何培生 唐 穎 周小平 芮曉云 周紅梅
(重慶三峽中心醫院普外二科,重慶 404000)
大量的研究證明miRNA參與腫瘤的發生發展、侵襲、治療和預后等過程,具有重要的生物學功能〔1~3〕。也有文獻〔4~6〕報道很多miRNA與結腸癌有關,如miR143和miR145等,但miR196a、miR146a、miR27a和miR200a等在結腸癌中的作用卻未見報道。本研究檢測miR196a、miR146a、miR27a和miR200a在結腸癌中的表達情況,并探討其中差異miRNA對結腸癌細胞增殖能力和侵襲能力的影響。
1.1材料
1.1.1細胞株 人結腸癌細胞株LoVo購自上海賽默生物科技發展有限公司。
1.1.2主要試劑 細胞培養用RPMI1640培養液、胎牛血清(FCS)、青霉素-鏈霉素(P-S雙抗)等均購自美國GIBCO公司,使用前按照89∶10∶1比例配制成完全1640培養液; mRNA抽提試劑盒miRNeasy Mini Kit購自QIAGEN公司;cDNA逆轉錄試劑盒ReverAidTM First Strand Cdna Synthesis Kit購自Thermo公司;RT-PCR試劑盒FastvStart Universal SYBR Green Master Kit購自羅氏公司;轉染試劑脂質體lipofectamine2000(簡稱lipo2000)購自美國Invitrogen公司;Opti-MEM I低血清培養基購自GIBCO公司;細胞計數試劑盒-8(CCK-8)購自碧云天生物技術研究所;miR27a mimics和miR27a inhibitors及陰性控制購自廣州銳博公司(RiBoBio);Matrigel購自BD Bioscience公司;Transwell侵襲小室(8 pm孔徑)購自Millipore公司;細胞培養板購自美國Costar公司。
1.2方法
1.2.1病例樣本和體外實驗樣本量 正常組為33例健康志愿者的結腸組織,大腸炎組為26例結腸炎患者的炎性結腸組織,結腸癌組為42例結腸癌患者的結腸癌組織;體外實驗每組樣本量n≥6,每個實驗重復3次。
1.2.2RT-PCR 提RNA,逆轉錄為cDNA,取各組cDNA,用ddH2O稀釋50倍。設定以下循環:①50℃,2 min;②95℃,10 min;③95℃,15 s;④60℃,1 min;⑤重復第③④步;⑥95℃,15 s;⑦60℃,30 s;⑧95℃,15 s。上樣檢測。
1.2.3細胞培養 用含10% FCS的L-15培養基培養。所有細胞均在37℃、無CO2、飽和濕度條件下傳代培養,選用對數生長期細胞進行實驗。
1.2.4細胞轉染實驗分組 (1)對照組,無任何轉染;(2)脂質體組,僅加入脂質體;(3)Negative組,加入無關序列和脂質體;(4)miR27a mimics轉染組,加入miR27a mimics 80 nmol/L(終濃度為100 nmol/L)和相應劑量的脂質體;(5) miR27a inhibitors轉染組,加入miR27a inhibitors 80 nmol/L(終濃度為80 nmol/L)和相應劑量的脂質體。
1.2.5轉染效率 轉染前24 h接種結腸癌細胞于24孔板,待生長至30%~50%匯合時,0pti-MEM I 釋轉染試劑lipo2000,另用Opti-MEM I 分別稀釋不同劑量的Transfection Control(Cy3),使轉染時終濃度分別為40、60、80、100和120 nmol/L,室溫孵育5 min;二者混合,室溫培養20 min以形成Transfection Control(Cy3)-lipo2000混合物,再加入含有細胞及培養液的24孔板中,輕晃均勻;將培養板置于37℃、CO2培養箱中培養。24 h后用PCR檢測miR27a的表達情況,以確定最優轉染濃度。
1.2.6miR27a mimics和miR27a inhibitors轉染 轉染前24 h接種結腸癌細胞LoVo于6孔板,待生長至30%~50%匯合時,取Negative、miR27a mimics、miR27a inhibitors和脂質體,分別經Opti-MEM稀釋。于室溫中作用5 min后將兩者緩緩混合,靜置20 min,加入結腸癌細胞中搖晃混勻。培養6 h后換含10%胎牛血清的1640培養液,培養24~48 h后收集細胞用于后續實驗。另設單純脂質體轉染組,未轉染細胞做對照組。實驗重復3次。
1.2.7CCK-8檢測腫瘤細胞增殖能力 按照CCK-8試劑盒說明書進行。將結腸癌細胞LoVo按4×103個/孔接種于96孔培養板(100 μl/孔)中,待細胞貼壁后轉染。分別于轉染后(24、48、72 h)加入CCK-8 10 μl/L,37℃、5% CO2培養2 h,酶標儀測定D450值。每個處理組設5個復孔。重復3次。
1.2.8侵襲能力檢測 結腸癌細胞體外侵襲實驗:用50 mg/L基質膠(BD公司)1∶4稀釋液包被8/μm孔徑Transwell小室濾膜的上表面,于37℃、5%CO2培養箱中溫育1 h,用L-15水化小室濾膜上、下表面。消化收集轉染后24 h的細胞,離心棄去培養液。用磷酸鹽緩沖液(PBS)洗1~2遍,用含0.1%BSA的L-15培養基重懸,調整細胞密度至1×105/ml的細胞懸液。24孔板中放置Transwell侵襲小室,先在小室上層分別加入事先制備好的4組細胞懸液200 μl,輕輕搖勻。再向下室加入600 μl含10%FBS的L-15培養液。置24孔板于37℃、無CO2培養箱中培養。48 h后從孔板中移出小室,用脫脂棉拭去小室濾膜上層未通過微孔的細胞,將此濾膜先于4%多聚甲醛中固定30 min,1%結晶紫染色10 min,使侵襲到濾膜下層的細胞充分著色呈紫藍色,輕輕洗滌殘余染料,倒置顯微鏡觀察,每組隨機選擇6個視野,計數。重復實驗3次。
1.3統計學方法 應用 SPSS17.0 軟件行t檢驗。
2.1結腸癌癌組織中miR196a、miR146a、miR27a和miR200a的表達水平 與正常組相比,結腸炎組和結腸癌組中miR196a的表達基本沒有變化;正常組和結腸炎組miR146a的表達也沒有差異,而結腸癌組miR146a的表達水平則比正常組略有增高,但是并沒有統計學意義(P>0.05);同樣,結腸炎組中miR27a的表達與正常組一致,但結腸癌組miR27a的表達水平與正常組和大腸炎組相比顯著增加(P<0.05);miR200a在結腸炎組和結腸癌組中的表達水平比正常組均略有增高,但仍沒有統計學意義(P>0.05)。見圖1。

