深綠木霉對白三葉草促生作用及生理生化特性的影響

張樹武，徐秉良，程玲娟，薛應鈺

(甘肅農業大學草業學院,草業生態系統教育部重點實驗室,甘肅省草業工程實驗室,

中-美草地畜牧業可持續發展研究中心，甘肅 蘭州 730070)

深綠木霉對白三葉草促生作用及生理生化特性的影響

張樹武，徐秉良*，程玲娟，薛應鈺

(甘肅農業大學草業學院,草業生態系統教育部重點實驗室,甘肅省草業工程實驗室,

中-美草地畜牧業可持續發展研究中心，甘肅 蘭州 730070)

摘要：通過室內種子萌發和溫室幼苗盆栽試驗研究了不同稀釋倍數深綠木霉發酵液對白三葉草促生作用及生理生化特性的影響。結果表明，在室內試驗條件下不同稀釋倍數深綠木霉發酵液能夠顯著提高白三葉草種子的發芽率、發芽指數和活力指數，尤其100倍稀釋液對種子發芽率、發芽指數和活力指數的影響較為明顯，分別為94.42%，13.42和9.52。在溫室條件下不同稀釋倍數深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗的生長具有明顯的影響，并能夠增加幼苗葉綠素、可溶性蛋白質含量和生理生化酶的活性，其中100倍發酵液處理后幼苗的根長、株高、植株鮮重、干重和根冠比的相對增長率分別為37.09%，13.18%，57.73%，54.35%，20.89%；葉綠素和可溶性蛋白質含量的相對增長率分別為14.02%和76.21%；多酚氧化酶、過氧化物酶和苯丙氨酸解氨酶活性均顯著高于對照，其中多酚氧化酶活性在處理后第3天達到最大值，過氧化物酶活性在處理后第1和4天達到最大值，苯丙氨酸解氨酶活性在處理后第3~4天達到最大值。因此，深綠木霉發酵液對白三葉草的生長具有較強的促進作用。

關鍵詞：深綠木霉；促生作用；白三葉草；生理生化特性

三葉草(Trifolium)為豆科(Leguminosae)三葉草屬(Trifolium)多年生草本植物，原產于小亞細亞南部和歐洲東南部，是一種分布范圍廣的優質豆科牧草和地被(草坪)植物。近年來由于三葉草具有適應性廣、侵占性強、再生力強、觀賞期長、根系發達、莖葉茂密和花色鮮艷等優點，目前已被廣泛應用于廣場、公園、道路和庭院等地綠化，以及作為半干旱地區重要的草坪草。同時由于三葉草富含多種營養成分，是家禽和家畜的優質飼草，也是一種理想的果園間作綠肥。但是，在我國北方地區土壤鹽堿化和干旱等問題較為嚴重，導致大量種子萌發率低和幼苗生長勢較差[4-5]，以及導致幼苗生理生化代謝過程受阻和體內活性氧積累，發生嚴重時能夠導致植株體內大量細胞死亡[6-8]，使植株的生長受到嚴重的抑制，給牧草產業的發展帶來了巨大的經濟損失。另外，由于各種因素的影響，三葉草病害(銹病、病毒病、白絹病、褐斑病和白粉病等)的發生愈來愈嚴重，致使三葉草的生長和觀賞價值受到嚴重的影響，對畜牧業和綠化業的發展造成了嚴重的危害[10]。因此，提高三葉草種子的出苗率，促進幼苗健壯生長，提高其觀賞價值、產量和質量是當前面臨的重要問題。

近年來，主要采用一些傳統的農業和土壤改良等措施提高三葉草種子的萌發率和幼苗的生長勢，但這些措施在實際的生產中存在見效慢，并且需要較長的周期才能獲得一定效果等缺點[11-12]。同時，在三葉草病害的防治過程中通常采用化學防治措施，但是化學農藥的使用容易造成環境污染和導致病原菌產生一定的抗藥性，阻礙了綠色農業和牧業的發展[13]。因此，開發和利用生物制劑提高三葉草種子的萌發率和促進三葉草幼苗生長，以及提高三葉草體內相關的防御酶活性是目前研究的新思路和新方法。

