羅少華,熊 澤,邵 偉,郭 軍
(三峽大學化學與生命科學學院,湖北宜昌 443001)
己酸乙酯作為濃香型白酒的主體風味物質,是衡量白酒質量的重要指標之一[1],市場需求量很大。目前主要利用酸催化法[2]制備;但化學法制備的產品質量不高,同時酸催化還會產生大量廢液,造成環境污染。相比之下,脂肪酶催化合成己酸乙酯反應條件溫和、轉化率高、產品風味柔和、香醇自然,具有重要的研究意義和應用價值[3-5]。
在研究有機介質中脂肪酶催化己酸和乙醇合成己酸乙酯的轉化率[6-8]時,多采用中和滴定法。在對比研究各種因素對轉化率的影響時,滴定法操作簡便,盡管使用濃度極低的標準氫氧化鈉滴定,但是由于己酸為弱酸,分析樣品中己酸含量很少且相差不明顯,導致滴定分析數據穩定性不好。張艷等[9-10]用氣相色譜法測定了己酸乙酯的含量,本研究以實驗室現有儀器為基礎,以乙酸正戊酯為內標物,參考文獻[11-14]的氣相色譜條件,擬建立快速、準確、靈敏的測定脂肪酶催化反應體系中己酸乙酯含量的方法。
正己烷(分析純)、乙酸正戊酯(色譜純):國藥集團化學試劑有限公司;無水乙醇(分析純)、己酸乙酯標準品(色譜純):天津市科密歐化學試劑有限公司;正己酸(分析純):濟南興隆化工有限公司;脂肪酶(Novozym 435):丹麥諾維信生物技術有限公司。
GC-7890F氣相色譜儀:上海天美科學儀器有限公司;SGD-300氮、氫、空發生器:北京東方精華苑科技有限公司;BSA224S-CW電子天平:北京賽多利斯儀器系統有限公司;DKZ-2電熱恒溫振蕩水槽:上海一恒科技有限公司。
1.3.1 氣相色譜條件
色譜條件:色譜柱(AT.PEG-20M 30m×0.25mm×0.33μm):中國科學院蘭州化學物理研究所,T2000P色譜工作站。程序升溫:起始柱溫55℃,恒溫1min,以10℃/min升溫至70℃,恒溫2min,再以20℃/min升溫至180℃,保持5min;進樣口溫度200℃;采用氫焰離子化檢測器(flame ionization detector,FID)、溫度220℃進行測定;分流比:不分流;進樣量:1μL。
1.3.2 樣品溶液制備
在50mL碘量瓶中加入20mL正己烷和一定量的己酸和乙醇,混合均勻,再加入適量的脂肪酶Novozym435,在45℃恒溫水浴中振蕩反應10h;靜置,上清液為樣品溶液。
1.3.3 溶液的配制
量取0.2mL乙酸正戊酯,置于10mL容量瓶中,用正己烷稀釋至刻度,搖勻,配制成體積分數為2%的內標溶液。
量取0.2mL己酸乙酯,置于10mL容量瓶中,加正己烷稀釋至刻度,搖勻,配制成體積分數為2%的標準對照品溶液。
量取標準對照品溶液5.00mL和內標溶液3.00mL,置于10mL容量瓶中,正己烷稀釋至刻度,搖勻,作為混合標準儲備液。
1.3.4 色譜分離鑒定
分別取不含己酸乙酯和內標物的陰性對照溶液(正己烷溶劑)、內標溶液、標準對照品溶液和混合標準儲備液、樣品溶液及加標樣品溶液,在1.3.1的色譜條件下,1μL進樣,以便進行色譜鑒別。
1.3.5 校正因子f的測定
取含標準品和內標物的標準儲備液,在1.3.1的色譜條件下,1μL進樣,測定己酸乙酯和乙酸正戊酯峰面積積分值,并計算積分值的比值和相對校正因子f;連續6次進樣,考察相對標準偏差(relative standard deviation,RSD)值。
1.3.6 最低檢測限的測定
量取1.30mL、1.40mL、1.50mL、1.60mL、1.70mL、1.80mL標準對照品溶液,置于6個10mL的容量瓶中,在6個容量瓶中精密加入內標溶液各3.00mL,加正己烷稀釋至刻度,搖勻。在1.3.1的色譜條件下分別進樣1μL,觀察各質量濃度標準品岀峰情況,檢測最小響應值,確定最低檢測限。
1.3.7 樣品中己酸乙酯含量的測定和精密度評價
量取試樣1.00mL,移入2%的內標溶液3.00mL,加入正己烷稀釋至10mL。混勻后,按校正因子測定相同的條件操作,根據保留時間確定己酸乙酯峰的位置,根據己酸乙酯峰面積與內標峰面積比,按內標法計算出樣品中己酸乙酯的含量。連續取樣6次,取平均值,考察RSD值。
1.3.8 加標回收率實驗
量取1.00mL樣品溶液3份,置于3個10mL容量瓶中;按己酸乙酯最低檢測限含量的1.0、1.1、1.2倍量,量取己酸乙酯標準對照品溶液,分別轉移到容量瓶中;再加入內標溶液各3.00mL,用正己烷定容、搖勻。在1.3.1的色譜條件下取1μL進樣,測定并記錄己酸乙酯和內標峰面積,按內標法計算出樣品中己酸乙酯的含量和平均回收率。
色譜分離實驗結果見圖1~圖6。