圖1 結腸癌癌組織中miR196a、miR146a、miR27a和miR200a的表達水平
2.2轉染效率 miR27a mimics轉染組隨著轉染劑量的不斷增加,檢測到的胞內miR27a水平也逐漸增多,終濃度為80 nmol/L時,miR27a的水平達到高峰,之后終濃度增至100和120 nmol/L時,miR27a的水平則進入平臺期,不再增加(圖2A);miR27a inhibitors轉染組隨轉染劑量的增加,胞內miR27a水平逐漸下降,當終濃度為100 nmol/L時,miR27a inhibitors的水平降至最低,濃度增加為120 nmol/L時,miR27a inhibitors的水平并無明顯下降,進入平臺期(圖2B)。故選擇100 nmol/L終濃度作為miR27a mimics和miR27a inhibitors的最優轉染濃度。
2.3miR27a對結腸癌細胞增殖能力的影響 對照組、脂質體組和Negative組結腸癌細胞的增殖曲線基本相似,增殖速度無明顯差異,而miR27a mimics組與Negative組相比結腸癌細胞的增殖速度顯著升高(P<0.05),且miR27a inhibitors組結腸癌細胞的增殖速度比Negative組明顯下降(P<0.05)。見圖3。

圖2 結腸癌細胞轉染miR27a mimics和miR27a inhibitors后的表達水平

圖3 miR27a對結腸癌細胞增殖能力的影響
2.4miR27a對結腸癌細胞侵襲能力的影響 對照組細胞具有一定的侵襲能力,48 h穿過8 μm孔徑的細胞數為(30±6)個,脂質體組和Negative組侵襲能力與對照組一致,穿過8 μm孔徑的細胞數分別為(28±5)和(28±9)個。而miR27a mimics轉染組穿過8 μm孔徑的細胞數〔(51±10)個〕比Negative組的侵襲能力顯著增加(P<0.05);而與Negative組相比,miR27a inhibitors轉染組的侵襲能力明顯下降,其48 h穿過8 μm孔徑的細胞數為(15±4)個(P<0.05)。
結腸癌是最為常見的惡性腫瘤之一,它的發生與多種因素有關,如糖尿病、炎性腸病和吸煙等〔7〕。已有文獻報道miR196a、miR146a、miR27a和miR200a等在胰腺癌和卵巢癌等嚴重疾病中均出現表達差異,且發揮了十分重要的作用〔8~10〕。
本研究結果提示miR196 m、miR146a、miR27a、miR200a對癌細胞的功能如增殖能力和侵襲能力等都可能有顯著影響。另外隨著轉染劑量的增加,miR27a mimics和miR27a inhibitors對miR27a的調控作用越明顯,綜合考慮,選100 nmol/L作為轉染的優化濃度,而且miR27a能增強結腸癌細胞的增殖能力。除增殖能力之外,腫瘤細胞的侵襲能力也是反映其惡性程度的一項重要指標,miR27a能增強結腸癌細胞的侵襲能力。
綜上,結腸癌患者的結腸癌細胞中,miR27a的表達顯著上調,而miR27a的上調則能增強結腸癌細胞的增殖能力和侵襲能力,從而促進結腸癌的進一步發展和惡化。本研究彌補了這些miRNA在結腸癌研究中的不足,也為進一步深入研究結腸癌的發生發展機制提供了一種新的可能性。
4 參考文獻
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