李春燕,唐遠(yuǎn)謀,梁曉玲,劉 嵬,顏 軍,茍小軍*
(1.成都大學(xué)生物產(chǎn)業(yè)學(xué)院,四川 成都 610106;2.西華大學(xué)生物工程學(xué)院,四川 成都 610039;3.成都大學(xué)金牛校區(qū)管理委員會,四川 成都 610036)
油橄欖葉為木犀科、木犀欖屬四季常綠喬木油橄欖(OleaeuropaeaL.)的葉子[1],其富含的抗氧化活性成分遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于橄欖油[2],尤其以葉中橄欖苦苷為代表的抗氧化活性成分,其含量明顯高于果實(shí)和樹枝[3]。橄欖苦苷(oleuropein,OE)是一種重要的苯酚類裂環(huán)烯醚萜苷類化合物,具有極強(qiáng)的抗氧化能力[4-5],研究表明其能減慢低密度脂蛋白的氧化程度,可以預(yù)防冠心病、動(dòng)脈粥樣硬化,還具有舒緩平滑肌和降低血壓等功效[6]。隨著對橄欖苦苷研究的深入,其藥理活性功能逐漸被研究人員發(fā)現(xiàn)并逐步應(yīng)用于醫(yī)療、保健食品和化妝品等行業(yè)。國外對橄欖苦苷的研究較早,Cristina 等[7]對橄欖苦苷及其相關(guān)化合物的產(chǎn)生、分布和它在植物體內(nèi)生物合成過程進(jìn)行了特征分析。王成章等[8]研究了引種的希臘阿斯品種橄欖葉中橄欖苦苷的化學(xué)結(jié)構(gòu)、分析方法及其季節(jié)性變化規(guī)律。彭煥超等[9]采用RP-HPLC法測定了不同來源油橄欖葉中的橄欖苦苷,但沒有對油橄欖葉中的橄欖苦苷做定性分析。為此,本研究擬通過HPLC-DAD對油橄欖葉中的橄欖苦苷做定性定量分析,并進(jìn)一步分析其穩(wěn)定性和重復(fù)性。
1.1.1 材料
油橄欖葉(四川天源油橄欖公司提供)干燥粉碎后備用;40%的橄欖苦苷標(biāo)準(zhǔn)品、乙腈(色譜純)、甲醇,均購自成都科龍化工有限公司。
1.1.2 儀器
微型高速萬能試樣粉碎機(jī)(北京中興偉業(yè)儀器有限公司);KQ3200超聲波清洗儀(昆山市超聲儀器有限公司);日立L-2000高效液相色譜儀、二極管陣檢列測器(日立儀器設(shè)備公司);FA10004B分析天平(上海越平科學(xué)儀器有限公司)。
1.2.1 色譜條件
按照王成章等[10]的實(shí)驗(yàn)方法并作適當(dāng)改進(jìn):色譜柱為Akasil C18(5 μm,4.6 mm×250 mm),流動(dòng)相為23%乙腈水溶液,檢測波長為230 nm,柱溫為35 ℃,流速為1 mL/min。
1.2.2 橄欖苦苷標(biāo)準(zhǔn)品溶液的配制
精密稱取40%的橄欖苦苷對照品10. 0 mg,置于10 mL的容量瓶中,加入體積分?jǐn)?shù)為23%的乙腈-水溶液溶解并定容,搖勻后,配成橄欖苦苷質(zhì)量濃度為0.4 mg/mL的溶液。
1.2.3 油橄欖葉提取液的制備
取自然陰干的油橄欖,粉碎。精確稱取油橄欖葉粉末1 g,置于100 mL錐形瓶中,加入70%的甲醇溶液30 mL,常溫下,于超聲波中提取30 min。提取完全后,過濾,備用。
1.2.4 方法學(xué)考察
1.2.4.1 橄欖苦苷標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
將1.2.2配制的橄欖苦苷標(biāo)準(zhǔn)品溶液按對半稀釋法,依次配成0.2、0.1、0.05、0.025、0.0125 mg /mL的溶液。按質(zhì)量濃度由小到大分別進(jìn)樣,每次進(jìn)樣60 μL,每個(gè)體積重復(fù)進(jìn)樣3次,取其HPLC峰面積平均值。記錄保留時(shí)間和峰面積,以HPLC峰面積為縱坐標(biāo),橄欖苦苷質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),繪制HPLC標(biāo)準(zhǔn)曲線,得HPLC線性回歸方程。
1.2.4.2 穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)
取1.2.3制備的油橄欖葉提取液,每次進(jìn)樣60 μL,每隔1 h進(jìn)樣一次,連續(xù)進(jìn)樣5次,記錄其保留時(shí)間和峰面積,計(jì)算RSD。
1.2.4.3 重復(fù)性實(shí)驗(yàn)
取1.2.3制備的油橄欖葉提取液,每次進(jìn)樣60 μL,重復(fù)進(jìn)樣3次,記錄其保留時(shí)間和峰面積,計(jì)算RSD。
1.2.4.4 加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn)
取1.2.3制備的油橄欖葉提取液5 mL,共5份,各加入0.05 g 40%的橄欖苦苷,搖勻后,用0.45 μm濾頭過濾,進(jìn)HPLC分析,記錄保留時(shí)間和峰面積,計(jì)算平均回收率和RSD。
1.2.4.5 樣品中橄欖苦苷含量的測定
將1.2.3制備的油橄欖葉提取液經(jīng)0.45 μm濾頭過濾,進(jìn)樣量為60 μL,重復(fù)進(jìn)樣3次,取其峰面積的平均值。用面積歸一法,根據(jù)橄欖苦苷的線性回歸方程計(jì)算油橄欖葉中橄欖苦苷的含量。
按1.2.4.1的方法,得到的橄欖苦苷標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖1所示。

