張 田 魏子峰 秦麗娟 周洪霞 張宇新
(河北聯合大學基礎醫學院生理學教研室,河北 唐山 063000)
目前,對帕金森病(PD)的治療仍然采用多巴胺(DA)替代療法,已知的藥物只能起到改善癥狀的作用,不能延緩疾病的進程和DA能神經元退變,而且長期服用會產生嚴重的副作用,因此急需找到有效的治療藥物。近年研究顯示,炎癥反應和細胞凋亡在PD病理過程中可能起了重要作用〔1,2〕。羅格列酮是一種常用的治療糖尿病藥物,文獻報道,在神經系統變性疾病中對神經元有保護作用〔3〕。本實驗以1-甲基-4-苯基-1,2,3,6四氫吡啶(MPTP)制備小鼠模型,探討羅格列酮能否減少炎癥因子環氧合酶(COX)-2、前列腺素E2(PGE2)和凋亡蛋白半胱氨酸蛋白酶(caspase)-3表達,從而對DA能神經元產生保護作用,以期為PD尋找新的可能治療途徑。
1.1實驗動物及試劑 雄性健康C57BL/6N 小鼠45只,12~14 周齡,體質量 25~30 g,清潔級,購于北京維通利華公司,自由進食,飲水,室溫(25±2)℃,單籠喂養。MPTP(Sigma,USA)、兔抗人COX-2多克隆抗體(福州邁新公司)、兔抗鼠caspase-3多克隆抗體(福州邁新公司)、兔抗鼠PGE2單克隆抗體(Cayman,USA)、預染蛋白Marker(天津灝洋生物公司)、大鼠抗酪酸羥化酶(TH)單克隆抗體(Chemicon,USA)、羅格列酮(英國葛蘭素史克公司)、UltraSensitive SP超敏試劑盒(福州邁新公司)。
1.2動物分組和模型制備 實驗動物隨機分為3組,每組15只。模型組:腹腔注射MPTP(25 mg/kg,生理鹽水溶解),1次/d,連續7 d;羅格列酮處理組:在MPTP注射前4 h灌胃給予羅格列酮預處理(4 mg/kg),1次/d,連續7 d;對照組:注射與模型組等量生理鹽水。
1.3組織固定、取材和切片 MPTP第7 次注射后12 h ,每組隨機取9只小鼠。腹腔麻醉后,經左心室插管用生理鹽水(室溫)灌注,再用4%的多聚甲醛磷酸鹽緩沖液緩慢灌注固定,迅速切取中腦黑質部位腦塊,置于4%多聚甲醛后固定48 h(4℃),固定好的腦組織經蒸餾水沖洗、梯度乙醇脫水、二甲苯透明、浸蠟、包埋,包埋后,石蠟切片機做連續冠狀切片,片厚5 μm,4℃保存備用。每組15只小鼠中,隨機取另外6只進行免疫印跡分析。小鼠麻醉后,迅速斷頭取腦,分離中腦黑質部分,置入細胞裂解液中,低溫勻漿,4℃震蕩30 min后,12 000 r/min,4℃離心15 min,取上清液,-80℃保存備用。
1.4免疫組織化學 免疫組織化學顯色采用鏈霉素親生物素-過氧化酶連接法(SP)法,步驟如下:切片經二甲苯脫蠟、梯度乙醇脫水后,用三乙醇胺緩沖鹽水溶液(TBS)(pH 7.4±0.2)洗3次,每次5 min;組織切片進行水浴法抗原修復;降至室溫;每張切片加入過氧化氫(25 μl)阻斷內源性過氧化物酶;每張切片滴加10%正常山羊血清(25 μl)室溫孵育15 min,同一組織相鄰切片分別加入兔抗人COX-2多克隆抗體(1∶100),兔抗鼠caspase-3多克隆抗體(1∶300),兔抗鼠PGE2單克隆抗體(1∶300),大鼠抗TH單克隆抗體(1∶300),4℃過夜;加入二抗(生物素標記羊抗兔IgG,1∶150)室溫孵育20 min;加入鏈霉菌抗生物素蛋白-過氧化酶溶液(25 μl)室溫孵育20 min,二氨基聯苯胺(DAB)顯色,自來水沖洗,蘇木精復染,梯度乙醇脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片,光鏡下觀察。免疫組織化學顯色數據,采用CMIAS真彩醫學圖像自動分析系統進行陽性細胞計數。各組每只動物3張腦片數值相加后取平均值。
1.5免疫印跡 蛋白定量后取4倍體積樣品緩沖液,95°C變性10 min。蛋白上樣量為每孔30 g,10% SDS-PAGE電泳,將蛋白電轉移至硝酸纖維膜上,依分子量大小切取條帶,加入封閉液室溫下震蕩2 h后,取相應條帶分別加入兔抗人COX-2多克隆抗體(1∶100),兔抗鼠caspase-3多克隆抗體(1∶300),兔抗鼠PGE2單克隆抗體(1∶300),大鼠抗TH單克隆抗體(1∶400),4℃過夜。室溫孵育1 h后;分別加入二抗(生物素標記羊抗兔IgG,1∶500)室溫孵育1 h;加入鏈霉菌抗生物素蛋白-過氧化酶溶液室溫下孵育0.5 h;DAB顯色,掃描蛋白印跡條帶,作定量分析。
