牛朝霞,李寧寧,陳 潔,李宜培,彭蕤蕤,秦紫芳
河南醫學高等??茖W校病理生理學教研室 鄭州 451191
△女,1979年10月生,碩士,講師,研究方向:惡性腫瘤功能基因組學,E-mail:nzx99@163.com
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RNA干擾沉默survivin基因對Eca-109細胞增殖與凋亡的影響*
牛朝霞△,李寧寧,陳潔,李宜培,彭蕤蕤,秦紫芳
河南醫學高等??茖W校病理生理學教研室 鄭州 451191
△女,1979年10月生,碩士,講師,研究方向:惡性腫瘤功能基因組學,E-mail:nzx99@163.com
關鍵詞RNA干擾;survivin;細胞增殖;細胞凋亡;Eca-109細胞
摘要目的:通過RNA干擾抑制食管癌細胞Eca-109 survivin基因的表達,觀察survivin基因沉默對Eca-109細胞增殖與凋亡的影響。方法:構建靶向survivin基因的siRNA表達載體并借助脂質體穩定轉染Eca-109細胞(干擾組),同時設轉染無關干擾質粒的Eca-109細胞為陰性對照,未轉染細胞為空白對照。采用Western blot檢測survivin基因沉默效果,MTT、平板克隆形成實驗及流式細胞術分析干擾前后Eca-109細胞增殖與凋亡的變化。結果:與兩對照組相比,干擾組Survivin蛋白的表達降低(F=79.397,P<0.001);MTT檢測結果顯示,干擾組抑制細胞增殖效果優于兩對照組,而平板克隆形成實驗顯示干擾組克隆形成率低于兩對照組(F=162.026,P<0.001);流式細胞術分析顯示,干擾組凋亡指數高于兩對照組(F=2 284.205,P<0.001)。結論:RNA干擾可特異性沉默survivin基因的表達,抑制Eca-109細胞的增殖,誘導細胞凋亡。
AbstractAim: To inhibit endogenous survivin expression by RNA interference technology and investigate the effects on proliferation and apoptosis of Eca-109 cells.Methods: An siRNA expressing vector targeting survivin was constructed and transfected into Eca-109 cells via LipofectamineTM2000 to establish stable transfection cell line.The Eca-109 cells transfected non-sense sequence and those untransfected were used as control.The expression level of Survivin protein was detected by Western blot to observe the interference effect; cell proliferation of Eca-109 cells was determined by MTT assay and colony formation assay; cell apoptosis of Eca-109 cells was measured by flow cytometry analysis.Results: Compared with the 2 control groups, the expression level of Survivin protein in the interference group was significantly reduced(F=79.397,P<0.001); cell proliferation in the interference group was distinctly inhibited(F=162.026,P<0.001); the apoptosis index in the interference group was significantly increased(F=2 284.205,P<0.001). Conclusion: Knockdown of endogenous survivin via specific RNA interference can effectively inhibit cell proliferation and significantly induce cell apoptosis of Eca-109 cells.
