999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

硅對NaCl脅迫下甜瓜種子萌發及幼苗生長的影響

2015-04-15 08:01:03王玉萍王映霞白向利王小青張峰
草業學報 2015年5期
關鍵詞:影響

王玉萍,王映霞,白向利,王小青,張峰,3*

(1.甘肅省作物遺傳改良與種質創新重點實驗室,甘肅省干旱生境作物學重點實驗室,甘肅農業大學,甘肅 蘭州730070;2.甘肅農業大學園藝學院,甘肅 蘭州730070;3.甘肅農業大學生命科學技術學院,甘肅 蘭州730070)

?

硅對NaCl脅迫下甜瓜種子萌發及幼苗生長的影響

王玉萍1,2,王映霞2,白向利1,王小青1,張峰1,3*

(1.甘肅省作物遺傳改良與種質創新重點實驗室,甘肅省干旱生境作物學重點實驗室,甘肅農業大學,甘肅 蘭州730070;2.甘肅農業大學園藝學院,甘肅 蘭州730070;3.甘肅農業大學生命科學技術學院,甘肅 蘭州730070)

為明確硅(silicon,Si)對鹽脅迫的緩解作用,以“雪梨一號”和“朗秦銀蜜”兩個耐鹽性不同的甜瓜品種為材料,在125 mmol/L NaCl脅迫下,研究了不同濃度外源Si對甜瓜種子萌發和幼苗生長的影響。結果表明,NaCl脅迫顯著抑制了甜瓜種子萌發,0.50~1.00 mmol/L外源Si處理較對照能顯著提高種子的發芽率、發芽勢、發芽指數、α-淀粉酶活性及吸水率,其中兩個品種的種子均以0.75 mmol/L外源Si處理效果最好;NaCl脅迫下,0.25~1.00 mmol/L外源Si處理后,甜瓜幼苗的株高、葉面積、葉綠素含量、地上部分干重和根系干重較對照顯著提高,其中“朗秦銀蜜”和“雪梨一號”幼苗分別以0.50和0.75 mmol/L外源Si處理效果最好。研究表明,0.25~1.00 mmol/L外源Si能促進NaCl脅迫下種子吸水和α-淀粉酶活性的提高來促進種子萌發,通過提高NaCl脅迫下幼苗葉綠素含量維持較高的光合能力促進幼苗生長,緩解鹽脅迫對甜瓜種子和幼苗的傷害,外源Si濃度超過1.25 mmol/L時對鹽脅迫沒有緩解效應。

硅;NaCl脅迫;種子萌發;幼苗生長;甜瓜

受全球氣候變化和人口不斷增長的影響,土壤鹽漬化和次生鹽漬化問題在全球范圍內廣泛存在,已成為限制農業生產的重要因素。甜瓜(Cucumismelo)為葫蘆科,一年蔓生草本植物,是西部地區的優勢特色產業,對地方經濟的發展具有重要支持作用。甜瓜根系較淺,具有喜肥不耐肥的特點,容易發生鹽害,影響甜瓜正常的生長發育、產量及品質。隨著園藝作物設施栽培面積的迅速擴大,高復種指數及不合理的施肥導致的溫室土壤的次生鹽漬化也已成為國內外設施栽培中普遍存在的問題,嚴重制約設施栽培的可持續和高效發展[1]。甜瓜是設施栽培的重要蔬菜之一,設施土壤次生鹽漬化的發生常會抑制其生長發育,導致產量和品質下降。因此,研究甜瓜耐鹽機理,選育甜瓜耐鹽品種具有重要的理論和實踐意義。

目前盡管在甜瓜耐鹽性方面已有一些報道,多集中在鹽脅迫下的生理響應方面[2-4]。硅(silicon,Si)是大多數高等植物生長的有益元素,Si能提高植物光合速率和干物質的積累,促進植物的生長發育[5]。有研究表明,外源Si能提高作物對非生物脅迫和生物脅迫的耐受性[6],適量加Si可顯著提高作物的抗鹽性,降低鹽害,提高產量[7]。然而,近年來國內關于Si提高植物耐鹽性的研究多見于大麥(Hordeumvulgare)[7],黃瓜(Cucumissativus)[8]、玉米(Zeamays)[9]幼苗和煙草(Nicotianatabacum)[10]懸浮細胞,而利用外源Si誘導甜瓜種子及幼苗耐鹽性的研究鮮見報道。