圖1 橄欖苦苷的標(biāo)準(zhǔn)曲線
由圖1可知,橄欖苦苷在0.0125~0.4 mg/mL內(nèi)與其峰面積呈良好的線性關(guān)系,以橄欖苦苷質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo)得到回歸方程為y=746 900 22x+157 53,相關(guān)系數(shù)為R2=0.999 9。
2.2.1 油橄欖葉提取液的定性分析
將1.2.3制備的油橄欖葉提取液進(jìn)樣,再用1.2.2制備的40%的橄欖苦苷溶液進(jìn)樣,每次進(jìn)樣量都為60 μL,分別記錄其保留時(shí)間。從圖2可知油橄欖葉提取液中出現(xiàn)了3個(gè)峰,其中被標(biāo)注為1的峰保留時(shí)間為14.389 min,而圖3中40%的橄欖苦苷的保留時(shí)間為14.401 min,通過對比圖2和圖3可知此處該物質(zhì)的出峰的保留時(shí)間很接近,故可判定在此色譜條件下油橄欖葉中含有橄欖苦苷。

圖2 油橄欖葉提取液的HPLC色譜圖

圖3 40%橄欖苦苷的HPLC色譜圖
2.2.2 樣品的穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)
按1.2.4.2方法進(jìn)行樣品穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn),結(jié)果見表1。

表1 樣品的穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)
由表1可知,將同一批次油橄欖葉提取液樣品間隔進(jìn)樣,測得峰面積變化幅度不大,通過線性回歸方程可得油橄欖葉中的橄欖苦苷的平均含量為3.92 mg/g ,RSD為0.75%,表明油橄欖葉提取液的穩(wěn)定性好,用HPLC測定油橄欖葉中橄欖苦苷的含量滿足分析要求。
2.2.3 樣品的重復(fù)性實(shí)驗(yàn)
按1.2.4.3方法進(jìn)行樣品重復(fù)性實(shí)驗(yàn),結(jié)果見表2。

表2 樣品的重復(fù)性實(shí)驗(yàn)
由表2可知,將同種油橄欖葉提取液樣品進(jìn)行3次平行測定,通過對比峰面積變化幅度不大,計(jì)算RSD為0.5%,表明用HPLC方法測定油橄欖葉中橄欖苦苷的含量滿足分析要求。
2.2.4 樣品的加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn)
按1.2.4.4方法進(jìn)行加樣回收率實(shí)驗(yàn),結(jié)果見表3。

表3 樣品的加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn)
由表3可知,樣品的平均回收率為100.8%,RSD為1.35%,滿足分析測定要求。
2.2.5 樣品中橄欖苦苷含量的測定
按1.2.4.5方法得到的橄欖苦苷的峰面積,結(jié)果見表4,得到的橄欖苦苷的線性回歸方程y=746 90 022x+15 753,計(jì)算出油橄欖葉中橄欖苦苷的含量的平均值為3.92 mg/g。

表4 樣品中橄欖苦苷的含量
本方法用高效液相色譜-二極管陣列檢測器(HPLC-DAD)建立油橄欖葉中橄欖苦苷的分析測定方法,橄欖苦苷標(biāo)準(zhǔn)品在0.012 5~0.4 mg/mL內(nèi)與其峰面積呈良好的線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)R2=0.999 9。通過對油橄欖葉進(jìn)行定性分析,可以確定其中含有橄欖苦苷,對建立的HPLC方法進(jìn)行穩(wěn)定性、重現(xiàn)性分析,并對樣品中橄欖苦苷含量進(jìn)行測定,根據(jù)橄欖苦苷標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出油橄欖葉中橄欖苦苷的含量為3.92 mg/g。此方法對樣品處理簡單、測定速度快、重現(xiàn)性好、穩(wěn)定性高,可以用于油橄欖葉中橄欖苦苷含量的測定。
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