木霉菌(Trichoderma)是一類在自然界中分布廣泛的生防真菌，是土壤微生物的重要群落之一，常見于土壤、植物殘體、植物根圍和葉圍等環境中[14-15]。近年來已有相關報道表明，哈茨木霉(T.hatzianum)和康寧木霉(T.koningii)能夠顯著提高馬鈴薯(Solanumtuberosum)、煙草(Nicotianatabacum)和紅蘿卜(Daucuscarota)的發芽率、出苗率及干重[16]，以及長枝木霉T6菌株(T.longibrachiatum)分生孢子懸浮液能夠顯著提高3種禾本科和3種豆科牧草幼苗的生長和相關生理效應酶的活性[17]，但目前研究較多的為木霉菌對一些常見作物的促生作用，尤其是一些經濟作物，而關于深綠木霉菌發酵液對白三葉草生長影響等方面的研究尚未見報道。因此，本試驗通過深綠木霉發酵液對白三葉草種子活性和幼苗促生作用的影響，以及相關生理生化指標的測定，旨在初步明確其對白三葉草促生作用機理，對提高白三葉草產量和觀賞價值具有重要的意義。

1材料與方法

1.1　試驗材料

1.1.1供試菌株供試菌株為深綠木霉(Trichodermaaureoviride)，保存于甘肅農業大學草業學院植物病理學實驗室。

1.1.2三葉草品種三葉草品種為白三葉草(Trifoliumrepens)，由甘肅省農業科學院種子有限責任公司提供。

1.2　試驗方法

1.2.1深綠木霉菌培養試驗于2012年7月實施。將4℃低溫保存的深綠木霉菌活化后接種于馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar, PDA)培養基，并置于25℃培養箱中光暗交替(16/8 h)培養6 d。然后在其培養基中加入1滴Tween-80和5 mL無菌水配制為分生孢子懸浮液，并通過利用血球計數板計數其濃度，最終使其濃度為1×108cfu/mL。液體發酵培養通過加入配制好的1 mL分生孢子懸浮液于60 mL馬鈴薯葡萄糖液體(potato dextrose broth, PDB)培養基，對照液體發酵培養則加入1 mL無菌水和1滴Tween-80，處理和對照均為3個重復，置于搖床中培養8 d，溫度為25℃、轉速為150 r/min。連續培養8 d后將培養液通過雙層濾膜過濾，過濾后獲得的濾液分別稀釋為50，100和200倍液。

1.2.2深綠木霉對白三葉草種子的影響將供試的種子經5% NaClO溶液進行消毒處理5 min，消毒后將其通過無菌水充分沖洗5次，然后將其置于直徑為9 cm的培養皿內進行種子處理。處理的過程中培養皿中含有一層紗布和兩層濾紙進行保濕處理，各處理和對照均為100粒種子，重復6次。然后將配制好的深綠木霉發酵液(原液、50、100和200倍液)分別加入15 mL于每個處理中，對照則加入等量的PDB濾液，置于溫度為25℃和光照為16/8 h的培養箱中進行培養。處理后待種子的胚根長度超過種子長度一半時開始統計種子的發芽率、發芽指數和活力指數。

發芽率(%)=(發芽種子總數/供試種子總數)×100

發芽指數=∑Gt/Dt

式中，Gt為t時間內的發芽數，Dt為相應的發芽天數。

活力指數=發芽指數×單株平均干重

1.2.3溫室試驗將經過5% NaClO消毒(5 min)處理的白三葉草種子，經無菌水充分沖洗后種植于裝入滅菌土壤的塑料缽中(100粒/缽)。種植后待幼苗生長到兩葉一心期時，分別將配制的深綠木霉發酵液(20 mL)澆灌于植株根系周圍的土壤中，對照則澆灌等量的PDB濾液。試驗在溫度為25℃，光照為16/8 h的溫室中進行，且各處理和對照均重復6次。待深綠木霉處理后第30天，從每個處理和對照中分別隨機抽取60株幼苗，測定白三葉草幼苗形態指標、葉綠素和可溶性蛋白質含量、多酚氧化酶(PPO)、幼苗過氧化物酶(POD)和苯丙氨酸解氨酶(PAL)的活性。

1.2.4幼苗形態指標測定根長和株高采用刻度尺進行測量，整株鮮重采用電子天平稱量，并根據根系鮮重與地上部鮮重的比值計算根冠比。同時將新鮮的植株通過干燥箱進行殺青處理，處理溫度為105℃，時間為30 min，然后調節溫度為80℃烘干，并稱量干重[18]。

