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炮制方法對中藥狗脊3種成分的影響Δ

2015-03-10 02:34:02趙敏杰鞠成國林桂梅賈天柱遼寧中醫藥大學藥學院遼寧大連116600國家中醫藥管理局中藥炮制原理解析重點研究室遼寧大連116600遼寧省中藥炮制工程技術研究中心遼寧大連116600
中國藥房 2015年19期
關鍵詞:方法

趙敏杰,鞠成國,林桂梅,張 凡,賈天柱#(1.遼寧中醫藥大學藥學院,遼寧 大連 116600;2.國家中醫藥管理局中藥炮制原理解析重點研究室,遼寧大連 116600;3.遼寧省中藥炮制工程技術研究中心,遼寧大連 116600)

狗脊為蚌殼蕨科植物金毛狗脊Cibotium barometz的干燥根莖,味苦、甘、性溫,歸肝、腎經,具有祛風濕、補肝腎、強腰膝的功效[1]。生狗脊以祛風濕、利關節為主;砂燙狗脊質地疏松,便于粉碎和煎出有效成分,且易于除去殘存絨毛;蒸狗脊和酒狗脊、鹽狗脊具有增強“補肝腎、強腰膝”的作用[2]。本課題組前期對狗脊不同炮制品的藥效學作了大量的研究[3-7],但尚未涉及這5種樣品水煎液中化學成分含量的變化情況。因此,本試驗同時對狗脊生品及其4種不同炮制品水煎液中水溶性總蛋白、總酚酸、總多糖的含量進行比較研究,以期闡明炮制對狗脊化學成分的影響,為臨床合理用藥提供依據。

1 材料

1.1 儀器

U-3010型紫外-可見分光光度計(日本日立公司);電熱恒溫水浴鍋、101型電熱鼓風干燥箱(北京市永光明醫療器械有限公司);AE240型十萬分之一分析天平(瑞士梅特勒公司);FA1004B型電子天平(上海精密科學儀器有限公司);HH-4型恒溫水浴鍋(國華電器有限公司);RE-52A型旋轉蒸發器(上海亞榮生化儀器廠);SHZ-DⅢ型循環水式真空泵(上海予華儀器有限公司)。

1.2 藥品與試劑

D-無水葡萄糖(以下簡稱葡萄糖)對照品、原兒茶醛對照品(中國食品藥品檢定研究院,批號:110833-200904、118010-201007,純度:>98%);牛血清白蛋白(北京索萊寶科技有限公司,批號:711J053,純度:>98%);考馬斯亮藍G250(以下簡稱考馬斯亮藍,天津市大茂化學試劑廠);苯酚、濃硫酸、乙醇、丙酮、乙醚均為分析純,水為超純水。

1.3 藥材

狗脊于2013年11月采自廣西河池,經遼寧中醫藥大學王冰教授鑒定為蚌殼蕨科植物金毛狗脊Cibotium barometz的根莖。

2 方法與結果

2.1 4種炮制品的制備

2.1.1 砂燙狗脊的制備 取凈河砂400 g,置于炒制容器內,用武火加熱至180~190 ℃呈滑利狀態時,加入凈狗脊片50 g,不斷翻炒,6 min后取出[8]。

2.1.2 鹽狗脊的制備 取凈狗脊片50 g,加入含鹽量為1 g的鹽水40 ml,用保鮮膜密封,浸潤2 h,武火蒸制3 h,?;饜灊? h,取出干燥[9]。

2.1.3 酒狗脊的制備 取7.5 g黃酒,用清水稀釋至40 ml,加入50 g凈狗脊片中拌勻,用保鮮膜密封,浸潤2 h,放入鍋內武火蒸制4 h,停火后悶潤4 h,取出干燥[10]。

2.1.4 蒸狗脊的制備 取凈狗脊片50 g,加入清水40 ml并用保鮮膜密封,浸潤1 h,放入鍋內武火蒸制4 h,?;饜灊? h,取出干燥[11]。

將生品及以上4種炮制品粉碎,過三號篩,備用。

2.2 水溶性總蛋白的含量測定[12]

2.2.1 考馬斯亮藍溶液的制備 精密稱取考馬斯亮藍100 mg,加入95%乙醇50 ml,溶液變為藍色,再加入85%(W/V)磷酸溶液100 ml,此時溶液變成血紅色,最后用蒸餾水定容至1 000 ml,混勻。

2.2.2 對照品溶液的制備 精密稱取牛血清白蛋白0.010 05 g,用少量蒸餾水溶解,定容至100 ml,即得100.5 μg/ml的蛋白質標準貯備液(4 ℃冰箱中保存)。