1.6行為學檢測 為了測定各組小鼠行為學功能改變,本實驗采用爬桿實驗。具體方法是,MPTP注射7 d后,將一根長55 cm直徑0.8 cm的木桿上端纏以紗布以防止打滑,作為實驗爬桿。測試時將被測小鼠頭向上置于木桿頂端。分別記錄小鼠轉身時間(T-turn)和完全爬到桿底所需要的時間(T-LA)并作統計學分析。每只小鼠測3次取平均值。爬桿時間參數的延長反應小鼠運動功能損害的程度。
1.7統計學方法 采用SPSS13.0 統計軟件進行單因素方差分析及q檢驗。
2.1免疫組織化學檢測 對照組小鼠中腦黑質區偶見COX-2、PGE2和caspase-3陽性細胞, 模型組COX-2、PGE2和caspase-3陽性細胞數量顯著增多;經羅格列酮處理后,COX-2、PGE2和caspase-3陽性細胞較模型組降低(P<0.05)。對照組小鼠黑質區可見大量TH陽性神經元,與對照組比較,模型組TH陽性神經元大量丟失,經羅格列酮處理后,TH陽性神經元丟失程度明顯減輕(P<0.05)。見表1。
2.2免疫印跡檢測 免疫印跡結果顯示,對照組僅有微量COX-2、PGE2和caspase-3表達,模型組COX-2、PGE2和caspase-3表達水平升高(P<0.05);經羅格列酮處理后,COX-2、PGE2和caspase-3蛋白表達水平明顯下降(P<0.05);模型組TH表達較對照組降低,羅格列酮治療后出現明顯升高(P<0.05)。見表2。

表1 各組小鼠中腦黑質COX-2,PGE2,caspase-3和TH陽性細胞數

表2 各組小鼠中腦黑質COX-2,PGE2,caspase-3和TH蛋白表達水平
2.3行為學檢測 MPTP注射7 d后,模型組小鼠出現典型PD樣癥狀,表現為豎毛、翹尾、震顫和運動變緩等特征。爬桿試驗中,與對照組小鼠比較,出現爬桿能力下降,爬桿所需用時間顯著延長。羅格列酮處理后,小鼠運動功能得到一點程度改善,表現為爬桿時間明顯縮短(P<0.05)。見表3。

表3 羅格列酮對不同組小鼠爬桿時間的影響
PD是一種常見于中老年人中樞神經系統退變性疾病,其病理改變主要為中腦黑質區DA能神經元變性壞死,DA合成減少,進而抑制乙酰膽堿的功能降低,兩者失衡從而出現“震顫麻痹”。迄今為止,病因及發病機制不詳。
研究表明,細胞凋亡是PD發病的重要機制之一〔4〕。caspase-3是細胞凋亡過程的最終執行者,在DA能神經元變性中可能起重要作用〔5〕。COX-2是炎癥介質PGE2合成的限速酶,有研究顯示,COX-2及其介導的炎癥介質PGE2可能參與DA能神經元丟失〔6〕。本實驗采用MPTP制備PD小鼠模型,于MPTP注射后第7天觀察了小鼠黑質區COX-2、PGE2和凋亡因子caspase-3的表達及TH神經元丟失情況。免疫組化結果顯示,模型組小鼠黑質區TH陽性神經元顯著丟失,同時伴有COX-2、PGE2和caspase-3大量表達,而對照組未出現上述變化;免疫印跡檢測,結果也顯示了同樣的趨勢。這些現象表明,DA能神經元丟失可能與炎癥反應及細胞凋亡存在密切聯系。
目前,對PD的治療仍然是控制癥狀,左旋多巴是治療PD的首選藥物,但它并不能阻止病程進展,長期應用會使疾病惡化。文獻報道,羅格列酮能減少脊髓損傷后神經細胞凋亡,促進神經功能的恢復〔7〕,在亨廷頓疾病中,羅格列酮可防止線粒體功能障礙,對神經元起到保護作用〔8〕。最近研究發現,在MPTP所致PD慢性動物模型中,羅格列酮可以通過降低小膠質細胞中過氧化物酶體增殖物激活受體(PPAR)-γ表達水平從而抑制炎性因子腫瘤壞死因子(TNF)-α產生〔9〕。由于MPTP選擇性破壞黑質DA能神經元導致黑質紋狀體神經末梢DA遞質大量減少,從而出現PD樣癥狀。
綜上,在本實驗條件下,MPTP可誘導模型動物中腦黑質COX-2、PGE2和caspase-3的高表達,最終導致DA能神經元變性丟失;羅格列酮可抑制COX-2、PGE2和caspase-3表達,使DA能神經元變性丟失現象有所減輕,從而發揮一定的神經保護作用。
4 參考文獻