1.2.5幼苗葉綠素和可溶性蛋白質含量測定三葉草幼苗葉綠素含量測定采用“分光光度法”[19]；采用“考馬斯亮藍G-250 法”測定幼苗可溶性蛋白質含量[20-21]，每個處理重復6次。

1.2.6生理生化酶活性測定POD 活性采用“愈創木酚法”測定，PAL活性采用“分光光度法”測定，PPO活性采用“鄰苯二酚法”測定[22-23]，且每天測定1次，連續測定6 d，每個處理重復6次。

1.3　數據處理

數據利用SPSS (SPSS V16.0, SPSS Inc., Chicago, IL, USA)軟件處理和方差分析，各個處理的多重比較采用Duncan新復極差法。

2結果與分析

2.1　深綠木霉發酵液對白三葉草種子的影響

深綠木霉發酵液對種子的活性具有顯著的影響，并且與對照相比不同稀釋倍數發酵液對種子活性的影響均存在顯著的差異，尤其是100和50倍發酵液能夠顯著提高種子的發芽率(94.42%和92.50%)、發芽指數(13.42和11.23)和活力指數(9.52和5.96)(表1)。

2.2　深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗生長的影響

深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗生長具有明顯的促生作用，且與對照相比不同稀釋倍數發酵液對幼苗生長的影響存在顯著的差異，100倍稀釋液處理的幼苗根系長度、株高、鮮重、干重和根冠比分別為25.43 mm，5.84 mm，1.53 mg，0.71 mg和4.34，顯著高于對照(表2)。

2.3　深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗葉綠素和可溶性蛋白質含量的影響

深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗葉綠素和可溶性蛋白質含量的影響測定結果表明，不同稀釋倍數發酵液能夠顯著提高幼苗葉綠素和可溶性蛋白質含量，其中100和50倍稀釋液對幼苗葉綠素和可溶性蛋白質含量具有顯著的影響，且與對照相比，100和50倍稀釋液處理的幼苗葉綠素和可溶性蛋白質含量相對增長率分別為14.02%和76.21%(表3)。

2.4　深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗多酚氧化酶(PPO)活性的影響

不同稀釋倍數深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗PPO活性的影響隨著處理時間的增加而逐漸增大，尤其是在處理后第3天達到最大值，但是隨著處理時間的增加，在處理后第 4天 PPO活性又逐漸減小，并且不同稀釋倍數發酵液對幼苗PPO活性的影響均存在顯著的影響，其中100和50倍稀釋液對其PPO活性的影響較為明顯(圖1)。

圖1　深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗多酚氧化酶活性的影響Fig.1　Effects of the fermentation medium of T. aureoviride on the activity of polyphenol oxidase (PPO) of T. repens seedlings

表1　深綠木霉發酵液對白三葉草種子活性的影響

注：表中的數據為第8天時發芽率、發芽指數和活力指數。同列數據后不同小寫字母表示經Duncan氏新復極差法檢驗在P<0.05水平差異顯著。下同。

Note: The germination rates, germination index and vigor index were determined at the 8thday in Table 1. Different small letters in the column showed 0.05 level significant difference respectively among the treatments by Duncan’s new multiple range test. The same below.

表2　深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗生長的影響

表3　深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗葉綠素和

2.5　深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗過氧化物酶(POD)活性的影響

深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗POD活性的影響測定結果表明，與對照相比不同稀釋倍數發酵液對幼苗POD活性的影響存在顯著的差異，其中100和50倍稀釋液對幼苗POD活性的影響較為明顯，并且不同稀釋倍數發酵液對幼苗POD活性的影響在處理后前3 d隨著處理時間的增加而逐漸減小，但在處理后第4天 POD活性達到最大值，第5 天后POD活性呈逐漸下降的趨勢(圖2)。

圖2　深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗過氧化物酶活性的影響Fig.2　Effects of the fermentation medium of T. aureoviride on the activity of peroxidase (POD) of T. repens seedlings

2.6　深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗苯丙氨酸解氨酶(PAL)活性的影響

與對照相比，不同稀釋倍數深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗PAL活性的影響存在顯著的差異，其中100和50倍稀釋液對PAL活性的影響較為明顯。同時自處理后第1天開始幼苗PAL活性呈逐漸下降的趨勢，但在處理后第3天逐漸升高，并且在處理后第3和4天達到最大值，而第5天后PAL活性呈逐漸下降的趨勢(圖3)。

數據均為平均數±標準誤，且不同小寫字母表示經Duncan氏新復極差法檢驗在P<0.05水平差異顯著。下同。The data are mean±stand error. Different small letters show significant difference atP<0.05 level among the treatments by Duncan’s new multiple range test. The same below.