2.2.3 供試品溶液的制備 精密稱取狗脊生品及不同炮制品粉末各1 g,置于圓底燒瓶中,精密加入蒸餾水100 ml,稱質量,加熱回流2 h,放涼后補足質量。

2.2.4 標準曲線的制備 取牛血清蛋白標準貯備液100、200、300、400、500、600、800 μl,分別補加蒸餾水至1 ml,再分別加入5 ml考馬斯亮藍溶液,顯色5 min。以1 ml蒸餾水作空白,在400~800 nm波長處掃描,結果牛血清白蛋白在590 nm波長處有最大吸收。測定上述溶液在590 nm波長處的吸光度。以牛血清白蛋白質量濃度(x,μg/ml)為橫坐標,以吸光度(y)為縱坐標進行線性回歸,得回歸方程為y=0.007 6x+0.081 5(r=0.999 9)。結果表明,牛血清白蛋白檢測質量濃度線性范圍為10.05~80.40 μg/ml。

2.2.5 精密度試驗 取牛血清白蛋白標準貯備溶液1 ml,按“2.2.4”項下操作,連續測定6次。結果,吸光度的RSD=0.56%(n=6),表明方法精密度良好。

2.2.6 顯色穩定性試驗 取生狗脊供試品溶液,按“2.2.4”項下相關方法操作,每隔5 min測定1次吸光度,連續測定30 min。結果,吸光度的RSD=3.23%(n=7),表明供試品溶液中總蛋白在30 min內顯色基本穩定。

2.2.7 重復性試驗 取生狗脊粉末6份,按“2.2.3”項下方法制備,按“2.2.4”項下方法測定其含量。結果,含量的RSD=1.65%(n=6),表明方法重復性良好。

2.2.8 加樣回收率試驗 稱取已知含量的生狗脊粉末0.5 g,共6份,精密稱定,按“2.2.3”項下制備供試品溶液,分別加入牛血清蛋白20.15 mg,然后按“2.2.4”項下方法測定含量,計算得總蛋白的平均回收率為101.1%(RSD=3.52%,n=6)。

2.3 總酚酸的含量測定[13]

2.3.1 對照品溶液的制備 精密稱取原兒茶醛對照品5.31 mg,置于50 ml量瓶中,加水使充分溶解并稀釋至刻度,搖勻,即得質量濃度為0.106 2 mg/ml的對照品溶液。

2.3.2 供試品溶液的制備 精密稱取狗脊生品及不同炮制品粉末各0.1 g,置于圓底燒瓶中,精密加入蒸餾水100 ml,稱質量,加熱回流2 h,放涼后補足質量。

2.3.3 標準曲線的制備 精密吸取原兒茶醛對照品溶液50、100、200、300、400、500、600 μl,分別置于10 ml量瓶中,加甲醇至2 ml,加0.3%十二烷基硫酸鈉0.8 ml、0.6%FeCl3-0.9%K3[Fe(CN)6](1 ∶1)混合溶液0.4 ml,混勻,暗處放置5 min,加0.1 mol/L鹽酸溶液至25 ml,搖勻,暗處放置20 min。蒸餾水平行做空白試驗。以原兒茶醛對照品溶液質量濃度(x,mg/ml)為橫坐標,以760 nm波長處測定的吸光度(y)為縱坐標進行線性回歸,得回歸方程為y=35 366x+0.175 7(r=0.999 5)。結果表明,原兒茶醛檢測質量濃度線性范圍為5.31~63.72 μg/ml。

2.3.4 精密度試驗 取原兒茶醛對照品溶液0.5 ml,按“2.3.3”項下方法操作,連續測定6次。結果,吸光度的RSD=0.45%(n=6),表明方法精密度良好。

2.3.5 顯色穩定性試驗 取生狗脊供試品溶液,按“2.3.3”項下操作,每隔5 min測定1次吸光度,連續測定30 min。結果,吸光度的RSD=4.36%(n=7),表明狗脊供試品溶液中總酚酸類化合物在30 min內顯色基本穩定。

2.3.6 重復性試驗 取生狗脊粉末6份,按“2.3.2”項下方法制備,按“2.3.3”項下方法測定其含量。結果,含量的RSD=2.26%(n=6),表明方法重復性良好。

2.3.7 加樣回收率試驗 稱取已知含量的生狗脊粉末0.1 g,共6份,精密稱定,按“2.3.2”項下方法制備供試品溶液,分別加入原兒茶醛對照品0.25 mg,按“2.3.3”項下方法測定含量,計算得總酚酸的平均回收率為99.6%(RSD=2.97%,n=6)。

2.4 總多糖的含量測定[14]

2.4.1 對照品溶液的制備 取105 ℃干燥至恒質量的葡萄糖約100 mg,精密稱定,置于100 ml量瓶中,加入適量水溶解,并稀釋至刻度,搖勻,即得1.021 0 g/L的葡萄糖對照品溶液。

