武俊芳,牛 杰,李曉鵬,張芬熙,林俊堂,任同明,汪艷麗
1)新鄉醫學院形態學實驗室 新鄉 453003 2)新鄉醫學院第三附屬醫院眼科 新鄉 453003 3)新鄉醫學院三全學院解剖學教研室 新鄉 453003 4)新鄉醫學院干細胞與生物治療研究中心 新鄉 453003 5)新鄉醫學院解剖學實驗室 新鄉 453003
氧化型低密度脂蛋白對小鼠骨髓間充質干細胞遷移的影響*
武俊芳1),牛 杰1),李曉鵬2),張芬熙3,4)#,林俊堂4),任同明5),汪艷麗1)
1)新鄉醫學院形態學實驗室 新鄉 453003 2)新鄉醫學院第三附屬醫院眼科 新鄉 453003 3)新鄉醫學院三全學院解剖學教研室 新鄉 453003 4)新鄉醫學院干細胞與生物治療研究中心 新鄉 453003 5)新鄉醫學院解剖學實驗室 新鄉 453003
#通訊作者,女,1978年8月生,碩士,講師,研究方向:干細胞研究,E-mail:fxzhang0824@gmail.com
氧化型低密度脂蛋白;骨髓間充質干細胞;細胞遷移;細胞骨架;鈣離子;小鼠
目的:研究氧化型低密度脂蛋白(ox-LDL)對小鼠骨髓間充質干細胞(bmMSCs)遷移的影響。方法觀察小鼠bmMSCs對ox-LDL的攝取能力。應用不同質量濃度(0、5、10和20 mg/L)ox-LDL誘導培養bmMSCs 6 h后,利用Transwell系統檢測bmMSCs跨內皮遷移率,流式細胞儀檢測ox-LDL細胞內鈣離子陽性率,激光共聚焦顯微鏡檢測細胞骨架F-actin在細胞內的分布。結果小鼠bmMSCs具有較強的攝取ox-LDL的能力。0、5、10和20 mg/L ox-LDL處理組bmMSCs跨內皮遷移率分別為(26.663±1.575)%、(34.653±2.693)%、(38.238±3.050)%和(42.833±3.748)%,鈣離子陽性率分別為(42.375±4.281)%、(66.203±5.416)%、(77.958±4.338)%和(84.638±4.768)%,組間比較差異均有統計學意義(F=22.576、63.819,P<0.001)。ox-LDL可促進細胞骨架F-actin的重組。結論ox-LDL可通過調節細胞骨架重組和胞內鈣離子陽性率促進bmMSCs的遷移。
骨髓間充質干細胞(bone marrow mesenchymal stem cells,bmMSCs)是一類具有多向分化潛能的多功能成體干細胞,在特定環境下可向多種功能細胞分化[1]。bmMSCs移植是目前生物醫學治療研究領域的重要課題。相關研究[1-3]顯示,bmMSCs移植對阿爾茨海默病、心肌梗死、中風、骨腫瘤和肺損傷等多種疾病均有一定的療效。但近期研究[4]顯示,在靜脈注射后僅有不到1.5%的bmMSCs能遷移到病灶部位。細胞歸巢率低的問題大大限制了bmMSC移植的臨床應用和療效。氧化型低密度脂蛋白(oxidized low-density lipoprotein,ox-LDL)為一類體內氧化型脂質微粒,是誘導體內活性氧(reactive oxygen species,ROS)產生的主要因素之一[5]。凝集素樣氧化型低密度脂蛋白受體1(lectin-like ox-LDL receptor 1,LOX-1)是ox-LDL的主要受體之一[5]。作者的前期研究[6]結果顯示,LOX-1高表達于小鼠bmMSCs,且能介導間充質干細胞攝取ox-LDL。相關研究[7]顯示,ox-LDL可通過活化LOX-1而活化細胞一系列生理信號,促進多種細胞的遷移。但ox-LDL是否影響小鼠bmMSCs的遷移目前還不清楚。該研究旨在探討ox-LDL對小鼠bmMSCs遷移的影響及其相關機制。
1.1材料Fluo-3/AM,Rhodamine phalloidin和ProlongH Gold antifade reagent with DAPI購自Invitrogen公司(美國)。辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔二抗和FITC標記的CD90抗體均購自Abcam公司(美國)。ox-LDL和Dil標記的ox-LDL購自Biomedical Technologies公司(美國)。HyClone血清購自Thermo Fisher Scientific公司(美國)。Transwell plates(8 μmol/L)購自Conning Costar公司(美國)。

1.3ox-LDL攝取實驗將第3代小鼠bmMSCs接種到24孔板中常規培養。24 h后,向培養基中添加5 mg/L Dil標記的ox-LDL,培養箱中孵育30 min。PBS洗滌3次后,熒光顯微鏡下觀察并拍照。
