侯進(jìn)慧,趙明濤
(1.徐州工程學(xué)院食品(生物)工程學(xué)院,江蘇徐州 221008;2.江蘇省食品資源開(kāi)發(fā)與質(zhì)量安全重點(diǎn)建設(shè)實(shí)驗(yàn)室,江蘇徐州 221008)
蛋白酶是催化多肽或蛋白質(zhì)水解的一類(lèi)酶,其分類(lèi)方法有多種,可以根據(jù)活性中心分類(lèi),或者以作用方式來(lái)分類(lèi),也有的以最適pH來(lái)分類(lèi)。在傳統(tǒng)過(guò)程中,蛋白酶通常按照最適pH來(lái)區(qū)分,分成三類(lèi):包括酸性、中性和堿性蛋白酶,其中酸性蛋白酶最適pH 范圍在 2.0~6.0,中性蛋白酶最適 pH 范圍在 6.0~9.0,堿性蛋白酶最適pH范圍為9.0以上。按照活性中心來(lái)分,蛋白酶可以分成絲氨酸蛋白酶、半胱氨酸蛋白酶、天冬氨酸蛋白酶和金屬蛋白酶等四大類(lèi)。蛋白酶的專(zhuān)一性對(duì)于酶的應(yīng)用至關(guān)重要,某些場(chǎng)合專(zhuān)一性的微小差異,也足以造成截然不同的效果。其中,酸性蛋白酶是一種能在酸性環(huán)境下水解蛋白質(zhì)的酶類(lèi),具有較好的耐酸性。因此被廣泛地應(yīng)用于食品、釀造、醫(yī)藥、輕工、皮革工藝以及飼料加工工業(yè)中[1-6]。
由于微生物的生活環(huán)境差別大、種類(lèi)多樣,與動(dòng)植物蛋白酶相比,微生物蛋白酶呈現(xiàn)出多樣性和復(fù)雜性的特征[7-8]。不同微生物菌種分泌的酸性蛋白酶雖然具有一些共同的性質(zhì),但是在底物特異性、作用條件、抑制劑等方面均有著一定的差別。比如米曲霉所產(chǎn)酸性蛋白酶的活性 pH 范圍為 3.0~6.0,最適作用 pH 為 3.0~4.0[5]。宇佐美曲霉所產(chǎn)酸性蛋白酶的活性 pH 范圍為 2.0~3.5,最適作用 pH2.5。從Hebeloma crustulinifomel分離的一種酸性蛋白酶的活性溫度范圍在45~60℃之間,最適作用溫度為50℃;菌種DH-C40所產(chǎn)的酸性蛋白酶的活性溫度范圍在35~55℃ 之間,最適作用溫度為 40℃[2]。從微生物中,篩選開(kāi)發(fā)新型產(chǎn)酸性蛋白酶菌株,可為人們提供性質(zhì)不同的蛋白酶應(yīng)用于生產(chǎn)與研究。
本文對(duì)篩選到的一株產(chǎn)酸性蛋白酶菌株P(guān)X8進(jìn)行了分子鑒定和酶學(xué)特征研究,為進(jìn)一步開(kāi)發(fā)其酸性蛋白酶產(chǎn)品提供了研究基礎(chǔ)。
本實(shí)驗(yàn)篩選到的產(chǎn)蛋白酶菌株分離自蘇北地區(qū)的農(nóng)田土壤。從采樣地收集土壤后,同日到實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行菌株分離、篩選。
酪素、乳酸、酪氨酸、碳酸鈉分析純生化試劑國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;Taq酶、DNA Marker分子生物學(xué)試劑 上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司;質(zhì)粒提取試劑盒 天根生化科技(北京)有限公司;液體 LB培養(yǎng)基:蛋白胨10g,酵母粉5g,NaCl 10g;固體LB培養(yǎng)基還需加瓊脂粉12g[9];1L固體篩選培養(yǎng)基:葡萄糖10g,蛋白胨5g,氯化鈉10g,脫脂奶粉 20g,瓊脂粉 12g[10]。
EBA21臺(tái)式高速冷凍離心機(jī) 德國(guó)SIGMA公司;DYCP-31E電泳儀 北京市六一儀器廠;DNP9002電熱恒溫培養(yǎng)箱 上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;MDF-382E超低溫冰箱 日本SANYO電子有限公司。