種子萌發、出苗以及幼苗等生活史的早期階段對鹽脅迫尤其敏感[11],因此,研究植物種子和幼苗階段的鹽響應狀況進行抗鹽方式優化對于增強植物抗性,提高產量具有重要意義。為明確Si對甜瓜耐鹽性的生理機制,本試驗通過對兩個不同甜瓜品種的種子萌發和幼苗生長兩個階段進行NaCl脅迫處理,分析不同濃度梯度的外源Si處理對種子萌發及幼苗生長指標的影響,探討 Si誘導甜瓜耐鹽響應的生理機制,為合理利用Si解決甜瓜栽培中的鹽害問題和甜瓜耐鹽機理研究提供科學依據,同時為甜瓜的設施栽培提供理論參考和技術依據。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

試驗于2012年4-7月進行。試驗甜瓜品種為“朗秦銀蜜”和“雪梨一號”。

1.2 試驗方法

1.2.1 不同濃度NaCl對甜瓜種子萌發率的影響 預試驗NaCl共設置6個濃度梯度,分別為0(蒸餾水對照),50,100,150,200和250 mmol/L。選取2個不同鹽敏感性的甜瓜品種籽粒飽滿、大小一致的種子(種子在蒸餾水中的初始發芽率均達100%),用10%(V/V)次氯酸溶液消毒15 min,去離子水洗凈晾干。在50~55℃的水浴中浸種15~20 min,期間不斷攪拌,然后使水溫降到20~25℃后繼續浸種8~12 h后蒸餾水沖洗。采用紙上發芽床法[12],在洗凈烘干的12 cm玻璃培養皿中鋪2層濾紙,將處理溶液分別加入培養皿中,至濾紙飽和,然后整齊排入50粒浸種后的種子,加蓋。在27℃的恒溫培養箱內暗萌發。每個處理重復3次。用稱重法補充蒸發的水分,保持溶液的濃度恒定。每日觀察并記錄發芽種子數(以種子“露白”后胚根伸出種皮2 mm作為萌發標準),記錄7 d。

1.2.2 Si對NaCl脅迫下甜瓜種子萌發的影響 試驗共設置6個處理:以預試驗所選擇的125 mmol/L的NaCl作為鹽脅迫處理濃度,并設置5個Si溶液處理濃度0.25,0.50,0.75,1.00和1.25 mmol/L(T1、T2、T3、T4、T5),以不加Si的125 mmol/L NaCl溶液處理作為對照(CK)。所用的Si源為K2SiO3·nH2O(化學純),為平衡由于添加K2SiO3所引起的各處理間鉀離子濃度的差異,加入相應量的K2SO4溶液以保持各處理之間離子濃度的一致,防止因K+濃度差異導致種子滲透壓出現差異。經消毒和溫湯浸種后的種子分別用上述處理液浸種24 h,將種子分別擺放在12 cm鋪有雙層濾紙的潔凈培養皿中,每皿50粒,濾紙用相對應的溶液完全浸濕飽和,每個處理重復3次。在27℃的恒溫培養箱中,每天光照12 h。培養期間每24 h更換浸濕過的濾紙,以維持處理溶液中鹽濃度和Si濃度不變。每日觀察并記錄萌發種子數,記錄7 d,測定并計算種子萌發相關指標。

1.2.3 Si對NaCl脅迫下甜瓜幼苗生長的影響 選取籽粒飽滿大小均勻的種子,種子浸種催芽后播種于盛有蛭石和珍珠巖混合基質的塑料盆(16 cm×12 cm×10 cm)中,基質為蛭石∶珍珠巖=3∶1(V/V),萌發后每隔4~5 d澆1/2Hoagland 營養液,培養基質的相對濕度75%左右,溫度控制在23℃/18℃左右,放到光照充足的地方,光周期為12 h/d。每個處理播種10盆,每盆播種2粒種子。幼苗破心時選擇長勢一致的植株定苗1株。

試驗共設6個處理:以蒸餾水處理作為對照(CK),外源硅的處理濃度分別設置為0.25,0.50,0.75,1.00和1.25 mmol/L(T1,T2,T3,T4,T5)。所用的硅源為K2SiO3·nH2O(化學純),加硅處理中由K2SiO3所引入的鉀量從配制Hoagland 營養液所用的KNO3中扣除,由此而引起的NO3-損失用稀HNO3補償[7]。待幼苗長到3 葉1心時,挑選長勢均勻的幼苗進行脅迫處理,每個處理澆足量125 mmol/L NaCl處理溶液,間隔4 d后澆足量濃度的Si (K2SiO3·nH2O) 溶液進行初始處理,2 d后葉面噴施Si (K2SiO3·nH2O)溶液強化處理,確保基質Si濃度在最小的范圍內波動。每隔3 d澆1次營養液,脅迫處理15 d后測定相關形態和生理指標。