1.4細胞遷移實驗將4×104L-1的人臍靜脈內皮細胞(HUVECs)接種到Transwell的上室中,常規培養24 h;將經不同質量濃度(0、5、10和20 mg/L)ox-LDL誘導培養6 h后的bmMSCs接種到上室中,再培養6 h,計數遷移到小室下壁的細胞數量,并計算細胞跨內皮遷移率。每組均設5個復孔。
1.5細胞內鈣離子陽性率檢測將小鼠bmMSCs接種到6孔板中,分別用0、5、10和20 mg/L的ox-LDL誘導培養6 h。然后,向培養基中添加終濃度為5 μmol/L的Fluo-3/AM,避光37 ℃孵育30 min。PBS洗滌細胞3次,2.5 g/L胰蛋白酶消化并收集細胞。PBS洗滌1次后,將細胞懸浮于500 μL PBS中,吹打混勻,上流式細胞儀分析,計算熒光強度(鈣離子陽性率)。每組均設5個復孔。
1.6細胞骨架檢測將bmMSCs接種到24孔板中,立即用不同質量濃度(0、5、10和20 mg/L)ox-LDL處理6 h。然后,PBS洗細胞2次,體積分數為4%中性福爾馬林固定細胞,Triton X-100處理細胞10 min,再利用羅丹明標記的鬼筆環肽染色檢測細胞骨架F-actin,激光共聚焦顯微鏡下觀察并拍照。
1.7統計學處理采用SPSS 11.5進行分析,應用單因素方差分析和Turkey檢驗比較4組小鼠bmMSCs跨內皮遷移率和鈣離子陽性率,檢驗水準α=0.05。
2.1小鼠bmMSCs的形態、鑒定及對ox-LDL的攝取免疫熒光染色顯示,小鼠bmMSCs陽性表達間充質干細胞特異性標記分子CD90(圖1A~C)。光鏡下,第3代小鼠bmMSCs呈典型的梭形或長梭形成纖維細胞形態(圖1D)。熒光檢測顯示,小鼠bmMSCs具有很強的攝取ox-LDL的能力(圖1E~F)。

圖1 小鼠bmMSCs的形態、鑒定及其對Dil-ox-LDL的攝取(×100)
A:DAPI染色顯示小鼠bmMSCs核形態; B:免疫熒光染色顯示CD90(FITC)在小鼠bmMSCs內的表達;C:DPAI 熒光染色和FITC熒光染色的合成圖片;D:相差顯微鏡圖像顯示小鼠bmMSCs的形態;E:小鼠bmMSCs對Dil標記的(紅色)ox-LDL的攝取;F:相差圖像和Dil熒光的合成圖片。
2.2不同質量濃度ox-LDL培養對小鼠bmMSCs跨內皮遷移率和鈣離子陽性率的影響見表1。如表1所示,與0 mg/L ox-LDL處理組比較,5、10和20 mg/L ox-LDL處理組bmMSCs跨內皮細胞遷移率和鈣離子陽性率均顯著增加,且具有劑量效應。
2.3ox-LDL對小鼠bmMSCs骨架F-actin的影響見圖2。ox-LDL可促進bmMSCs沿培養瓶壁伸展、生長,促進F-actin的重新組裝(F-actin纖維長度增加,且排列更有序)。

表1 不同質量濃度ox-LDL培養對小鼠bmMSCs跨內皮遷移率和鈣離子陽性率的影響(n=5)
*:與0 mg/L ox-LDL處理組相比,P<0.05;#:與5 mg/L ox-LDL處理組相比,P<0.05;△:與10 mg/L ox-LDL處理組相比,P<0.05。

圖2 ox-LDL對小鼠bmMSCs骨架F-actin的影響(×400)
間充質干細胞具有很強的可塑性,可向多種功能細胞分化,是細胞移植術中最常用的種子細胞。目前,bmMSC移植已廣泛應用于多種疾病的治療,但預期療效并不理想,其中,移植后bmMSC歸巢率低是一個主要影響因素[4]。以往研究[7-8]顯示,ox-LDL可促進細胞趨化因子的表達和多種細胞的遷移。作者的研究結果顯示,小鼠bmMSCs具有很強的攝取ox-LDL的能力,經ox-LDL誘導培養后的小鼠bmMSCs遷移能力顯著增加,且具有劑量效應,這說明ox-LDL可調節間充質干細胞的生理功能。
細胞骨架結構是細胞變形、運動和遷移的重要動力學基礎。動態性細胞骨架重組是細胞遷移的前提條件。細胞靠骨架的不斷解聚和重聚合,通過形成偽足,推動細胞向前移動。肌動蛋白纖維F-actin是細胞骨架的重要組成部分,該研究結果顯示ox-LDL可明顯促進F-actin在bmMSCs中的重組,使F-actin排列更加有序,這說明ox-LDL可促使接種后bmMSCs(消化后為圓形)沿培養瓶壁伸展、生長和細胞形態恢復。需要注意的是,其他課題組研究[9]顯示高質量濃度ox-LDL(100 mg/L)也能造成其他種類細胞(如平滑肌細胞)的骨架結構解聚,抑制細胞遷移和誘導細胞的凋亡。所以,在應用ox-LDL誘導bmMSCs遷移時,要盡量控制ox-LDL的質量濃度,避免過高含量對細胞遷移和其他生理功能的損傷。
細胞內鈣離子是調節細胞遷移的另一個重要影響因素。此外,細胞內鈣離子也是細胞骨架重組的調節因子,鈣離子介導的細胞遷移依賴于其對細胞骨架重組的調節作用[10]。以往研究[11]已證實,ox-LDL有促進細胞外鈣離子內流的作用。該研究顯示,伴隨著細胞遷移能力的增加,細胞內鈣離子的濃度也隨之增加,且具有劑量效應。這說明,ox-LDL對bmMSCs遷移能力的影響可能依賴于其對細胞內鈣離子的調節。
