（CEC）、化學組分等不同（表4）。陽離子交換量表征著基質對養分離子的吸附能力，陽離子交換量越大，對養分離子的吸附能力越強，陽離子在根區過分累積會導致鹽度的升高。基質中含有的營養元素可以供作物吸收利用和影響營養液的化學平衡，也會影響根區的鹽分濃度。有機基質在作物的生長過程中，其有機成分會發生分解釋放出養分，進而改變基質的化學成分（Bilderback et al.，2005）。有機基質的養分釋放強度遠遠大于無機基質，明確基質養分釋放規律和釋放強度，對營養液的科學化管理也有一定的參考價值。

表4 常用基質的理化性狀

5 展望

根際鹽分積累已成為制約基質栽培產量與品質大幅提高的重要因素，引起越來越多的科研人員和生產者的關注。但經過大量的文獻檢索發現，關于基質鹽分積累的成因仍然有很多研究的薄弱環節，如栽培環境對基質鹽分積累的影響，不同基質的養分釋放/吸附規律及對鹽分積累的影響，離子間拮抗作用對根區鹽分積累的影響等。加大對上述方面的研究，對進一步了解基質鹽分積累成因，采取有效措施控制基質鹽分積累具有重要意義。

傅理，張亞紅，吳素萍，單小軍，白青．2009．日光溫室溫度特征及溫室群智能卷閉簾系統的研發．農業現代化研究，30（3）：377-380．

郭世榮．2011．無土栽培學．北京：中國農業出版社．

郭宇飛，井淼．2012．北京通州區地下水水質成分檢測．內蒙古煤炭經濟，（5）：7-8．

李天林，沈兵，李紅霞．1999．無土栽培中基質培選料的參考因素與發展趨勢．石河子大學學報：自然科學版，3（3）：250-258．

廉華．2001．蔬菜產量形成與設施內環境因素之間的動態關系的研究〔碩士論文〕．哈爾濱：東北農業大學．

邱玉賓，李振龍，趙靖杰，楊志瑩，趙慶柱．2013．日光溫室溫度變化特點及控溫措施與郁金香生長發育的關系．山東農業科學，45（3）：68-70．

王麗英，張彥才，李若楠，武雪萍，翟彩霞，陳麗莉，吳會軍．2012．水氮供應對溫室黃瓜干物質積累、養分吸收及分配規律的影響．華北農學報，27（5）：230-238．

余海英．2006．設施土壤養分狀況及鹽分的累積、遷移特征〔碩士論文〕．雅安：四川農業大學．

曾希柏，白玲玉，蘇世鳴，李蓮芳．2010．山東壽光不同種植年限設施土壤的酸化與鹽漬化．生態學報，30（7）：1853-1859．

趙沛義，段玉，妥德寶，李煥春，劉梅，靳存旺，李瑛．2008．施肥對甜菜產量、物質積累和養分吸收規律的影響．華北農學報，23（6）：199-202．

Albacete A，Ghanem M E，Martínez-Andújar C，Acosta M，Sánchez-Bravo J，Martínez V，Lutts S，Dodd I C，Pérez-Alfocea F．2008．Hormonal changes in relation to biomass partitioning and shoot growth impairment in salinized tomato（Solanum lycopersicum L．）plants．Journal of Experimental Botany，59（15）：4119-4131．

Amini F，Ehsanpour A A，Hoang Q T，Shin J S．2007．Protein pattern changes in tomato under in vitro salt stress．Russ J Plant Physiol，54：464-471．

Bilderback T E，Warren S L，Owen J S，Albano J P．2005．Healthy substrates need physicals too！Hort Technology，15（4）：747-751．

Bugbee B．2004．Nutrient management in recirculating hydroponic culture．Acta Hort，648：99-112．

Carmassi G，Incrocci L，Maggini R，Malorgio R，Tognoni F，Pardossi A．2005．Modeling salinity build-up in recirculating nutrient solution culture．J Plant Nutr，28（3）：431-445．

Carmassi G，Incrocci L，Maggini R，Malorgio F，Tognoni F，Pardossi A．2007．An aggregated model for water requirements of greenhouse tomato grown in closed rockwool culture with saline water．Agricultural Water Management，88：73-82．

De K C，Wim V，Bos A L．1999．Bemestingsadviesbasis substraten．Naaldwijk：Proefstation voor Bloemisterij en Glasgroente．

Fried M，Broashaed H．1967．The soil-plant system．New York：Academic Press．

Gransee A，Fǖhrs H．2013．Magnesium mobility in soils as a challenge for soil and plant analysis，magnesium fertilization and root uptake under adverse growth conditions．Plant Soil，368：5-21．

JeongSim O，KiYoung C，YongBeom L，JongHyang B，DongEok K．2012．Analysis of contributing factor for cation ratio to calcium in nutrient solution on the incidence of blossom-end rot in sweet pepper‘RZ208’ grown in hydroponics．Kor J Hort Sci Technol，30（1）：27-33．

L?uchli A，Epstein E．1990．Plant response to saline and sodic conditions．Agricultural Salinity Assessment and Management，71：113-137．

Li Y，Qin J，Mattson N S，Ao Y．2013．Effect of potassium application on celery growth and cation uptake under different calcium and magnesium levels in substrate culture．Sci Hort，158：33-38．