圖1 陰性對照溶液的氣相色譜圖Fig.1 Gas chromatogram of negative control solution

圖2 內標物溶液的氣相色譜圖Fig.2 Gas chromatogram of internal standard solution

圖3 標準對照品的氣相色譜圖Fig.3 Gas chromatogram of standard reference material

圖4 標準儲備液的氣相色譜圖Fig.4 Gas chromatogram of standard stock solution

圖5 樣品溶液的氣相色譜圖Fig.5 Gas chromatogram of sample solution

圖6 加入內標物的樣品溶液的氣相色譜圖Fig.6 Gas chromatogram of sample with internal standard substance
圖1顯示溶劑正己烷的流出峰,說明陰性對照溶液無干擾;圖2顯示內標物乙酸正戊酯的相對保留時間為3.056min;圖3顯示標準品己酸乙酯的相對保留時間為4.482min;圖4顯示混合標準儲備液極好重現了乙酸正戊酯和己酸乙酯的相對保留時間分別為3.058min和4.486min;且乙酸正戊酯、己酸乙酯之間分離度大于2;圖5為樣品溶液的色譜圖;圖6是加入內標物的樣品溶液的色譜圖,圖5、圖6對比顯示樣品中含有待測定的己酸乙酯,不存在內標物,說明本研究選擇的內標物合適。
校正因子f的測定結果,見表1。

表1 校正因子實驗測定結果(n=6)Table 1 Results of calibration factor test
計算相對校正因子的平均值為0.983 7,測定相對校正因子的相對標準偏差RSD=0.59%。相對校正因子是己酸乙酯與內標物乙酸正戊酯的質量相等時,內標物的峰面積是己酸乙酯組分峰面積的倍數,由于己酸乙酯與內標物是同系物,理化性質相近,與實驗測定的校正因子值0.983 7相符。相對校正因子f值只與被測物和標準物以及檢測器的類型有關,而與操作條件無關,實驗中相對校正因子測定的相對標準偏差RSD=0.59%,說明實驗中相對校正因子f值的測定穩定性好。
最低檢測限的測定結果見表2。

表2 最低檢測限測定結果Table 2 Result of the lowest detectable limit determination
表2實驗結果表明,色譜峰最低響應對應的標準品進樣量為2.774μg/mL,因此,本法分析己酸乙酯的最低檢測限接近2.774μg/mL。
樣品中己酸乙酯含量測定及精密度實驗結果見表3。

表3 樣品己酸乙酯含量的測定Table 3 Determination of ethyl hexanoate in sample
根據樣品測定的己酸乙酯峰與乙酸正戊酯的峰面積、添加內標物的質量濃度和己酸乙酯的相對校正因子,參考國家標準[15],計算樣品中己酸乙酯含量。分析樣品中己酸乙酯平均含量為71.373 4mg/mL,精密度RSD=0.97%。重復6次取樣分析,樣品中己酸乙酯含量的RSD=0.97%,說明分析操作的精密度好,穩定性高。