提取菌株 PX8基因組DNA,作為 PCR反應(yīng)模板。16S rDNA擴(kuò)增采用細(xì)菌通用引物:F:5′AGAGTTTGATCCTGGCTCAG3′,R:5′GGTTACCTTG TTACGACTT3′。在50μL PCR反應(yīng)體系中,依次加入以下成分:5μL的10×PCR反應(yīng)緩沖液,4μL的dNTP,1μL的F和R引物,1μL的PX8基因組DNA,0.5μL的Taq DNA聚合酶,加無(wú)菌超純水補(bǔ)足體積。序列擴(kuò)增條件:95℃預(yù)變性5min;95℃變性30s,54℃退火60s,72℃ 延伸 90s,重復(fù)步驟 2~4,30 個(gè)循環(huán);72℃延伸10min。將菌株P(guān)X8的16S rDNA片斷送“上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司”測(cè)序,分析菌株分類(lèi)地位[11]。
1.3.1 溶液的配制 酪素溶液(10g/L):稱(chēng)取1g酪素,加5mL去離子水溶解,加0.5mol/L乳酸溶解,加入適量pH為3.0乳酸-乳酸鈉緩沖液,在沸水浴中邊加熱邊攪拌,冷卻后,轉(zhuǎn)入100mL容量瓶中,用pH3.0乳酸-乳酸鈉緩沖液定容至100mL,此溶液放冰箱中保存。
標(biāo)準(zhǔn)酪氨酸溶液(100μg/mL):精確稱(chēng)取預(yù)先在105℃干燥2~3h的L-酪氨酸0.1g,置于容量瓶中,緩慢加入6mL的1mol/L HCl使之溶解,用0.2mol/L HCl定容至100mL,可獲得1mg/mL酪氨酸溶液,取該溶液 10mL,用 0.2mol/L HCl定容至 100mL,即成100μg/mL酪氨酸溶液。
1.3.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線制作 取1mL 100μg/mL標(biāo)準(zhǔn)酪氨酸溶液至一個(gè) 10mL容量瓶,加入 5mL 0.4mol/L NaCO3溶液、1mL福林試劑,混合均勻,置于(40±0.2)℃水浴顯色20min,顯色后,以不含酪氨酸的0管為空白,使用分光光度計(jì)在680nm波長(zhǎng)處測(cè)量吸光度值,做三次平行實(shí)驗(yàn)。以吸光度A為縱坐標(biāo),酪氨酸的濃度c為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.3.3 酶活測(cè)定 將酪素溶液放入(40±0.2)℃恒溫水浴中,預(yù)熱5min。取5mL離心管,向其中加入1mL酶液,在(40 ±0.2)℃ 的條件下加熱 2min,再加入2mL 0.4mol/L 三氯乙酸,振蕩搖勻,在(40 ±0.2)℃下反應(yīng)10min,然后向離心管中加1mL 10g/L酪素,搖勻,取出靜置,反應(yīng)10min。在10000r/min下離心1min,取 1mL 上清至容量瓶中,加入 5.0mL 0.4mol/L的NaCO3溶液和1mL福林試劑,在(40±0.2)℃,顯色20min,在680nm波長(zhǎng)測(cè)量吸光度。
取5mL的離心管,加入1mL酶液,在(40±0.2)℃下加熱2min,再加入1mL 10g/L酪素,充分混勻,在(40±0.2)℃下反應(yīng)10min;然后向離心管中加入2mL 0.4mol/L三氯乙酸,充分混勻,取出靜置,反應(yīng)10min;在 10000r/min 下離心 1min,取 1.00mL 上清液加到 10mL容量瓶中,再加入 5mL 0.4mol/L NaCO3溶液和1mL福林試劑,在(40±0.2)℃顯色20min,將樣品在680nm 波長(zhǎng)測(cè)量吸光度[10]。
1.3.4 酶活力計(jì)算