2.4.2 供試品溶液的制備 取狗脊生品及不同炮制品粉末各0.5 g,精密稱定,置于圓底燒瓶中,加入100 ml 80%乙醇,加熱回流,每次1 h,至無色,抽濾。濾渣在常溫下揮干,將濾渣連同濾紙置于圓底燒瓶中,加蒸餾水100 ml,加熱回流1 h,2次,趁熱濾過,用少量水洗滌濾器,合并濾液和洗液,放冷,移入250 ml量瓶中,稀釋至刻度,即得。

2.4.3 苯酚試液的制備 取苯酚100 g,加鋁片0.1 g、碳酸氫鈉0.05 g,蒸餾,182 ℃收集餾分。稱取該餾分5 g,置于100 ml量瓶中,加蒸餾水稀釋至刻度,搖勻,濾過并置于棕色瓶中,即得5%苯酚試液,備用。

2.4.4 標準曲線的制備 精密吸取葡萄糖對照品溶液0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 ml,分別置于具塞刻度試管中,加水至1 ml,再分別加入5%苯酚溶液1 ml,混勻,加入濃硫酸5 ml,充分混勻。另取1.0 ml的蒸餾水同上操作,作為空白對照。將上述溶液置于沸水浴中反應5 min,迅速放冷至室溫,在489 nm波長處測定吸光度。以葡萄糖對照品溶液質量濃度(x)為橫坐標,以吸光度(y)為縱坐標進行線性回歸,得回歸方程為y=7 642.088x+0.154(r=0.999 3)。結果表明,葡萄糖檢測質量濃度線性范圍為0.051 1~0.613 mg/ml。

2.4.5 精密度試驗 取同一供試品溶液1.0 ml,按“2.4.4”項下方法,連續測定6次。結果,吸光度的RSD=1.03%(n=6),表明方法精密度良好。

2.4.6 顯色穩定性試驗 取生狗脊供試品溶液,按“2.4.4”項下方法操作,每隔5 min測定1次吸光度,連續測定30 min。結果,吸光度的RSD=2.67%(n=7),表明供試品溶液中總多糖在30 min內顯色基本穩定。

2.4.7 重復性試驗 取生狗脊粉末6份,按“2.4.2”項下方法制備供試品溶液,按“2.4.4”項下方法測定,結果總多糖的平均含量為28.56%(RSD=1.41%,n=6),表明方法重復性良好。

2.4.8 加樣回收率試驗 稱取已知含量的生狗脊粉末0.25 g,共6份,精密稱定,按“2.4.2”項下方法制備供試品溶液,分別加入葡萄糖對照品71.4 mg,然后按“2.4.4”項下方法測定含量,計算得總多糖的平均回收率為99.3%(RSD=3.56%,n=6)。

2.5 含量測定結果

取狗脊生品及不同炮制品分別按照“2.2.3”“2.3.2”“2.4.2”項下方法制備供試品溶液,再分別按“2.2.4”“2.3.3”“2.4.4”項下方法測定吸光度,計算供試品中水溶性總蛋白、總酚酸和總多糖的含量,結果見表1。

表1 狗脊生品及其不同炮制品中水溶性總蛋白、總酚酸、總多糖含量測定結果(n=6,%)Tab 1 Determination results of water-soluble total protein,total phenolic acid and total polysaccharides in crude C.barometz and different processed products(n=6,%)

由表1結果可知,不同的炮制方法對狗脊中水溶性總蛋白、總酚酸、總多糖含量均有一定的影響,水溶性總蛋白的含量在炮制后均呈現一定程度的降低,總酚酸和總多糖的含量在炮制后均呈現一定程度的升高。

3 討論

本試驗首次考察了狗脊不同炮制品水煎液中水溶性總蛋白、總酚酸、總多糖的含量變化。炮制后水溶性總蛋白的含量均較生品有所下降,可能是由于加熱破壞了狗脊中的部分蛋白質結構,從而使其含量有所下降,但是含量降低后所致生物活性的變化尚不明確,有待進一步研究。酚酸類化合物是狗脊中重要的活性成分,《中國藥典》以原兒茶酸作為含量測定的指標來評價藥材的質量。狗脊中總酚酸的含量炮制后均有所增加,是由于炮制加熱致使糖苷鍵斷裂生成酚酸所致,故炮制后“補肝腎、強腰膝”作用的增強可能與總酚酸的含量增加有關[15]。多糖是中藥中普遍存在的一類化學成分,具有延緩衰老、提高免疫功能等多方面的補益藥理作用[16-18],狗脊經炮制后多糖含量的增加也符合制狗脊“補肝腎作用增強”的傳統炮制理論。但是狗脊發揮藥效的活性成分尚不能明確,故還有待進一步研究。

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