遲紅訓, 王幸幸, 梁景松
(遼東學院 化工與材料學院, 遼寧 丹東 118003)
近年來,隨著藥物化學和生物無機化學的迅猛發展,尤其是在細胞層次及分子層次上的無機藥物研究,人們逐漸發現金屬離子及其配合物藥物分子在消化吸收、轉運轉化和生物活性等方面的作用規律,獲得一系列金屬配合物的新穎診斷和治療效果,探討了金屬配合物與DNA的作用及其生物活性間的構效關系,掌握了許多無機準藥物分子的生物作用以及結構之間的依存關系[1-3],從分子水平上了解某些疾病的發病機理,闡明抗腫瘤藥物的作用機理,并通過分子設計來尋找低毒高效的治療藥物,對無機藥物體外篩選及研發具有重要的指導意義[4-6].過渡金屬配合物在醫學研究領域,尤其是在抗癌方面的研究日益受到重視,已成為目前研究的一個熱點[7-9].本文合成一個鈷配合物單晶,對結構進行了表征,研究配合物的分子結構和分子間弱作用,通過熒光光譜法研究了配合物與DNA的作用.
硝酸鈷,吡嗪-2,3-二羧酸,無水乙醇,均為分析純.魚精DNA(P的質量分數8 %) 為生化試劑.
Bruck smart 1000 CCD-X射線單晶衍射儀,Nicolet 470紅外光譜儀,PE-LS 55熒光光譜儀,D-MS-I 磁力攪拌器,PHS-3C精密數顯酸度計,E-201-C pH復合電極,AR2140電子分析天平,800B離心機.
將10 mL、15 mmol/L硝酸鈷水溶液與10 mL、15 mmol/L吡嗪-2,3-二羧酸水溶液混合.連續攪拌下,用0.1 mol/L鹽酸調節混合溶液pH值至4.8,攪拌8 h后pH值相對穩定為5.2.將該溶液過濾至燒杯中,室溫下放置3~4周,燒杯中有淡粉色晶體析出,濾紙過濾,收集晶體,于真空干燥器干燥,收率60 %.C6H10N2O8Co元素分析測定值(w/%):C 24.23;H 3.41;N 9.47.理論計算值(w/%):C 24.26;H 3.39;N 9.43.配合物紅外譜分析結果(σ/cm-1):3 419(s),2 360(s),1 600(s),1 444(m),1 384(m),1 130(m),825(m),767(m).
選取尺寸為0.24 mm×0.32 mm×0.19 mm的配合物單晶.在Bruker Smart 1000 CCDX單晶衍射儀上,用通過石墨單色器的Mo Kα為靶源(λ=0.071 073 nm),在一定范圍內收集其衍射數據.應用Saint軟件包對數據進行還原.采用直接法對晶體結構進行解析.氫原子采用理論加氫的方法獲得,其余非氫原子則采用最小二乘法及各向異性修正.通過X-射線衍射數據分析對配合物的分子結構進行分析,得到該配合物的配位結構如圖1所示.

圖1 配合物的配位結構Fig.1 Coordinated environment of complex
在配位化學研究領域,吡嗪羧酸類物質常被作為配體引入到金屬配合物中,這是因為它與過渡金屬離子之間具有很強的螯合作用.在其形成的金屬配合物中,存在氫鍵作用,從而構成零維、一維、二維以及三維結構.從圖1可以看到:配合物的每個中心離子Co(Ⅱ)采用六配位模式與其周圍的氮、氧原子及水分子形成一個八面體結構.其主要鍵長(nm)為:Co(1)—N(1),0.213(1);Co(1)—N(1)#1,0.213(1);Co(1)—O(1),0.206(1);Co(1)—O(1)#1,0.206(1);Co(1)—O(3),0.210(1);Co(1)—O(3)#1,0.210(1).主要鍵角(°)為:O(3)—Co(1)—N(1),88.35(5);O(3)—Co(1)—N(1)#1,88.35(5);O(3)—Co(1)—N(1),91.65(5);O(3)—Co(1)—N(1)#1,91.65(5).其中總鍵角之和等于360°,說明在形成的八面體結構中,參與配位的2個氮原子和2個氧原子處在同一平面上[10].這種配位模式特有的空間位阻和作用力,對整個結構的穩定性起到至關重要的作用.
從圖2可以看到:中心離子為Co(Ⅱ),它與其周圍的來自于2個不同的吡嗪-2,3-二羧酸配體的氮原子、氧原子以及2個水分子形成六配位的八面體結構.Co(Ⅱ)與2個相鄰的吡嗪-2,3-二羧酸配體反式螯合,形成一個以Co(Ⅱ)為中心的對稱的、無限延伸的一維鏈狀結構.