1.3 指標測定

1.3.1 種子萌發指標 種子萌發第4天測定發芽勢,第7天測定萌發率和發芽指數。ɑ淀粉酶活性測定參照李合生[13]的方法。

萌發率(%)=(7 d內萌發種子總粒數/供試種子總粒數)×100

發芽指數GI=∑Gt/Dt

發芽勢(%)=(4 d 內發芽的種子粒數/供試種子總粒數)×100

式中,Gt為7 d的萌發數,Dt為相應萌發天數。

種子吸水率的測定:處理前、處理后在48 h分別取50粒種子稱重(精確度為0.001 g),重復3次。

種子吸水率(%)=[(W2-W1)/W1]×100

式中,W1為處理前50粒種子自然風干重(g);W2為50粒種子吸水后重量(g)。

1.3.2 形態生理指標 株高測定:用直尺測量甜瓜幼苗子葉節到生長點之間的距離。每品種每處理取樣5株,取其平均值,3次重復。葉面積測定:用方格紙計數法測量第3片真葉展開葉面積。每品種每處理取樣5株,取其平均值,3次重復。干重測定:將各處理幼苗從營養缽中小心取出,先用自來水沖洗其根部附著的蛭石,再用蒸餾水沖洗3次,用濾紙吸干表面水分,將鮮樣品材料置105℃下殺青30 min,剪開幼苗的地上部分和根系,在75℃烘干至恒重,稱干重(植株地上部分和根系部分)。每品種每處理取樣5株,取其平均值,3次重復。葉綠素含量的測定參照李合生[13]的方法,取幼苗生長點下第2片完全展開的真葉,避開葉脈打孔,測定葉綠素a、葉綠素b含量。

1.4 數據統計分析

所有指標測定重復3次,結果以平均值±標準誤(means±SD)表示,采用Origin 8.0軟件對數據進行處理, SPSS 16.0統計軟件進行方差分析,Duncan法進行差異顯著性多重比較(P<0.05)。

2 結果與分析

2.1 不同濃度NaCl對兩個品種甜瓜種子萌發的影響

不同濃度的NaCl處理對兩個品種甜瓜種子的萌發有不同影響(圖1)。在50 mmol/L NaCl處理下,“雪梨一號”和“朗秦銀蜜”兩個品種甜瓜的種子萌發率較對照有增加的趨勢,但是當NaCl濃度大于50 mmol/L時,隨處理NaCl濃度的增加,兩個品種種子的萌發率呈下降趨勢。在對照、50和250 mmol/L的NaCl處理下兩個品種的種子萌發率相差不大,當NaCl濃度為100~200 mmol/L時,相同濃度脅迫處理下“雪梨一號”的種子萌發率比“朗秦銀蜜”的萌發率高10%~20%左右,表明兩個甜瓜品種 “雪梨一號”耐鹽性比“朗秦銀蜜” 強。當“朗秦銀蜜”和“雪梨一號”的種子萌發率分別降為對照的50%時,NaCl的脅迫處理濃度分別為100和150 mmol/L,因此選擇125 mmol/L的NaCl作為“朗秦銀蜜”和“雪梨一號”的鹽脅迫處理濃度。

圖1 不同濃度NaCl對甜瓜種子萌發率的影響Fig.1 Effect of different concentration of NaCl on melon seed germination rate 圖中標不同字母者表示差異顯著(P<0.05),下同。Different letters in the legends mean the significant differences at P<0.05,the same below.

2.2 Si對NaCl脅迫下甜瓜種子萌發的影響

不同濃度的Si處理對NaCl脅迫下甜瓜的種子萌發有一定影響。隨Si處理濃度增加,種子萌發相關指標呈先增加后降低的趨勢(表1)。與對照相比,0.25~0.75 mmol/L的Si處理可明顯提高兩個甜瓜品種的種子萌發率、發芽勢和發芽指數,其中以0.75 mmol/L的Si處理效果最佳,“雪梨一號”的萌發率、發芽勢、發芽指數和α-淀粉酶活性分別較對照提高23.9%,29.9%,30.3%和31.1%,差異顯著(P<0.05),“朗秦銀蜜”的萌發率、發芽勢和發芽指數分別較對照提高29.9%,40.5%,37.7%和35.5%,差異顯著(P<0.05)。1.00和1.25 mmol/L的Si處理下2個品種的種子萌發各項指標均較對照明顯降低。結果表明,0.50~0.75 mmol/L的Si處理可以有效地緩解NaCl脅迫對甜瓜種子萌發的抑制作用,以0.75 mmol/L的作用效果最佳,Si濃度小于0.25或者為1.00 mmol/L時,緩解效果降低,超過1.00 mmol/L時不具有緩解作用,且濃度越高抑制效果越明顯。