酶活力定義:1mL液體酶,再一定溫度和pH條件下,1min水解干酪素產(chǎn)生1μg酪氨酸,即為一個(gè)酶活力單位,以 U/g 或 U/mL 表示[1,5]。
酸性蛋白酶酶活測(cè)量公式:

式中:X-樣品酶活力,(U/mL);A-樣品平行測(cè)試的平均吸光度;K-吸光常數(shù);4-反應(yīng)試劑的總體積,mL;10-反應(yīng)時(shí)間10min,以1min計(jì);n-稀釋倍數(shù)(酶稀釋倍數(shù)n=1)。
菌株P(guān)X8所產(chǎn)酸性蛋白酶活性受到多個(gè)因子的影響。本文進(jìn)行了四因素三水平的正交實(shí)驗(yàn),以確定最優(yōu)酶活性的條件,表1為因素與水平。以不同的影響因子條件下,用福林試劑測(cè)定酸性蛋白酶活性,以酸性蛋白酶活性為評(píng)價(jià)指標(biāo),通過(guò)單因素實(shí)驗(yàn),確立正交實(shí)驗(yàn)因素,用正交實(shí)驗(yàn)法確定各因素的最佳條件,分析不同影響因子下的酸性蛋白酶活性,從而確定最適的組合水平,獲得較高的酶活值。

表1 影響因素與水平表Table 1 Factors and levels concerned
利用透明水解圈法篩選到一株產(chǎn)酸性蛋白酶菌株P(guān)X8(圖1A)。通過(guò)PCR獲得菌株 PX8的16S rDNA片段(圖1B),經(jīng)生物公司測(cè)序,使用BLAST軟件與GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)的序列比對(duì)后發(fā)現(xiàn),該序列與軟腐果膠桿菌Pectobacteriumcarotovorum subsp.carotovorum strain Ecc1-9(FJ527461)的 16S rDNA 序列最相似,相似性達(dá)100%。將該菌株命名為Pectobacteriumsp.PX8。

圖1 菌落透明圈和16S rDNA片段Fig.1 Colony transparent circle and 16S rDNA fragment
制作的酪氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖2)顯示,在分光光度計(jì)波長(zhǎng)為680nm時(shí),酪氨酸濃度在0~50μg/mL范圍內(nèi),線性關(guān)系良好。其回歸方程為 y=0.0101x+0.0085,R2=0.9972,k=98.168。

圖2 酪氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.2 Tyrosine standard curve
2.3.1 菌株酸性蛋白酶反應(yīng)溫度分析 改變酶促反應(yīng)溫度,分析溫度對(duì)酶活的影響。所分析的溫度分別為20 、30 、40 、50 、60℃。圖3顯示,在20~40℃范圍內(nèi),菌株P(guān)X8酸性蛋白酶的活力隨溫度的升高而增加,當(dāng)溫度達(dá)到40℃時(shí),蛋白酶活力最大;超過(guò)40℃后,溫度升高,蛋白酶活力逐漸下降。結(jié)果顯示,菌株P(guān)X8酸性蛋白酶的最適溫度是40℃。

圖3 溫度對(duì)酶活性的影響Fig.3 Effect of temperature on enzyme activity
2.3.2 菌株酸性蛋白酶反應(yīng)pH分析 選用不同的催化反應(yīng) pH,所分析的 pH 分別為 2.0、3.0、4.0、5.0、6.0,以pH在4.0時(shí)的酶活性為100%,分析酸性蛋白酶活隨著pH的變化情況結(jié)果如圖4。結(jié)果顯示,菌株P(guān)X8酸性蛋白酶在pH 4.0時(shí)相對(duì)酶活較高,說(shuō)明pH4.0是該菌株酸性蛋白酶適合的反應(yīng)條件。但是當(dāng)pH過(guò)高或過(guò)低時(shí)均明顯影響酶活力,在pH為2時(shí),酶活力只有 65.49%,在 pH 為 6.0 時(shí),酶活也只有 42.88%。

