盧玲 聶明建 代力
摘要 [目的]研究激素配比與莖尖大小對甘薯脫毒苗培育的影響。[方法]以高淀粉甘薯品種湘福1號和美國SL9為材料,進行甘薯脫毒苗培育試驗。[結果]湘福1號在MS+0.8 mg/L 6BA+0.2 mg/L NAA+0.05 mg/L GA3培養基中,愈傷組織生長最快,成苗率最高,1次培養成苗率比轉移的2次培養成苗率高24.5%,秧苗素質也好;美國SL9莖尖所帶葉原基越多,則成苗率越高,脫毒率越低。[結論]綜合成苗率與脫毒效果認為,以帶2個葉原基的莖尖在含有激素的培養基中的培育效果最好。
關鍵詞 甘薯(Dioscorea esculenta);莖尖;激素;成苗率;脫毒率
中圖分類號 S632 文獻標識碼
A 文章編號 0517-6611(2014)08-02276-02
Effects of Hormone Ratio and Shoot Tip Size on Dioscorea esculenta VirusFree Seedlings Culture
LU Ling, NIE Mingjian et al (Hunan Agricultural University, Changsha, Hunan 410128)
Abstract [Objective] To study effects of hormone ratio and shoot tip size on Dioscorea esculenta virusfree seedlings culture. [Method] With Xingfu No.1 and America SL9 as test materials, Dioscorea esculenta virusfree seedlings culture was conducted. [Result] The callus growth of Xiangfu No.1 in medium MS+0.8 mg/L 6BA+0.2 mg/L NAA+0.05 mg/L GA3 is the fastest and seedling rate is the highest, onetime culture seedling rate is higher than twotime culture seedling rate of 24.5%; The seedling rate of America SL9 is higher and virusfree rate is lower with more of leaf primordium in shoot tip. [Conclusion] Considering seedling rate and virusfree effect, the shoot tip with 2 leaf primordium in culture medium containing hormone has the best culture effect.
Key words Dioscorea esculenta; Shoot tip; Hormone; Virusfree rate
甘薯(Dioscorea esculenta)體內感染了病毒病后會產生植株變小、分枝減少、葉片皺縮、生長勢衰退、塊莖變小、產量品質明顯下降,甚至喪失生產利用價值的現象。利用莖尖分生組織培育脫毒甘薯苗進行栽培應用,是防止甘薯病毒危害、提高甘薯產量和質量最有效的方法。