表1 Si對NaCl脅迫下甜瓜種子萌發的影響

注:同列不同字母表示同一品種不同處理間差異顯著(P<0.05)。下同。

Note: Different letters in the same column mean significant differences among treatments at 0.05 level. The same below.

2.3 Si對NaCl脅迫下甜瓜種子吸水的影響

種子吸水率的大小一般影響種子的萌發速率,處理后48 h測定種子的吸水率,結果顯示,不同處理下種子的吸水率較對照均增加,其中“雪梨一號”以0.75 mmol/L的Si處理較對照增幅最大,差異顯著(P<0.05),而0.50 mmol/L的Si處理對“朗秦銀蜜”的作用效果最佳,與對照差異顯著(P<0.05)(圖2)。結果表明,外源Si處理對NaCl脅迫下“雪梨一號”和“朗秦銀蜜”的種子吸水均有促進作用,當Si濃度分別為0.75和0.50 mmol/L時,“雪梨一號”和“朗秦銀蜜”的種子吸水率均顯著高于對照(P<0.05)。外源Si在一定程度上能緩解NaCl脅迫對甜瓜種子吸水的抑制作用,促進萌發。

2.4 Si對NaCl脅迫下甜瓜幼苗株高的影響

不同濃度的Si處理對NaCl脅迫下甜瓜幼苗株高有不同影響,總體上隨Si濃度的增加表現出先升后降的趨勢(圖3)。Si為0.25~1.00 mmol/L處理下兩個品種幼苗的株高較對照明顯增加。對于“雪梨一號”,0.75 mmol/L的Si處理效果最佳,株高與對照相比增幅最大,差異顯著(P<0.05),緩解NaCl脅迫的作用最明顯,而Si大于0.75 mmol/L 時,幼苗株高逐漸降低。對于“朗秦銀蜜”,0.50 mmol/L的Si處理株高較對照增幅最大,差異顯著(P<0.05),Si 濃度為1.25 mmol/L時,幼苗株高顯著低于對照(P<0.05),對脅迫無緩解作用。以上結果表明,Si對幼苗NaCl脅迫的緩解效果與濃度和品種有關,不同品種的最佳作用濃度也不同。0.50~0.75 mmol/L的Si對NaCl脅迫的緩解作用明顯,0.75 mmol/L時作用降低,超過1.00 mmol/L時沒有緩解作用。

圖2 Si對NaCl脅迫下甜瓜種子吸水率的影響Fig.2 Effect of exogenous silicon on melon seeds water absorption under NaCl stress

圖3 Si對NaCl脅迫下甜瓜幼苗株高的影響Fig.3 Effect of exogenous silicon on plant height of melon seedlings under NaCl stress

2.5 Si對NaCl脅迫下甜瓜幼苗葉面積的影響

NaCl脅迫下,甜瓜幼苗的葉面積隨Si處理濃度的增加表現出先升后降的趨勢(圖4)。與對照相比,0.25~1.00 mmol/L的Si處理可明顯提高兩個品種幼苗的葉面積。“雪梨一號”以0.75 mmol/L的Si處理效果最佳,葉面積較對照增幅最大,差異顯著(P<0.05),對NaCl脅迫的緩解作用最明顯,而1.25 mmol/L的Si處理葉面積明顯低于對照(P<0.05),對脅迫不但沒有緩解作用反而加劇脅迫。“朗秦銀密”以0.50 mmol/L的Si處理效果最好,葉面積較對照增幅最大,差異顯著(P<0.05),1.00 mmol/L的Si處理與對照無顯著差異,而1.25 mmol/L的Si處理葉面積較對照顯著降低(P<0.05),脅迫加劇。以上結果表明,Si對幼苗NaCl脅迫的緩解效果與濃度有關,不同品種的最佳作用濃度也不同。對于“雪梨一號”,0.75 mmol/L的Si處理效果最佳,而“朗秦銀密”為0.50 mmol/L的Si處理效果為最佳??傮w來看,0.25~0.75 mmol/L的Si對NaCl脅迫的緩解作用明顯,超過0.75 mmol/L時緩解作用降低,1.25 mmol/L時沒有作用,反而加劇脅迫。