表4 己酸乙酯加標回收率Table 4 Standard addition recovery of ethyl hexanoate
按己酸乙酯最低檢測限含量的1.0、1.1、1.2倍量添加標準己酸乙酯對照品,樣品加標回收率見表4。平均加標回收率為97.44%,說明本法測定脂肪酶催化反應體系中己酸乙酯含量準確可行。
在正己烷等有機溶劑中,固定化脂肪酶催化己酸和乙醇合成己酸乙酯轉化率高,是一種適合工業化生產的途徑。研究催化反應體系有機溶劑的選擇、固定化酶的用量、底物己酸和乙醇的濃度和組成、反應溫度及時間等因素對酯化過程的影響,優化己酸乙酯的合成工藝,需要快速、準確、靈敏地測定己酸乙酯含量。建立的毛細管氣相色譜法測定脂肪酶催化反應體系中己酸乙酯含量,操作簡便快速、省時、重現性好、結果準確,己酸乙酯的最低檢測限為2.774μg/mL,相對標準偏差(RSD)為0.97%,平均加標回收率為97.44%。毛細管氣相色譜法測定脂肪酶催化反應體系中己酸乙酯含量可更有效地研究酶法合成己酸乙酯相關課題,也可在該法的工業化生產中,為己酸乙酯半成品和成品質量分析提供借鑒。
[1]崔 利.醬香白酒現狀與前景淺析[J].釀酒,1996(5):9-10.
[2]李繼忠.對甲苯磺酸催化合成己酸乙酯的研究[J].化學工程師,2004,102(3):4-5.
[3]魏林娟,許志國,劉蓉蓉,等.非水相酶促合成己酸乙酯的研究[J].中國釀造,2001,20(6):20-22.
[4]RODRIGUEZ-NOGALES J R,ROURA E,CONTRERAS E.Biosynthesis of ethyl butyrate using immobilized lipase:A statistical approach[J].Process Biochem,2005,40(1):63-68.
[5]楊本宏,吳 克,鄭 敏,等.非水溶劑中Rhizopus arrhizus 脂肪酶催化合成三種酯的最佳條件[J].中國生物化學與分子生物學報,2003,19(5):572-575.
[6]曾家豫,周興輝,張 繼,等.有機介質中酶催化合成己酸乙酯的研究[J].食品科學,2009,3(6):123-127.
[7]陳建平,葛清秀,黃祖新.堿性脂肪酶在正庚烷中催化合成己酸乙酯的研究[J].福建師范大學學:自然科學版,2005,21(4):117-120.
[8]ANDRéIA A,ARAG?O V C,BARBARA D A,et al.Enzymatic synthesis optimization of isoamyl butyrate[J].J Brazil Chem Soc,2011,22(11):2148-2156.
[9]張 艷,何麗明,蔣 群,等.在有機溶劑中豬胰脂肪酶催化合成己酸乙酯的研究[J].精細化工,2010,27(2):150-154.
[10]沈詠梅,謝曉娜,荀二娜.超聲輔助酶促己酸乙酯的合成[J].合成化學,2012,20(5):612-615.
[11]霍權恭.毛細管氣相色譜分析白酒中醇類與酯類[J].食品科學,2012,33(18):243-245.
[12]熊 澤,邵 偉,胡 濱,等.鄂西地區幾種暢銷白酒中乙酸乙酯含量的測定[J].中國釀造,2012,31(6):172-175.
[13]王會鋒,李 瑾,林秋萍.氣相色譜法快速檢測白酒中醇和酯[J].食品科學,2007,28(7):456-458.
[14]何開蓉,程鐵轅,張 瑩,等.關于濃香型白酒己酸乙酯檢測能力驗證活動的分析[J].中國食品衛生雜志,2011,23(6):520-523.
[15]中華人民共和國衛生部,中國國家標準化管理委員會.GB/T 10345—2007 白酒分析方法[S].北京:中國標準出版社,2007.