甘薯脫病毒苗培育技術自20世紀80年代引入我國,國內學者對其進行了大量研究,主要針對在甘薯莖尖表面消毒方法、消毒劑種類、消毒劑濃度及處理時間、培養莖尖的大小、培養基的成分、激素的濃度以及甘薯愈傷組織培養的溫光條件等方面,開展了一系列的研究工作,取得了很多成果[1-5]。何新民等以紅姑娘2號甘薯為材料誘導產生愈傷組織和叢芽階段,以MS+1.0 mg/L 6BA+0.01 mg/L NAA+0.1 mg/L GA3培養基培養的效果較好;而1/2MS+0.2 mg/L NAA是紅姑娘2號試管苗的適宜生根培養基[6]。湖南是甘薯生產大省,甘薯年種植面積在15~20萬公頃,以高淀粉含量甘薯生產為主,據不完全統計,全省每年因甘薯病毒病造成的產量損失在30%以上。因此,筆者對湖南高淀粉甘薯品種脫毒苗培育技術進行研究,以期為高淀粉甘薯品種脫毒苗的進一步開發利用提供依據。
1 材料與方法
1.1 材料
1.1.1 研究對象。供試品種為湘輻1號和美國SL9,淀粉含量分別達27%和25%,是湖南省目前栽培面積較大、產量及經濟性狀均表現較好的2個高淀粉甘薯品種。
1.1.2 主要儀器。分析天平,購自德國賽多利斯公司;超凈工作臺,購自蘇州蘇潔凈化設備公司;純水機,購自深圳市佐泰超聲自動化設備有限公司;高壓滅菌鍋,購自中遠機械有限公司;光照培養箱,購自常州恒德儀器有限公司;酸度計,購自梅特勒-托利多國際股份有限公司;水浴鍋,購自江蘇省金壇市環宇科學儀器廠。
1.1.3 主要藥劑。乙醇、次氯酸鈉、瓊脂、蔗糖、MS培養基、6BA、NAA、GA3、氫氧化鈉和鹽酸等均為國產分析純,市售。
1.2 方法
1.2.1 種薯的催芽。選擇上一年收獲的中等大小、無病無傷、皮色鮮亮的甘薯,放入40~50 ℃恒溫水浴鍋中浸泡10 min,浸泡時需翻動種薯,保證種薯受熱均勻,然后按品種分類將種薯放置在32.5 ℃、相對濕度為80%的光照培養箱內進行催芽培養,當種薯出現了芽尖時將溫度調至25~28 ℃,繼續培養。
1.2.2 接種前準備。用濃度70%酒精擦拭培養器皿、解剖刀、剪刀和鑷子等接種器具。超凈工作臺先用浸有濃度70%酒精的脫脂棉擦洗,再經紫外燈照射50 min消毒。組培瓶、培養皿、槍鑷等工具均需經高壓蒸汽滅菌鍋滅菌。
1.2.3 外植體處理。甘薯出苗后,剪取生長健壯薯苗莖尖頂端2~3 cm,然后用飽和洗衣粉液浸泡消毒30 min,無菌水沖洗4~5次后,采用2步法表面消毒:先將甘薯莖尖先用濃度70%酒精浸泡30 s,再浸入濃度2.5%的NaClO水溶液消毒5~10 min,最后用無菌水沖洗4~5次,用無菌紙吸干,在解剖鏡下切取0.4~0.5 mm帶1~2個葉原基的甘薯微莖尖。
1.2.4 接種。打開組培瓶塑料蓋,用火焰燒瓶口并轉動瓶口,將槍鑷在火焰上消毒后蘸入無菌水冷卻,輕夾起已剪好的微莖尖接種至組培瓶內的培養基上,蓋上塑料瓶蓋。
1.2.5 莖尖培養。將接種好的培養瓶放在人工氣候室中,培養室的條件設置為:溫度 25~28 ℃,相對濕度80%,光照時間14 h/d;光照強度2 000~3 000 lx。
1.2.6 病毒檢測。脫毒苗的檢測首先采取目測法淘汰弱苗和顯癥苗,再按王慶美改進的 NCMELISA法進行甘薯組培苗的病毒檢測[7]。
1.2.7 培養基的配制。甘薯莖尖分生組織的培養常用MS培養基,先配制MS母液,放入冰箱中保存待用,配制培養基時每升MS培養基母液中加入30 g蔗糖,然后用酸度計調整pH為5.8,按照試驗所設計的處理濃度將激素溶解在上述MS母液中,再加7 g瓊脂粉,分裝于組培瓶中,在121~126 ℃高壓滅菌鍋中滅菌20 min,取出冷卻備用。