2.6 Si對NaCl脅迫下甜瓜幼苗地上部分干重的影響

NaCl脅迫下,幼苗地上部分干重隨Si濃度的增加呈先升后降的趨勢(圖5)?!把├嬉惶枴庇酌绠擲i 濃度為0.25~1.00 mmol/L時,地上部分干重較對照明顯增加,差異顯著(P<0.05),其中以0.50 mmol/L的處理效果最佳,而1.25 mmol/L的Si處理時干重較對照降低顯著(P<0.05)。對于“朗秦銀密”幼苗,0.25~0.75 mmol/L的Si對地上部分干重較對照增加顯著(P<0.05),以0.50 mmol/L的處理效果最好,Si濃度大于1.00 mmol/L時,干重較對照降低顯著(P<0.05),脅迫加劇。結果表明,低濃度的Si促進地上部分莖葉對營養的吸收,緩解NaCl脅迫,有壯苗作用。Si為0.25~0.75 mmol/L時,對NaCl脅迫下幼苗的生長有促進作用,0.50 mmol/L時對兩個品種甜瓜幼苗地上部分干重的促進作用最明顯,對脅迫的緩解作用最佳,Si濃度大于1.00 mmol/L時,緩解脅迫的作用降低,甚至加劇脅迫。

圖4 Si對NaCl脅迫下甜瓜幼苗葉面積的影響Fig.4 Effect of exogenous silicon on leaf area of melon seedlings under NaCl stress

圖5 Si對NaCl脅迫下甜瓜幼苗地上部分干重的影響Fig.5 Effect of exogenous silicon on shoot dry weight of shoot of melon seedlings NaCl stress

圖6 Si對NaCl脅迫下甜瓜幼苗地下部分干重的影響Fig.6 Effect of exogenous silicon on root dry weight of melon seedlings under NaCl stress

2.7 Si對NaCl脅迫下甜瓜幼苗根系干重的影響

一定濃度的Si處理能提高幼苗根系的生長,幼苗根系干重隨Si處理濃度的增加呈先升后降的趨勢(圖4)。與對照相比,0.25~1.00 mmol/L的Si處理均能明顯增加幼苗根系干重。其中“雪梨一號”以0.75 mmol/L的Si處理效果最佳,而0.50 mmol/L 的Si對“朗秦銀密”的處理效果最好,根系干重較對照增幅最大,差異顯著(P<0.05)。“雪梨一號”幼苗Si 處理濃度為1.25 mmol/L時,與對照差異不顯著(P>0.05),對根系干物質積累沒有促進作用?!袄是劂y密”幼苗0.25~1.00 mmol/L 的Si各處理間差異明顯,均顯著高于對照(P<0.05)。Si對NaCl脅迫下“雪梨一號”幼苗的緩解作用要強于“朗秦銀密”,不同品種Si的最佳作用濃度不同,這可能與品種特性有關。以上結果表明,0.25~1.00 mmol/L的Si對NaCl脅迫下甜瓜幼苗的生長有明顯的緩解作用,超過1.00 mmol/L時則無緩解作用。外源Si對NaCl脅迫的緩解作用因品種而異。

2.8 Si對NaCl脅迫下甜瓜幼苗葉片葉綠素含量的影響

葉綠素在光合作用中植物對光能的吸收、傳遞和轉換過程中起著關鍵的作用。不同濃度的Si處理對NaCl脅迫下幼苗葉片葉綠素a、葉綠素b和葉綠素(a+b)含量有不同的影響(表2)。與對照相比,0.25~0.75 mmol/L的Si處理均能明顯提高兩個品種幼苗葉綠素a、葉綠素b和葉綠素(a+b)含量,以0.50 mmol/L的處理效果最佳,差異顯著(P<0.05)。對于“雪梨一號”,1.00 mmol/L的Si處理后各指標與對照差異不顯著,1.25 mmol/L的處理各指標較對照降低;而“朗秦銀密”,各濃度處理下的上述各指標均稍高于對照,1.25 mmol/L的Si處理與對照無明顯差異。說明0.25~1.00 mmol/L的Si能有效地緩解甜瓜幼苗的NaCl脅迫,提高葉綠素含量,增強光合作用,促進幼苗的生長發育。當Si濃度大于1.25 mmol/L時,對脅迫無緩解作用。