圖2 配合物一維結構Fig.2 One dimension structure of the complex
從圖3可以看出:一維鏈與一維鏈之間通過O—H…O的氫鍵作用,形成穩定的二維結構,其中O(2)—H(3A)的距離為0.189 7 nm.從圖4可以看到:配合物的三維空間結構是通過O(2)與H(3)之間C—H…O的氫鍵作用所形成.其中O(2)—H(3)之間的距離為0.241 7 nm.

圖3 配合物的二維氫鍵作用Fig.3 Two dimension structure of the complex

圖4 配合物的氫鍵作用Fig.4 Hydrogen bonds of the complex
溴化乙錠(EtBr)與DNA發生作用后,能夠破壞DNA原有緊密螺旋結構,阻止DNA進行復制轉錄,影響生物體的繁衍生殖進程.如果所合成的化合物(M)與EtBr具有相似結構,且熒光不強,就能夠和EtBr分子競爭與DNA結合位點,緩釋EtBr分子,導致EtBr/DNA復合體系的熒光減弱:M+EtBr·DNA=M·DNA+EtBr,以插入方式與DNA作用,因此可以跟蹤反應體系的熒光變化來判斷化合物(M)與DNA結合能力的強弱.依據經典斯特恩-沃爾默(Stern-Volmer)方程[11]:
其中:I0為復合物體系(M/EtBr/DNA)中未添加配合物(M)的熒光強度,I為添加配合物(M)時的熒光強度;r為體系中配合物(M)與DNA的濃度比;Ksq為斯特恩-沃爾默(Stern-Volmer)猝滅表征常數,用于定量描述配合物與DNA的作用能力強弱.通過Ksq值大小,定量地比較不同配合物分子在相同環境下與DNA作用能力的強弱,Ksq數值越大,表明配合物分子與DNA結合能力越強,作用強度越大.
圖5為熒光法測定配合物分子與魚精DNA發生作用的結果.從圖5可以看出:DNA/EtBr復合物的熒光發射峰處于610 nm波長處;隨著配合物分子濃度的逐漸增加,與EtBr的競爭力增強,使DNA/EtBr復合物體系的熒光強度逐漸
減弱,并導致了不同程度的猝滅.結果表明配合物分子的濃度越大,熒光猝滅越顯著,說明該化合物與DNA發生了不同程度地專一插入作用[12].

c(DNA)=5×10-6mol/Lc(EB)=1.0×10-6mol/L 1c(M)=0 mol/L 2c(M)=0.5×10-5mol/L 3c(M)=1.0×10-5mol/L 4c(M)=1.5×10-5mol/L 5c(M)=2.0×10-5mol/L
圖5 配合物與DNA作用的熒光光譜
Fig.5 The emission spectrum of EB bound to DNA
采用常溫法合成了一個鈷配合物單晶,分子式[Co(Pyzdc)(H2O)2]n·nH2O.采用紅外光譜法、元素分析法和X-射線單晶衍射技術對配合物的結構進行了分析表征.通過熒光光譜研究配合物與DNA相互作用,結果顯示配合物添加到DNA/EtBr復合體系中后,能夠減弱熒光強度,發生熒光猝滅現象,說明該配合物能夠與溴化乙錠發生競爭,與DNA發生作用,并插入DNA堿基對中.
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