Survivin作為一種在腫瘤發生發展中起重要作用的凋亡抑制蛋白,廣泛表達于人類多種腫瘤,具有調節細胞周期、抑制細胞凋亡等功能[1-4]。食管癌是我國常見的消化系統惡性腫瘤之一,其發生發展是多因素參與、多階段進展的過程。目前針對食管癌中晚期患者臨床上依然采取手術根治輔以放化療,但術后5 a生存率較低,預后較差[5]。由此,人們嘗試將分子靶向基因治療應用于臨床實踐中。目前已證實[6],survivin基因高表達于食管癌組織中,而在正常食管組織中基本不表達。因此,survivin有望成為食管癌患者基因治療的潛在新靶點。該研究選擇survivin基因作為干擾靶點,利用RNA干擾技術檢測沉默該基因對食管癌Eca-109細胞增殖與凋亡的影響,為食管癌的診斷與治療提供理論基礎。
1材料與方法
1.1材料Eca-109細胞由上海細胞生物研究所建株。RPMI 1640培養基、胰蛋白酶、胎牛血清(FBS)購自Gibco公司,MTT、DMSO及LipofectamineTM2000轉染試劑盒購自Invitrogen 公司,引物DNA、T4 DNA連接酶、BamHⅠ/HindⅢ限制性內切酶、Taq DNA聚合酶均購自TaKaRa公司,蛋白質相對分子質量標準購自Promega公司,BCA蛋白濃度檢測試劑盒、ECL化學發光檢測試劑盒均購自美國Pierce公司,質粒抽提試劑盒購自上海華舜生物工程公司,Survivin和β-actin抗體購自Santa Cruz公司,干擾質粒pRNAT-U6.1/Neo、陰性對照干擾質粒siRNA購自Gencript公司,Annexin V-FITC凋亡檢測試劑盒購自美國BD公司。
1.2細胞培養Eca-109細胞培養于含體積分數10%FBS的RPMI 1640培養基中,置于37 ℃、體積分數5%CO2的培養箱內培養,待細胞融合度達70%~80%時,以2.5 g/L胰蛋白酶進行消化與傳代。
1.3靶向survivin的寡核苷酸序列的設計利用生物信息學軟件,針對survivin基因487~505 bp的靶位點設計兩條互補的DNA鏈,其序列分別為:5’-GATCCAGAATTTGAGGAAACTGCGCTGTGAAGCCAC AGATGGGCGCAGTTTCCTCAAATTCTTTTTTA-3’和3’-GTCTTAAACTCCTTTGACGCGACACTTCGGTGTCT ACCCGCGTCAAAGGAGTTTAAGAAAAAATTCGA-5’;兩條DNA鏈的結構均為:BamHⅠ+正義序列+莖環序列+反義序列+轉錄終止子+HindⅢ,在細胞內形成所謂的“發夾結構”。
1.4siRNA表達質粒的構建載體pRNAT-U6.1/Neo經BamH Ⅰ和Hind Ⅲ雙酶切后與由TaKaRa公司合成的靶向survivin的寡核苷酸退火后連接,并進行轉化,隨后挑取克隆,進行質粒抽提、菌落PCR鑒定及測序,得到針對survivin的siRNA表達質粒pRNAT-siRNA-survivin,同法構建陰性對照質粒:pRNAT-siRNA-control,最后兩質粒分別大量抽提后備用。
1.5細胞轉染待Eca-109細胞達對數生長期時,將干擾質粒pRNAT-siRNA-survivin和陰性對照質粒pRNAT-siRNA-control按照LipofectamineTM2000轉染試劑盒說明分別轉染Eca-109細胞,48 h后用G418篩選2~3周,可見典型的抗性克隆,擴大培養,建成穩定轉染細胞系,分別為干擾組和陰性對照組,同時設未轉染的Eca-109細胞為空白對照。
1.6survivin基因沉默效果的Western blot檢測
取對數生長期的上述3組細胞,按蛋白抽提要求進行處置,分別取50 μg總蛋白進行不連續SDS-PAGE電泳;電泳結束后,用半干石墨電轉移2 h,將分離出的蛋白轉移至硝酸纖維素膜上,用PBS配制的50 g/L脫脂奶粉溶液在室溫搖床上封閉1~2 h,加入鼠抗人單克隆一抗(按1300稀釋),4 ℃過夜孵育,洗膜,再加入相應二抗,室溫孵育1.5 h,再洗膜,經ECL化學發光檢測和拍照,以β-actin作為內對照,結果進行灰度掃描,以Survivin/β-actin灰度值的比值作為Survivin蛋白的表達水平。重復實驗3次。
1.7細胞增殖的MTT檢測分別將對數生長期的上述3組細胞按0.5×104個/孔接種于96孔板,每孔200 μL,每組接種8孔;培養24 h,待細胞融合達80%左右時每孔加MTT 20 μL,繼續孵育4 h,棄培養液,每孔再加入150 μL DMSO,振蕩10 min;然后在酶標儀上測定490 nm處的OD值進行比色;如此每隔24 h重復上述步驟,共檢測6 d。最后以OD值為縱坐標,間隔時間為橫坐標,繪制生長曲線。
1.8細胞增殖的平板克隆形成檢測取對數生長期的上述3組細胞,分別行常規胰蛋白酶消化,并吹打成單細胞懸液,按200個/孔接種于6孔板,每種細胞接種3孔,置37 ℃、體積分數5%CO2培養箱中靜置培養2~3周,直至肉眼可見細胞克隆,終止培養;棄去上清液,用PBS小心浸洗2次;加甲醇5 mL固定15 min,棄去固定液;加Giemsa液室溫染色10~30 min,用清水緩慢洗去染色液,空氣中干燥,將平皿倒置并疊加一張帶網格的透明膠片,用肉眼直接計數克隆數,并計算克隆形成率(克隆形成率=克隆數/接種細胞數×100%)。重復實驗3次。
