養豬場豬抗體水平的有效采樣與檢測方法

養豬場豬抗體水平的有效采樣與檢測方法

李佳鵬

(黑龍江省樺川縣獸醫衛生防疫站154300)

最近幾年，我國豬只的飼養模式大多都是規模化、集約化，盡量在有限的空間內，采用工廠化的飼養方式盡可能多的飼養豬只，從而得到較大的收益。據報道，經過高度選育的豬群，對疾病特異和非特異抵抗的免疫記憶逐代降低，飼養空間小，而飼養密度又比較大，都會降低豬群的抵抗力，如果傳染病暴發流行在豬群中，會給飼養者帶來較大的經濟損失。

1被采樣豬只

飼養場中的采樣主要對象是公豬和后備母豬，尤其是種公豬，而后備母豬是飼養場的源頭，公豬和后備母豬的抗體水平基本上能夠反映出本場的整個抗體水平。對妊娠豬、哺乳豬、斷奶母豬和仔豬也進行采樣，對豬只生長流程中的各階段加以監控。

2采樣數量

采樣有一定的數量才具有統計學意義，如果采樣品的數量低，根本不能夠代表整個養豬場的抗體水平，但是如果采樣樣品的數量太多，又不經濟。按照一般統計學的規律，如果豬群的采樣量為20頭時，具有98%的可信度；采樣量為30頭時，就能達到99%的可信度；當采樣量達到40頭時，就具有了99.5%的可信度；若豬群的采樣量為50頭，那么可信度就能達到99.9%。所以，建議分別對每個階段采樣30頭以上，幾乎就可以代表豬場的整體水平。

3采樣方法

采樣時要選擇健康的豬只，不對病豬進行采樣，確保是隨機進行采樣，保證每個胎次都能達到均衡狀態。采血時要盡量避免污染，用酒精棉擦拭采血部位進行消毒，采血量要多于2mL，這樣能夠保證供檢測的血清足夠量。清楚標記采集的樣品、編號要具有規律性，有順序的給樣品進行排列，以便于檢測和對結果進行統計。采集的樣品要裝在保溫盒中，并且保溫盒里應該有冰袋，及時的送到實驗室，在運送途中盡量不要搖晃保溫盒，避免出現溶血現象。采集的樣品應該標記號詳細的說明，具體數據應該包括豬只的日齡、胎齡、豬群種類以及健康狀況，還有最后的免疫時間和疫苗來源等。

4檢測

豬瘟血清抗體水平的檢測采用正向血凝試驗。在96孔血凝板上，每孔加入50μL稀釋液，每排第一孔加入待檢血清50μL，遞比稀釋待檢血清至血清濃度為1∶512，最后50μL丟棄。再在每孔加入抗原診斷液25μL，置濕盒中于25℃孵育1.5~3.0h，判定結果。判定標準：凡能使50%的紅細胞凝集的血清最大稀釋倍數為該份血清的抗體效價，豬瘟血清抗體效價高于或等于1∶16視為免疫合格。豬偽狂犬病、豬藍耳病抗體檢測參照美國IDEXX公司ELISA診斷試劑盒說明書進行。待檢血清分別作1∶20(豬偽狂犬病抗體檢測)和1∶40(豬藍耳病抗體檢測)稀釋。取稀釋好的待檢血清100μL加入包被好的96孔聚苯乙烯診斷試劑盒中，置濕盒內25℃作用30min，取出，用洗滌液充分洗滌3~5次，甩盡殘留液體，每孔加入酶標抗體100μL，置濕盒內2.5℃作用30min，洗滌。再在每孔中加入TMB底物溶液100μL，置濕盒內25℃；作用15min后，加入終止液100μL， 立即置B10-RAD550型酶標儀上650nm處測定。分別按所附計算公式判定是否為血清抗體陽性。

5討論

從整體水平出發，以豬瘟抗體間接血凝價在1∶16以上時能抵抗強毒感染作為參考，僅有很少的豬場和豬群達不到這個水平。也有部分豬場中的少數豬只，豬瘟抗體滴度低，不能抵抗強毒侵襲而發病，或者是成為隱性帶毒豬，對易感豬群造成威脅。導致這種結果的原因，可能與豬瘟疫苗免疫程序不合理和免疫質量不佳有關。清除小群范圍內的疾病感染，可以使用基因工程致弱活毒苗，以及相容的血清學試驗區分疫苗抗體和野毒感染誘導產生的抗體。

抗體水平的形成會因為接種疫苗引起，也可能是因為自然感染的野毒引起，目前對于抗體水平形成的具體原因還沒有確定，也不容易區分。有的疫苗是靠細胞免疫發揮作用的而不是依靠抗體水平，比如偽狂犬病，所以用抗體水平評價偽狂犬疫苗是無任何作用的。不同生長階段的豬群，其抗體水平也不相同，在產房仔豬具有較高的母源抗體水平，但是進入到保育舍以后，所有病原或者是疫苗的抗體水平都處于最低水平，到肥育階段抗體水平會逐漸上升，發育為母豬的時候，抗體水平達到最高狀態。