3討論與結論

圖3　深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗苯丙氨酸解氨酶活性的影響Fig.3　Effects of the fermentation medium of T. aureoviride on the activity of phenylalanine ammonia lyase (PAL) of T. repens seedlings

據相關文獻報道，木霉菌作為一種重要的根際促生菌，對多種植物辣椒(Capsicumfrutescens)、馬鈴薯、 萵苣(Lactucasativa)、黃瓜(Cucumissativus)、白菜(Brassicarapa)、豌豆(Pisumsativum)、花生(Arachishypogaea)、長春花(Catharanthusroseus)和菊花(Dendranthemamorifolium)等的生長具有顯著的促生效應，具體表現為提高植物種子活力、幼苗根系活性、株高及幼苗葉綠素和可溶性蛋白質含量等[24-25]。本試驗通過深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗的促生作用和生理生化特性的測定，表明深綠木霉發酵液不僅能夠顯著提高種子的活性和幼苗的生長勢，而且能夠提高幼苗葉綠素含量、可溶性蛋白質含量和相關酶的活性。

前期研究表明，哈茨木霉T2-16菌株發酵產物能夠顯著提高水稻(Oryzasativa)種子的活性[26]。同時，相關研究表明木霉發酵液處理的番茄(Lycopersiconesculentum)種子，100倍稀釋液能夠顯著提高番茄種子的發芽率，且明顯高于其他稀釋液[27]。本試驗結果表明深綠木霉對白三葉草種子的活性具有顯著的促生作用，與前期的研究結果基本一致。同時通過不同濃度發酵液促生效果的測定，篩選出了濃度為100倍的發酵液具有較好的促生效果，可作為最適的促生濃度應用于實際的農業生產中。

劉連妹等[28]利用經過離子輻射誘變處理的哈茨木霉孢子懸浮液處理二葉期番茄幼苗，結果表明，哈茨木霉孢子懸浮液能夠顯著促進番茄幼苗地上和地下部分的生長，并提高植株葉片中葉綠素含量、POD、PPO和SOD活性，尤其50倍的孢子懸浮液對番茄生長的促進效果最為顯著。陳伯清等[29]在番茄幼苗根際施用木霉菌孢子懸浮液后發現，番茄幼苗葉片中的葉綠素含量明顯高于對照，且對番茄幼苗生長具有明顯的促進作用，該促進作用可能是通過提高幼苗葉片的葉綠素含量，增強光合作用來達到的。本試驗結果表明100倍深綠木霉發酵液對白三葉草幼苗的生長具有較強的促生作用。另外，不同稀釋倍數深綠木霉發酵液對幼苗葉綠素和可溶性蛋白質含量，以及PAL、PPO和POD這3種重要的植物防御酶活性變化具有顯著的影響，且不同濃度之間存在顯著的差異，尤其是濃度為100和50倍的發酵液對白三葉草幼苗葉綠素、可溶性蛋白質含量和與抗性相關酶的活性影響較為明顯。同時研究過程中發現POD活性在處理后第1和4天達到最大值，而PAL和PPO活性均在處理后第3或4天達到最大值，且處理和對照中3種酶活性變化趨勢都是一致的，其原因可能是由于植物在生長發育的不同時間段3種酶活性是不同的，即可能與植物本身不同發育時間段酶活性的變化有關，具體原因還有待進一步深入研究。

因此，深綠木霉發酵液對白三葉草種子和幼苗的生長具有較強的促生作用，并且能夠顯著的提高白三葉幼苗葉綠素含量、可溶性蛋白質含量和生理生化酶的活性，但目前對于深綠木霉的研究還只處于初級階段，諸如對其他種類植物的促生作用及機理等還有待進一步深入的研究。

Reference：

[1]Fan J C, Liu Y X, Zhu F H. Exploitation and cultivation ofTrifoliumfragiferum. Special Economic Animal and Plant, 2003, 6(3): 29.