1.9細胞凋亡率的流式細胞術檢測取對數生長期的上述3組細胞各3瓶,按照Annexin V-FITC凋亡檢測試劑盒說明分別檢測各組細胞凋亡,計算凋亡指數(apoptosis index,AI),AI=凋亡細胞數/觀察細胞數×100%。重復實驗3次。
1.10統計學處理采用SPSS 17.0處理數據,應用單因素方差分析比較3組細胞Survivin蛋白的表達水平、克隆形成率及AI的差異,兩兩比較采用LSD-t檢驗,檢驗水準α=0.05。
2結果
2.13組細胞Survivin蛋白的表達見圖1。空白對照組、陰性對照組及干擾組Survivin蛋白的表達水平分別為(46.20±2.62)、(44.17±3.15)和(18.75±3.12),3組間相比,F=79.397,P<0.001;與兩對照組相比,干擾組Survivin蛋白的表達水平降低(P<0.05)。

圖1 3組細胞中Survivin蛋白的表達
2.23組細胞增殖的變化見圖2、3,表1。由圖2可知,從第4天開始,干擾組Eca-109細胞的生長活力比陰性對照組和空白對照組降低,而后兩者的細胞生長活力無明顯變化。由圖3、表1可知,與兩對照組相比,干擾組的細胞克隆生長速度較慢,形成的克隆較小,克隆數較少;干擾組克隆形成率較陰性對照組及空白對照組低。

圖2 3組細胞的生長曲線

圖3 3組細胞的平板克隆形成情況
2.33組細胞AI的比較見表1。由表1可知,與兩對照組相比,干擾組細胞的AI升高。

表1 3組細胞平均克隆形成率和AI的比較 %
*:與兩對照組相比,P<0.05。
3討論
survivin作為一種抗凋亡基因,與腫瘤的生長、腫瘤血管生成、腫瘤細胞對放化療藥物的敏感性以及腫瘤的診斷、治療、預后及復發等密切相關;抑制survivin基因的表達能夠在一定程度上誘導腫瘤細胞凋亡,進而提高細胞對放化療藥物的敏感性[7]。同時survivin基因具有高度保守性,幾乎高表達于人類所有的腫瘤組織中,與惡性腫瘤的關系尤為密切,而在分化成熟的成年組織及癌旁正常組織中均無表達[8]。針對該特點,研究者[9-11]開展了大量有關食管癌與survivin的研究,結果均表明survivin在食管癌組織中高表達,可能作為癌基因參與食管癌的發生、發展與形成,而在正常食管組織中基本不表達。因此,survivin有望成為食管癌基因治療的特異性靶點,進而更好地實現包括手術、放化療及基因治療等在內的理想的綜合治療措施。
RNA干擾技術作為近年來研究哺乳動物細胞功能基因組學的一個新工具,具有高度序列專一性,可以特異地產生由雙鏈DNA介導的轉錄后特定基因沉默的效果[12];依據該原理,針對siRNA的RNA干擾技術已經廣泛應用于生物學、醫學及藥物研究等眾多研究領域中,同時也為臨床眾多惡性腫瘤尤其是中晚期腫瘤患者開辟了基因治療的新路徑。
該研究中作者利用RNA干擾和重組體技術構建靶向survivin基因的siRNA表達質粒pRNAT-siRNA-survivin,并穩定轉染Eca-109細胞,結果顯示干擾后Survivin蛋白的表達水平較轉染陰性對照質粒的陰性對照組及未轉染的空白對照組下調,亦證實了構建的pRNAT-siRNA-survivin表達質粒具有高度特異性;MTT和平板克隆形成實驗結果表明干擾后Eca-109細胞較兩對照組的細胞活力明顯下降,生長緩慢,其克隆形成較小,數量較少,證實沉默survivin基因的表達能夠抑制Eca-109細胞的增殖;流式細胞術檢測結果同時證實了抑制survivin基因的表達也可誘導細胞凋亡。
總之,該研究主要通過體外實驗證實了沉默survivin基因可抑制Eca-109細胞的增殖,誘導細胞凋亡;為了更好地指導臨床實踐,作者擬進一步探索沉默survivin基因對食管癌細胞重要信號轉導通路的影響,以及通過動物實驗更直觀地觀察靶向survivin的siRNA與食管癌發生發展的關系。
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*國家留學基金委河南省地方合作項目201308410293;河南省教育廳科學技術研究重點項目(基礎研究計劃)13A320436;河南省科技廳基礎與前沿科技研究項目132300410464;河南省衛生廳及鄭州大學第一附屬醫院共建項目;河南省衛生科技創新型人才工程中青年科技創新人才項目4099;河南省醫學科技攻關計劃項目2011020038
Effects of silencing survivin gene by RNA interference on proliferation and apoptosis of Eca-109 cells
NIUZhaoxia,LINingning,CHENJie,LIYipei,PENGRuirui,QINZifang
DepartmentofPathophysiology,HenanMedicalCollege,Zhengzhou451191
Key wordsRNA interference;survivin;cell proliferation;cell apoptosis;Eca-109 cell
doi:10.13705/j.issn.1671-6825.2015.06.003
中圖分類號R735.1