1.2.8 培養方式的選擇。①不同激素對甘薯莖尖分生組織培養的影響。以MS為基本培養基,然后根據生長激素配比的不同設計成8個處理。全部8個處理都添加了細胞分裂素6芐氨基嘌呤(6BA)和植物生長調節劑萘乙酸(NAA),其中編號1、2、5、6處理6BA濃度為0.4 mg/L,其他處理6BA濃度為0.8 mg/L,濃度增加1倍;編號1、3、5、7奇數處理NAA濃度為0.1 mg/L,偶數號2、4、6、8處理NAA濃度為0.2 mg/L,濃度增加1倍;另外,編號5、6、7、8處理添加了0.05 mg/L的赤霉素(GA3)(表1)。按“1.2.3”所述步驟處理湘輻1號外植體,然后剝離微莖尖(含2個葉原基),接種到各處理編號的培養基上,每個編號的培養基重復2次,每個重復5個微莖尖。在相同的培養條件下培養30 d,統計莖尖培育的愈傷組織直徑、成苗率。②莖尖大小對分生組織培養的影響。從美國SL9種薯上剪取芽尖,按“1.2.3”所述步驟消毒后,在解剖鏡下切取莖尖,進行接種培養。莖尖大小分為3個不同水平,分別帶有1、2和3個葉原基,培養基為MS培養基加0.8 mg/L 6BA和0.2 mg/L NAA,人工氣候室的條件與“1.2.5”相同,培養30 d統計成苗率,待莖尖長成完全植株,葉片展開時按“1.2.6”方法檢測其脫毒率。③不同培養方式對莖尖分生組織培養的影響。剝離的莖尖分生組織采用2種培養方式:1種是始終在篩選的激素培養基上培養,稱為1次培養,培養基組成為MS培養基加0.8 mg/L 6BA+0.2 mg/L NAA+0.05 mg/L GA3;另1種是2次培養,即在激素培養基上培養20 d左右,待莖尖分生組織膨大變綠后,轉到1/2 MS無激素的固體培養基上培養。以湘輻1號為試驗材料,統計50 d后成苗率、莖尖芽數,葉片數、平均株高。
1.2.9 數據處理。采用DPS數據處理和Excel進行數據處理。
2 結果與分析
2.1 不同培養基的莖尖分生組織培養效果分析 由表2可知,隨著6BA濃度升高,愈傷組織形成越快,面積越大、成苗率越高。處理1、2、5、6的6BA濃度愈為0.4 mg/L,愈傷組織平均直徑為26 mm,成苗率為48.5%;而處理3、4、7、8的6BA濃度愈為0.8 mg/L,愈傷組織平均直徑為30 mm,成苗率為50.2%,6BA濃度為0.8 mg/L的處理與0.4 mg/L處理相比,愈傷組織直徑增大15.4%,成活率高1.7%。
培養基中NAA濃度對甘薯莖尖愈傷組織形成的影響與6BA 相似,濃度升高,愈傷組織形成越快,面積越大、成苗率越高。處理編號2、4、6、8的愈傷組織平均直徑為30 mm,成苗率為50.8%;平均直徑比處理編號的1、3、5、7大4 mm,成苗率高2.9%。
GA3對甘薯組織培養也有重要影響,添加了0.05 mg/L GA3后,愈傷組織平均直徑為32.3 mm,而未添加GA3的愈傷組織平均直徑僅為23.8 mm,前者比后者直徑增大35.7%,這說明GA3有促進甘薯愈傷組織生長的作用。在沒有添加0.05 mg/L GA3 的情況下,6BA濃度對甘薯莖尖愈傷組織形成的快慢及直徑大小影響更大,處理3、4的愈傷組織平均直徑為27 mm,處理1、2的為20.5 mm。6BA濃度為0.8 mg/L的處理比0.4 mg/L處理相大31.7%,說明添加GA3可以部分抵消6BA濃度差異對愈傷組織培育的影響。
2.2 莖尖大小對分生組織培養的影響 由表3可知,莖尖大小對分生組織培養有很大的影響。莖尖帶1、2和3個葉原基的成苗率分別為30.5%、50.1%和79.4%,帶3個葉原基的莖尖分別比帶2個和1個葉原基的莖尖成苗率高29.3%和48.9%,表明莖尖大小與組織培養的成活率呈正比。脫毒率則正好相反,莖尖越大,脫毒效果越差,帶1、2和3個葉原基莖尖的脫毒率率分別為50.2%、42.7%和27.9%,帶1個葉原基的莖尖比帶2個和3個葉原基的莖尖脫毒率分別高7.5%和22.3%,表明莖尖大小與脫毒率呈反比。在培養過程中還發現,帶1個葉原基的莖尖比帶2個葉原基、3個葉原基愈傷組織生長慢,根和葉分化也慢。
2.3 不同培養方式對莖尖分生組織培養的影響 由表4可知,1次培養的成苗率、莖尖芽數、葉片數和平均株高都比2次培養的高。1次培養比2次培養成苗率增加了24.5%,莖