[2]Li Z, Peng Y, Su X Y. Physiological responses of white clover by different leaf types associated with anti-oxidative enzyme protection and osmotic adjustment under drought stress. Acta Prataculturae Sinica, 2013, 22(2): 257-263.

[3]Wu N, Wang F, Tian Z G,etal. Effects of NaCl stress on seed germination and activities of protective enzymes in purple clover variants. Journal of Northwest A&F University (Nat. Sci. Ed.), 2013, 41(2): 117-122.

[4]Zhu J K. Plant salt tolerance. Trends Plant Science, 2001, 6(2): 66-71.

[5]Yu R G, Du X L, Chen C,etal. Effect of PEG stress on seed germination and seeding physiology of three Legumes. Agricultural Research in the Arid Areas, 2012, 30(5): 99-103.

[6]Al-Karaki C N. Germination, sodium, and potassium concentrations of barley seeds as influenced by salinity. Journal of Plant Nutrition, 2001, 24: 511-522.

[7]Banu M N, Hoque M A, Watanabe-Sugimoto M,etal. Proline and glycinebetaine induce antioxidant defense gene expression and suppress cell death in cultured tobacco cells under salt stress. Journal of Plant Physiology, 2009, 166: 146-156.

[8]Munns R, Tester M. Mechanisms of salinity tolerance. Annual Review of Plant Biology, 2008, 59: 651-681.

[9]Zhang L, Kang X H, Zhou S,etal. Surveys and integrated control of fungal diseases of gramineous forage grass in Sichuan Province. Journal of Anhui Agricultural Science, 2011, 39(29): 17899-17901.

[10]Luo L Y, Shen Z N, Ding Y S,etal. A report of study about a sclcrotial blight inTrefoll. Grassland of China, 1996, 18(1): 64-66.

[11]Lu Y M, Su C Q, Li H F. Effects of different salts stress on seed germination and seedling growth ofTrifoliumrepens. Acta Prataculturae Sinica, 2013, 22(4): 123-129.

[12]Tong Y W, Chen D F. Study on the cause and control of secondary saline soils in greenhouses. Acta Horticulturae Sinica, 1991, 18(2): 159-162.

[13]Lu H P, Sun A H, Ma S H. Investigation on herbage disease and prevention and control ofPeronosporaaestivalis. Pratacultural Science, 1999, 16(6): 43-49.

[14]Weinding R. Studies on a lethal principle effective in the parasitic action ofTrichodermalignorumonRhizictoniasolaniand other soil fungi. Phytopathology, 1932, 22: 8372-8451.

[15]Yin T, Xu B L, Liang Q L,etal. UV mutagenesis and screening for fungicide resistant strains ofTrichodermaaureovirideT2. Acta Prataculturae Sinica, 2013, 22(2): 117-122.

[16]Yang C L, Xi Y D, Liu B W,etal. Primary study on growth-promoting and biological control effects ofTrichodermaharzianumT-h-30 on vegetables. Southwest China Journal of Agricultural Sciences, 2008, 21(6): 1603-1605.

[17]Chen Z, Gu L J, Xu B L,etal. Effects ofTrichodermalongibrachiatumon seed germination and physiological effects of six forage varieties. Acta Agrestia Sinica, 2013, 21(3): 564-570.

[18]Liu J X, Wang R J, Wang X,etal. Effect of La(NO3)3on seedling growth and physiological characteristics of ryegrass under NaCl stress. Chinese Journal of Eco-Agriculture, 2011, 19(2): 353-357.

[19]Chen Y Q. Biochemistry Experiment Methods and Technology. Beijing: Science Press, 2002: 197-199.

[20]Yang Y F. The various methods for determining different proteins. The Sciences and Technology of Gelatin, 2007, 27(2): 98-100.

[21]Qiu K, Si T R. Primary study on the method for determination of soluble protein in animal materials. Chinese Journal of Information on Traditional Chinese Medicine, 2007, 14(4): 49-50.

[22]Wang Z Y, Jiang S P. Effect of endophytic fungi on defensive enzymes activity of tall fescue leaves. Journal of Anhui Agricultural Science, 2007, 35(2): 361-365.

[23]Yang S Q, Ren G X, Yang G H,etal. Study on protective enzyme activity and drought resistance of 8 introduced American forage species. Agricultural Research in the Arid Areas, 2009, 27(6): 144-148.