圖4 pH對(duì)酶活性的影響Fig.4 Effect of pH on enzyme activity
2.3.3 不同離子對(duì)菌株酸性蛋白酶活力的影響 選擇 1mg/mL Fe2+、Mn2+、Cu2+、Ca2+和 Ni2+等金屬離子,以不添加金屬離子的反應(yīng)體系為對(duì)照,分析不同離子存在條件下菌株酸性蛋白酶酶活,以不添加金屬離子的酶活性為100%,結(jié)果見(jiàn)圖5。結(jié)果顯示,不同的金屬離子對(duì)菌株P(guān)X8酸性蛋白酶的活力影響各異,加入Fe2+、Mn2+和Cu2+酶活均高于不加無(wú)機(jī)離子時(shí)的酶活,F(xiàn)e2+、Mn2+和Cu2+對(duì)酸性蛋白酶有激活作用,而且 Fe2+的激活作用最強(qiáng),相對(duì)酶活達(dá)到116.4%,而加入Ca2+、Ni2+離子時(shí)酶活均低于不加無(wú)機(jī)離子時(shí)的酶活,說(shuō)明Ca2+和Ni2+對(duì)菌株P(guān)X8酸性蛋白酶有抑制作用,Ni2+的抑制作用更明顯。

圖5 金屬離子對(duì)酶活性的影響Fig.5 Effect of ions on enzyme activity
2.3.4 不同的Fe2+濃度對(duì)菌株酸性蛋白酶活力的影響 不同濃度金屬離子對(duì)酸性蛋白酶活性影響不同,本實(shí)驗(yàn)選擇激活作用較強(qiáng)的Fe2+來(lái)促進(jìn)菌株P(guān)X8酸性蛋白酶活性,以不添加金屬離子的酶活性為100% ,分析 0.3、0.6、0.9、1.2、1.5mg/mL Fe2+時(shí)菌株P(guān)X8酸性蛋白酶酶活,結(jié)果見(jiàn)圖6。結(jié)果顯示,F(xiàn)e2+濃度在0.9mg/mL時(shí),相對(duì)酶活達(dá)到131.5%,在 Fe2+濃度低于或高于0.9mg/mL時(shí),激活作用降低,當(dāng)Fe2+濃度達(dá)到1.5mg/mL時(shí),對(duì)酶活有抑制作用。
2.3.5 不同發(fā)酵時(shí)間菌株酸性蛋白酶活力 分析不同發(fā)酵時(shí)間菌株酸性蛋白酶活力,結(jié)果見(jiàn)圖7。結(jié)果顯示,在發(fā)酵培養(yǎng)64h時(shí),相對(duì)酶活達(dá)到最大值。

圖6 Fe2+對(duì)酶活性的影響Fig.6 Effect of Fe2+on enzyme activity

圖7 不同發(fā)酵時(shí)間對(duì)酶活性的影響Fig.7 Effect of cultivation time on enzyme activity
2.3.6 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果 通過(guò)正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)確定菌株最優(yōu)酶活性條件,結(jié)果見(jiàn)表2。表中R值顯示,四種結(jié)果對(duì)酸性蛋白酶活性的影響順序?yàn)?C>B>A>D,即Fe2+離子濃度對(duì)酸性蛋白酶活性的影響最大,其次為pH、溫度和反應(yīng)時(shí)間的影響,由表可知最優(yōu)組合是 C2B2A2D2,即 Fe2+濃度是 1.2mg/mL,溫度是40℃,pH是4,反應(yīng)時(shí)間是10min,經(jīng)驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),此條件下的酶活達(dá)到最大值34.625 U/mL。

表2 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 2 The result of orthogonal experiment