總之,該研究顯示,ox-LDL可促進小鼠bmMSCs的遷移,該作用與其調節bmMSCs骨架結構重組和細胞內鈣離子濃度有一定關系。
[1]李海生,陳振鋒,牟心紅.骨髓間充質干細胞移植治療阿爾茨海默病研究進展[J].中國老年學雜志,2010,30(24):3829
[2]方翔,湯兵祥,張曼林,等.骨髓間充質干細胞移植對肺氣腫大鼠的影響[J].鄭州大學學報:醫學版,2010,45(3):395
[3]Bersani G,Marconi D,Limpido L,et al.Pilot study of light therapy and neurocognitive performance of attention and memory in healthy subjects[J].Psychol Rep,2008,102(1):299
[4]Hu X,Wei L,Taylor TM.et al.Hypoxic preconditioning enhances bone marrow mesenchymal stem cell migration via Kv2.1 channel and FAK activation[J].Am J Physiol Cell Physiol,2011,301(2):C362
[5]Lu J,Mitra S,Wang X,et al.Oxidative stress and lectin-like ox-LDL-receptor LOX-1 in atherogenesis and tumorigenesis[J].Antioxid Redox Signal,2011,15(8):2301
[6]Zhang F,Wang C,Jing S,et al.Lectin-like oxidized LDL receptor-1 expresses in mouse bone marrow-derived mesenchymal stem cells and stimulates their proliferation[J].Exp Cell Res,2013,319(7):1054
[7]Liu J,Ren Y,Kang L,et al.Oxidized low-density lipoprotein increases the proliferation and migration of human coronary artery smooth muscle cells through the upregulation of osteopontin[J].Int J Mol Med,2014,33(5):1341
[8]張巧麗,閆輝,唐朝樞,等.硫化氫抑制氧化型低密度脂蛋白誘導的人巨噬細胞單核細胞趨化蛋白-1分泌的作用[J].實用兒科臨床雜志,2012,27(7):513
[9]Massaeli H,Hurtado C,Austria JA,et al.Oxidized low-density lipoprotein induces cytoskeletal disorganization in smooth muscle cells[J].Am J Physiol,1999,277(5 Pt 2):H2017
[10]Joseph N,Reicher B,Barda-Saad M.The calcium feedback loop and T cell activation: how cytoskeleton networks control intracellular calcium flux[J].Biochim Biophys Acta,2014,1838(2):557
[11]Kuda O,Pietka TA,Demianova Z,et al.Sulfo-N-succinimidyl oleate (SSO) inhibits fatty acid uptake and signaling for intracellular calcium via binding CD36 lysine 164: SSO also inhibits oxidized low density lipoprotein uptake by macrophages[J].J Biol Chem,2013,288(22):15547
(2013-11-07收稿 責任編輯趙秋民)
Effect of oxidized low-density lipoprotein on migration of mouse bone marrow-derived stem cells