[24]Hu Q, Shao F F. Research advances on the growth-promoting effect ofTrichodermaon plants. Journal of Anhui Agricultural Science, 2010, 38(10): 5077-5079.

[25]Wang J F, Wu L M, Lu N H,etal. Effect of the fermentation filtrate ofTrichodermaon seed vigor and seedling growth in cucumber. Shanxi Journal of Agricultural Sciences, 2008, (3): 37-38.

[26]Wei L, Laing Z H, Luo H R. Effect of the fermentation filtrate ofTrichodermaon seed vigor in rice. Seed, 2005, 24(11): 4-7.

[27]Wu L M, Guo L J, Lu N H,etal. Effect of the metabolic product ofTrichodermaon seed vigor and seedling growth of tomato. Journal of Anhui Agricultural Science, 2006, 34(21): 5482-5492.

[28]Liu L M, Qian W X, Qu H Y. Effect ofTrichodermaharzianumspore suspension on tomato seedling growth and anti-oxidant enzymes activity. Jiangsu Agricultural Sciences, 2007, (4): 96-98.

[29]Chen B Q, Qu H Y, Liu L M. Effect ofTrichodermaHT-03 on the chlorophyll and protective enzyme of tomato seedlings. Jiangsu Agricultural Sciences, 2007, (3): 112-114.

參考文獻：

[1]樊錦春, 劉以信, 朱鳳華. 草莓三葉草的利用與栽培. 特種經濟動植物, 2003, 6(3): 29.

[2]李州, 彭燕, 蘇星源. 不同葉型白三葉抗氧化保護及滲透調節生理對干旱脅迫的響應. 草業學報, 2013, 22(2): 257-263.

[3]吳楠, 王飛, 田治國, 等. NaCl脅迫對變異紫葉三葉草種子萌發及保護酶活性的影響. 西北農林科技大學學報(自然科學版), 2013, 41(2): 117-122.

[5]余如剛, 杜雪玲, 陳楚, 等. PEG 脅迫對三種豆科牧草種子萌發及幼苗生理影響. 干旱地區農業研究, 2012, 30(5): 99-103.

[9]張利, 康曉慧, 周俗, 等. 四川地區禾本科牧草真菌病害調查及綜合防治研究. 安徽農業科學, 2011, 39(29): 17899-17901.

[10]羅祿怡, 沈仲寧, 丁應生, 等. 三葉草白絹病的研究. 中國草地, 1996, 18(1): 64-66.

[11]盧艷敏, 蘇長青, 李會芬. 不同鹽脅迫對白三葉種子萌發及幼苗生長的影響. 草業學報, 2013, 22(4): 123-129.

[12]童有為, 陳淡飛. 溫室土壤次生鹽漬化的形成和治理途徑研究. 園藝學報, 1991, 18(2): 159-162.

[13]魯鴻佩, 孫愛華, 馬紹慧. 臨夏州人工草地牧草病害調查及苜蓿霜霉病防治. 草業科學, 1999, 16(6): 43-49.

[15]尹婷, 徐秉良, 梁巧蘭, 等. 耐藥性木霉T2菌株的篩選、紫外誘變與藥劑馴化. 草業學報, 2013, 22(2): 117-122.

[16]楊春林, 席亞東, 劉波微, 等. 哈茨木霉T-h-30對幾種蔬菜的促生作用及病害防治初探. 西南農業學報, 2008, 21(6): 1603-1605.

[17]陳臻, 古麗君, 徐秉良, 等. 長枝木霉對6種牧草種子發芽與生理效應的影響. 草地學報, 2013, 21(3): 564-570.

[18]劉建新, 王瑞娟, 王鑫, 等. La(NO3)3對鹽脅迫下黑麥草幼苗生長及抗逆生理特性的影響. 中國生態農業學報, 2011, 19(2): 353-357.

[19]陳毓荃. 生物化學實驗方法和技術. 北京: 科學出版社, 2002: 197-199.

[20]楊玉芳. 蛋白質含量測定方法. 明膠科學與技術, 2007, 27(2): 98-100.

[21]邱葵, 司天潤. 用考馬斯亮藍法測定動物藥材中可溶性蛋白含量方法初探. 中國中醫藥雜志, 2007, 14(4): 49-50.

[22]王志勇, 江淑平. 內生真菌對高羊茅葉內防御酶活性的影響. 安徽農業科學, 2007, 35(2): 361-365.