溫度對(duì)酶催化反應(yīng)有兩種效應(yīng),在一定范圍內(nèi),溫度的升高,從而使酶反應(yīng)速度增加。如果超過(guò)這個(gè)范圍,溫度的升高,就會(huì)引起酶變性,從而引起酶反應(yīng)的失效[12]。在溫度比較低的范圍內(nèi),隨著溫度升高,主要作用的是加速反應(yīng),因而在一定的范圍內(nèi)蛋白酶的活力會(huì)隨著溫度的升高而增加;但是當(dāng)超過(guò)這個(gè)溫度范圍時(shí),隨著溫度的升高,蛋白酶失效就會(huì)占據(jù)主導(dǎo)地位,從而蛋白酶活力隨著溫度升高而下降。選用不同的溫度,測(cè)量溫度分別為20、30、40、50、60℃時(shí)酸性蛋白酶酶活。袁康培等[13]指出黑曲霉所產(chǎn)酸性蛋白酶,在不同的發(fā)酵溫度下產(chǎn)蛋白酶的能力顯著不同,溫度為28℃時(shí)產(chǎn)蛋白酶的比活力最大。費(fèi)笛波等[14]對(duì)黑曲霉6042飼用酸性蛋白酶進(jìn)行了研究,研究表明,適宜作用溫度范圍在40~50℃之間,而在47.5℃時(shí),產(chǎn)蛋白酶量的含量最高。這種酸性蛋白酶的最適溫度不同,是因?yàn)槭紫瓤赡苁怯捎诰瓴煌斐傻模环N微生物的不同的菌株所產(chǎn)生的酶也會(huì)在性質(zhì)上有很大的差異。同一種酶在不同條件下的適宜溫度也不是一成不變的,其次要受到酶的純度、底物、激活劑、抑制劑以及酶促反應(yīng)時(shí)間等因素的影響。一般認(rèn)為,溶液的pH通過(guò)影響蛋白酶活性中心結(jié)構(gòu)及與活性中心有關(guān)的基團(tuán)的解離,從而影響酶的活性[15]。當(dāng)有利于酶分子與底物進(jìn)行結(jié)合,蛋白酶的活力就比較高。當(dāng)外界環(huán)境或溶液pH發(fā)生改變,蛋白酶活性中心結(jié)構(gòu)及與活性中心有關(guān)的基團(tuán)的解離的情況就會(huì)發(fā)生改變,從而使蛋白酶從活性狀態(tài)轉(zhuǎn)入無(wú)活性態(tài),引起活力下降甚至完全失活。對(duì)由酸性蛋白酶催化而說(shuō),無(wú)機(jī)金屬離子通過(guò)與底物的活性部位相結(jié)合,或間接與底物的特殊構(gòu)象結(jié)合,來(lái)控制催化反應(yīng)的進(jìn)行[16]。李衛(wèi)芬[17]研究認(rèn)為,F(xiàn)e2+對(duì)酸性蛋白酶有一定的激活作用,而Mn2+、Ca2+和Cu2+則呈現(xiàn)強(qiáng)弱不同的抑制作用。劉娜等[18]認(rèn)為 Cu2+、Mn2+、Ca2+三種離子在一定濃度范圍內(nèi)對(duì)黑曲霉產(chǎn)生酸性蛋白酶活性是有激活作用的,而Fe2+對(duì)酸性蛋白酶活性基本只呈抑制作用。以上研究結(jié)果與本文的研究結(jié)果不盡一致,一是設(shè)定的離子濃度不完全相同,二是可能由于酶的來(lái)源不同,從而導(dǎo)致酶結(jié)構(gòu)不同。這與洪法水[19]對(duì)酶活性與重金屬例子關(guān)系的研究結(jié)果相一致,低濃度重金屬離子對(duì)酶活性有激活作用,高濃度則嚴(yán)重抑制酶活性。
本文研究的產(chǎn)酸性蛋白酶菌株P(guān)X8,經(jīng)分子鑒定為Pectobacteriumsp.菌株,該菌株所產(chǎn)酸性蛋白酶在40℃、pH4,含有 1.2mg/mL Fe2+的反應(yīng)體系中,反應(yīng)10min,酶活達(dá)到最大值34.625U/mL,具有較高的蛋白酶活性,可供進(jìn)一步開(kāi)發(fā)高活性的酸性蛋白酶產(chǎn)品。
[1]劉靜,閡航,章驥,等.一株產(chǎn)低溫蛋白酶菌株的篩選鑒定及純酶研究[J].浙江大學(xué)學(xué)報(bào),2006,32(3):251-256.