WUJunfang1),NIUJie1),LIXiaopeng2),ZHANGFenxi3,4),LINJuntang4),RENTongming5),WANGYanli1)
1)LaboratoryofMorphology,XinxiangMedicalUniversity,Xinxiang453003 2)DepartmentofOphthalmology,theThirdAffiliatedHospital,XinxiangMedicalUniversity,Xinxiang453003 3)DepartmentofAnatomy,SanquanCollege,XinxiangMedicalUniversity,Xinxiang453003 4)StemCellandBiotheraphyTechnologyResearchCenter,XinxiangMedicalUniversity,Xinxiang453003 5)LaboratoryofAnatomy,XinxiangMedicalUniversity,Xinxiang453003
oxidized low-density lipoprotein;bone marrow mesenchymal stem cell;cell migration;cytoskeleton;calcium ion;mouse
Aim: To investigate the effect of oxidized low-density lipoprotein(ox-LDL) on migration of mouse bone marrow mesenchymal stem cells(bmMSCs). Methods: bmMSCs were cultured in growth medium with different concentrations (0, 5, 10 and 20 mg/L) of ox-LDL for 6 hours. The transendothelial migration rate of bmMSCs was measured using a Transwell system. The distribution of F-actin in bmMSCs was detected using a laser scanning confocal microscope following Rhodamine phalloidin staining. The concentrations of calcium ion (Ca2+) in bmMSCs was measured using a flow cytometer following Fluo-3/AM staining. Results: bmMSCs had high potential to take up ox-LDL. The transendothelial migration rate was (26.663±1.575)%,(34.653±2.693)%, (38.238±3.050)% and (42.833±3.748)% in control group, 5, 10 and 20 mg/L ox-LDL groups; there was significant differences among control group and the other 3 ox-LDL groups(F=22.576,P<0.001). The flow cytometry analysis showed that the positive rate of Ca2+was (42.375±4.281)%,(66.203±5.416)%,(77.958±4.338)% and (84.638±4.768)% in control group, 5, 10 and 20 mg/L ox-LDL groups; there was significant difference among control group and the other 3 ox-LDL groups(F=63.819,P<0.001). Furthermore, ox-LDL also promoted reorganization of F-actin cytoskeleton. Conclusion: Ox-LDL can promote migration of bmMSCs via regulation of cytoskeleton organization and Ca2+positive rates.
10.13705/j.issn.1671-6825.2014.03.003
*河南省教育廳自然科學基金資助項目 2010A310006
R331