1Orr CF,Rowe DB,Mizuno Y,etal.A possible role for humoral immunity in the pathogenesis of Parkinson′s disease〔J〕.Brain,2005;128(11):2665-74.
2Mori T,Hayashi T,Su TP,etal.Compromising sigma-1 receptors at the ER renders cytotoxicity to physiologically relevant concentrations of dopamine in a NF-κB/Bcl-2-dependent mechanism:potential relevance to Parkinson′s disease〔J〕.J Pharmacol Exp Ther,2012 ;341(3):663-71.
3Escribano L,Simón AM,Gimeno E,etal.Rosiglitazone rescues memory impairment in Alzheimer′s transgenic mice:mechanisms involving a reduced amyloid and tau pathology〔J〕.Neuropsychopharmacology,2010;35(7):1593-604.
4Rodríguez-Blanco J,Martín V,García-Santos G,etal.Cooperative action of JNK and AKT/mTOR in 1-methyl-4-phenylpyridinium-induced autophagy of neuronal PC12 cells〔J〕.J Neurosci Res,2012;90(9):1850-60.
5Lee JE,Kang JS,Ki YW,etal.Fluazinam targets mitochondrial complex I to induce reactive oxygen species-dependent cytotoxicity in SH-SY5Y cells〔J〕.Neurochem Int,2012; 60(8):773-81.
6Wang Q,Zheng H,Zhang ZF,etal.Ginsenoside Rg1 modulates COX-2 expression in the substantia nigra of mice with MPTP-induced Parkinson’s disease through the P38 signaling pathway〔J〕.J South Med Univ,2008; 28(9):1594-8.
7張 欽,吳繼彬,黃 晨,等.羅格列酮對大鼠脊髓損傷后神經細胞凋亡的影響〔J〕.山東醫藥,2010;50(22):35-6.
8Quintanilla R A,Jin YN,Fuenzalida K,etal.Rosiglitazone treatment prevents mitochondrial dysfunction in mutant huntingtin-expressing cells - Possible role of peroxisome proliferator-activated receptor-gamma (PPAR gamma) in the pathogenesis of Huntington disease〔J〕.J Biol Chem,2008;283(37):25628-37.
9Carta AR,Frau L,Pisanu A,etal.Rosiglitazone decreases peroxisome proliferator receptor-gamma levels in microglia and inhibits TNF-α production:new evidences on neuroprotection in a progressive Parkinson′s disease model〔J〕.Neuroscience,2011;194(2):250-61.