[2]錢(qián)俊青,宋大威,單昱東.微水相酸性蛋白酶催化蔗糖乙酸酯合成研究[J].浙江工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2013,41(2):119-121.
[3]Li C,Xu D,Zhao M,et al.Production optimization,purification,and characterization of a novel acid protease from a fusant byAspergillus oryzaeandAspergillus niger[J].European Food Research and Technology,2014:1-13.
[4]王菲,于書(shū)佳,王常青,等.酶解小黑豆乳清多肽抗腫瘤作用的研究[J].食品工業(yè)科技,2013,34(16):347-350.
[5]劉娜,張美香,王一.不同濃度金屬離子對(duì)酸性蛋白酶活性的影響[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,38(32):18043-18044.
[6]莊志凱,杜嵇華,吉宏武,等.南美白對(duì)蝦蝦頭內(nèi)源酸性蛋白酶的分離純化及其酶學(xué)特性研究[J].食品工業(yè)科技,2012,33(18):116-120.
[7]張美香,劉娜,蔡靜平,等.微生物源酸性蛋白酶的研究進(jìn)展[J].河南工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2009,30(6):88-92.
[8]Malab R,Aparnam T,Mohinis G,et al.Molecular and biotechnological aspects of microbial proteases[J].Microbiology and Molecular Biology Reviews,1998,62(3):597-635.
[9]侯進(jìn)慧,陳宏偉,高兆建,等.山藥分子分類(lèi)研究[J].徐州工程學(xué)院學(xué)報(bào),2011,4:51-55.
[10]翁海波,敬蔚然,楊丹麗,等.產(chǎn)高溫堿性蛋白酶菌株篩選及酶學(xué)性質(zhì)研究[J].鄭州大學(xué)學(xué)報(bào)(工學(xué)版),2010,31(1):51-55.
[11]侯進(jìn)慧,蔡侃,孔文剛.基于生物信息學(xué)方法對(duì)一株產(chǎn)纖維素酶細(xì)菌的分析[J].生物技術(shù),2011,21(2):48-50.
[12]周文龍,葉路霞,孫鎧.蛋白酶對(duì)不同羊毛品種減量性能的研究[J].毛紡科技,2002,(2):30-32.
[13]袁康培,鄭春麗,馮明光.黑曲霉HU53菌株產(chǎn)酸性蛋白酶的條件和酶學(xué)性質(zhì)[J].食品科學(xué),2003,24(8):46-49.
[14]費(fèi)笛波,錢(qián)玉英.黑曲霉菌株6042飼用酸性蛋白酶的性質(zhì)及其應(yīng)用研究[J].浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),1997,9(6):300-304.
[15]陳石根,周潤(rùn)琦.酶學(xué)[M].上海:復(fù)旦大學(xué)出版社.2001.
[16]王鏡巖,朱圣庚,徐長(zhǎng)法.生物化學(xué)(上冊(cè),第三版)[M].北京:高等教育出版社,2002,380-467.
[17]李衛(wèi)芬,孫建義,鮑康.金屬離子對(duì)飼用酶制劑活性的影響[J].浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),1999,11(2):40-43.
[18]劉娜,張美香,王一.不同濃度金屬離子對(duì)酸性蛋白酶活性的影響[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,38(32):18043-18044.
[19]洪法水,王雪峰.重金屬離子對(duì)豬胰α-淀粉酶活性影響的作用機(jī)理研究[J].高等學(xué)校化學(xué)學(xué)報(bào),2001,22(12):1979-1983.