[23]楊順強, 任廣鑫, 楊改河, 等. 8種美國引進禾本科牧草保護酶活性與抗旱性研究. 干旱地區農業研究, 2009, 27(6): 144-148.

[24]胡瓊, 邵菲菲. 木霉對植物促生作用的研究進展. 安徽農業科學, 2010, 38(10): 5077-5079.

[25]王建鋒, 吳利民, 陸寧海, 等. 木霉發酵產物對黃瓜種子活力及幼苗生長的影響. 陜西農業科學, 2008, (3): 37-38.

[26]魏林, 梁志懷, 羅赫榮. 哈茨木霉 T2-16發酵產物對水稻種子活力的影響. 種子, 2005, 24(11): 4-7.

[27]吳利民, 郭立季, 陸寧海, 等. 木霉對番茄種子活力及幼苗生長的影響. 安徽農業科學, 2006, 34(21): 5482-5492.

[28]劉連妹, 錢雯霞, 屈海泳. 哈茨木霉孢子懸浮液對番茄幼苗生長及抗氧化酶活性的影響. 江蘇農業科學, 2007, (4): 96-98.

[29]陳伯清, 屈海泳, 劉連妹. 木霉HT-03對番茄幼苗葉綠素和保護酶的影響. 江蘇農業科學, 2007, (3): 112-114.

Effects ofTrichodermaaureoviridefermentation on the growth and physiological characteristics ofTrifoliumrepens

ZHANG Shuwu, XU Bingliang*, CHENG Lingjuan, XUE Yingyu

CollegeofGrasslandScience,GansuAgriculturalUniversity;KeyLaboratoryofGrasslandEcosystem,MinistryofEducation;PrataculturalEngineeringLaboratoryofGansuProvince;Sino-U.S.CentersforGrazinglandEcosystemSustainability,Lanzhou730070,China

Abstract:The effects of Trichoderma aureoviride fermentation on the growth and physiological characteristics of Trifolium repens were evaluated by seed germination in vitro and by pot experiments in a greenhouse. T. aureoviride fermentation was applied with different dilution rates and all dilution rates significantly increased the rates of seed germination, the germination index and the vigor index. The 100-times dilution had the most significant effects on seed germination rates, germination index and vigor index (94.42%, 13.42 and 9.52 respectively). In the greenhouse experiments, the fermentation of T. aureoviride with different dilution rates significantly promoted the growth of T. repens seedlings and significantly increased chlorophyll and soluble protein content, as well as the activities of antioxidant enzymes. The 100-times dilution increased T. repens root length, plant height, fresh weight, dry weight and root-shoot ratio by 37.09%, 13.18%, 57.73%, 54.35% and 20.89%respectively. It increased chlorophyll and soluble protein contents by 14.02% and 76.21% respectively, and significantly increased polyphenol oxidase (PPO), peroxidase (POD) and phenylalanine (PAL) enzyme activities. The maximum activity of PPO, POD and PAL presented at 3 days after treatment, 1 and 4 days after treatment and 3 and 4 days after treatment, respectively. These results suggest that the fermentation of T. aureoviride has significant growth promoting effects on T. repens.

Key words:Trichoderma aureoviride; growth promoting; Trifolium repens; physiological characteristics

*通訊作者

Corresponding author. E-mail:xubl@gsau.edu.cn

作者簡介：張樹武(1986-)，男，甘肅慶陽人，在讀博士。E-mail:zhangsw704@126.com

基金項目：草業生態系統教育部省部共建重點實驗室項目(CY-GG-2006-013)，甘肅省農牧廳生物技術專項(GNSW-2009-04)和甘肅省教育廳項目(042-03)資助。

*收稿日期：2014-01-15；改回日期：2014-03-14

DOI：10.11686/cyxb20150218

http://cyxb.lzu.edu.cn

張樹武， 徐秉良， 程玲娟， 薛應鈺. 深綠木霉對白三葉草促生作用及生理生化特性的影響. 草業學報， 2015， 24(2)： 161-167.

Zhang S W, Xu B L, Cheng L J, Xue Y Y. Effects ofTrichodermaaureoviridefermentation on the growth and physiological characteristics ofTrifoliumrepens. Acta Prataculturae Sinica， 2015， 24(2)： 161-167.