McNeal B L，Oster J D，Hatcher J T．1970．Calculation of electrical conductivity from soil solution composition data as an aid to in-situ estimation of soil salinity．Soil Sci，110：405-414．

Mills H A，Jones J B，Wolf B．1996．Plant analysis handbook II: apractical sampling，preparation，analysis，andinterpretation guide．Athens：MicroMacro Publishing：8-35．

Mu?oz-Mayor A， Pineda B，Garcia-Abellán J O，Garcia-Sogo B，Moyano E，Atares A，Vicebte-Agullá F，Serrano R，Moreno V， Bolarin M C．2008．The HAL1 function on Na+homeostasis is maintained over time in salt-treated transgenic tomato plants，but the high reduction of Na+in leaf is not associated with salt tolerance．Physiol Plant，133：288-297．

Myat T K，Tae I A，Young Y C，Jung E S．2013．Uptake of nutrients and water by paprika （Capsicum annuum L．）as affected by renewal period of recycled nutrient solution in closed soilless culture．Hort Environ Biotechnol，54（5）：412-421．

Navarro J M，Garrido C， Carvajal M， Marinez V．2002．Yield and fruit quality of pepper plants under sulphate and chloride salinity．J Horticultural Science & Biotechnology，77（1）：52-57．

Parida A K，Das A B．2005．Salt tolerance and salinity effects on plants：a review．Ecotoxicology and Environmental Safety，60（3），324-349．

Savvas D，Lenz F．1996．Influence of NaCl concentration in the nutrient solution on mineral composition of eggplants grown in sand culture．Angew Bot，70：124-127．

Savvas D，Manos G．1999．Automated composition control of nutrient solution in closed soilless culture systems．J Agric Eng Res，73（1）：29-33．

Savvas D，Meletiou G，Margariti S．2005．Modeling the relationship between water uptake by cucumber and NaCl accumulation in a closed hydroponic system．Hort Sci，40（3）：802-807．

Sonneveld C，Koornneef P，van den Ende J．1966．De osmotische druk en het electrische geleidingsvermogen van enkele zoutoplossingen．Meded Dir Tuinb，29：471-474．

Sonneveld C．1993．Watervoorziening en waterkwaliteit bij teelten onder glas．Agrobiologische Thema′s，8：41-48．

Sonneveld C，Straver N，Donnan R．1999．Nutrient solutions for vegetables and flowers grown in water or substrates．Research station for floriculture and glasshouse vegetables．The Netherlands：Glasshouse Crops Research Station．

Sonneveld C．2000．Effects of salinity on substrate grown vegetables and ornamentals in greenhouse horticulture〔PhD Thesis〕．The Netherlands：Wageningen Agricultural University．

Stella L， Antonio S， Michele P，Teodoro D T， Adraino S．2011．Abscisic acid root and leaf concentration in relation to biomass partitioning in salinized tomato plants．Journal of Plant Physiology，169：226-233．

Tae I A ，Jung E S．2011．Changes in ion balance and individual ionic contributions to EC reading at different renewal intervals of nutrient solution under EC-based nutrient control in closed-loop soilless culture for sweet peppers（Capsicum annum L.‘Fiesta’）．Kor J Hort Sci Technol，29（1）：29-35．

van den Ende J．1970．Kwalititsnormen voor het gietwater．Bedijsonotwikkeling，l （7）：45-51．

Voogt W．1988．The growth of beefsteak tomato as affected by K/Ca ratios in the nutrient solution．Acta Hort，222：155-165．

Voogt W．1993．Nutrient uptake of year round tomato crops．Acta Hort，339：99-112．

Voogt W，Sonneveld C．1997．Nutrient management in closed growing systems for greenhouse production．Plant Production in Closed Ecosystems，83-102．

Zekki H，Gauthier L，Gosselin A．1996．Growth，productivity，and mineral composition of hydroponically cultivated greenhouse tomatoes，with or without nutrient solution recycling．J Amer Soc Hort Sci，121（6）：1082-1088．

Research Progress on Causes of Salt Accumulation in Substrate Culture

XIONG Jing1，2，CHEN Qing2，LIU Wei1*

（1Beijing Vegetable Research Center，Beijing Academy of Agriculture and Forestry Sciences，Beijing 100097，China；2College of Resources and Environmental Sciences，China Agricultural University，Beijing 100193，China）

As a high yielding and high efficient cultivation method，substrate culture also has some shortcomings such as physiological disorder，yield decline and quality losses，causes by salt accumulation in rhizosphere．This paper made a comprehensive analysis on the factors causing salt accumulation in rhizosphere in substrate culture，including environment，nutrient solution，properties of nutrient ions and substrate types，etc. This paper also prospected the future research orientation.

Substrate culture；Salt accumulation；Cultivation environment；Nutrient solution；Nutrient ions

熊靜，女，博士研究生，專業方向：環境科學與工程，E-mail：xjhappy. happy@163.com

*通訊作者（Corresponding author）：劉偉，女，研究員，碩士生導師，專業方向：設施園藝與無土栽培，E-mail：liuwei@nercv.org

2014-04-26；接受日期：2014-05-20

北京市果類蔬菜創新團隊項目（GCTDZJ2014033014），“十二五”農村領域國家科技計劃項目（2013AA103004），國家星火計劃項目（2012GA600002）