表2 Si對NaCl脅迫下甜瓜幼苗葉片葉綠素含量的影響

3 討論

鹽脅迫損害植物細胞正常的代謝過程,對種子的萌發有不利影響。種子萌發率與種子活力是一致的[14],本試驗發現,小于50 mmol/L的NaCl處理對甜瓜種子萌發有促進作用,而當NaCl濃度大于50 mmol/L時隨處理濃度的升高種子萌發率降低,說明高濃度NaCl對種子活力有抑制作用。兩個甜瓜品種“朗秦銀蜜”和“雪梨一號”的鹽脅迫臨界濃度分別為100和150 mmol/L,說明“雪梨一號”耐鹽性強于“朗秦銀蜜”。當NaCl濃度達到250 mmol/L時兩甜瓜品種的種子萌發率均接近0,種子活力基本喪失。NaCl對甜瓜種子萌發的影響表現為低濃度促進,高濃度抑制,這種現象可能與低鹽促進細胞膜滲透調節有關,也可能是低濃度鹽中的無機離子對呼吸酶有一定的激活作用,而高濃度鹽會產生滲透脅迫和離子脅迫,抑制種子內部生理生化反應的重建以及膜透性增加等而抑制種子萌發[15]。

高濃度鹽會造成種子萌發率、發芽勢、發芽指數降低[12]。Si能提高鹽脅迫下玉米種子的淀粉酶、蛋白酶、脂肪酶的活性,促進呼吸代謝提高種子的萌發率[15]。Si有利于鹽脅迫下水稻(Oryzasativa)種子的萌發[16]。本研究通過預備試驗,選取2個不同品種鹽臨界濃度之間的125 mmol/L的NaCl進行脅迫處理,通過不同濃度的Si處理,結果表明0.50~0.75 mmol/L的Si處理較對照能顯著提高NaCl脅迫下2個品種的種子萌發率、發芽勢、發芽指數、吸水率和α-淀粉酶活性,以0.50 mmol/L的作用效果最佳,而Si濃度大于1.00 mmol/L時對脅迫的緩解作用降低,甚至有加重脅迫的作用(表1,圖2)。說明Si能通過促進種子的吸水和提高α-淀粉酶的活性來促進種子萌發,緩解鹽對甜瓜種子萌發的抑制作用。這與戚樂磊等[15]對鹽脅迫下水稻種子萌發的研究結果一致。低濃度的外源Si顯著提高了甜瓜種子萌發的相關指標,可能是Si附著于種皮上,調節了細胞壁的孔隙度,減少了鹽分進入胚的過程,從而減輕了鹽對種胚的傷害作用,提高種子活力[15]。而高濃度的Si對NaCl脅迫的緩解作用降低,甚至有加重脅迫作用,可能與高濃度的Si產生的滲透脅迫有關,有待進一步研究。

生物量是植物對鹽脅迫反應的綜合體現,也是植物耐鹽性的直接指標[17]。研究表明,Si能提高鹽脅迫下大麥根系的吸收能力,促進幼苗生物量增加[18-19]。Si能提高水稻[5]、小麥(Triticumaestivum)[19]和黃瓜幼苗[20]的抗鹽能力和干物質的積累。本試驗結果表明,與對照相比,0.25~1.00 mmol/L的Si能顯著提高NaCl脅迫下2個不同鹽敏感甜瓜品種幼苗的株高、葉面積指數、幼苗地上部分與根系干重及葉綠素含量,而Si濃度大于1.00 mmol/L時對幼苗的生長起抑制作用,幼苗的地上部分與根系干物質的積累降低,可能與Si干擾正常的物質代謝和能量代謝,并消耗一定的生物能有關。葉綠素含量是反映植物光合能力的一個重要參數,光合性能的好壞最終將影響作物的生長、產量和品質[21]。本試驗結果表明,適宜濃度的Si能明顯提高NaCl脅迫下甜瓜葉綠素含量,說明Si可以顯著緩解NaCl脅迫下葉綠素的降解,有利于幼苗在脅迫下維持正常的光合作用,增強幼苗對脅迫的耐受能力,這可能是Si促使鹽脅迫下幼苗生物量增加的一個重要因素。因此,Si對甜瓜幼苗NaCl脅迫的緩解作用與濃度和品種有關,0.25~0.75 mmol/L的低濃度作用明顯,超過0.75 mmol/L時對脅迫的緩解作用降低,1.00 mmol/L以上對NaCl脅迫沒有緩解作用,甚至加劇脅迫。“朗秦銀蜜”和“雪梨一號”幼苗分別以0.50和0.75 mmol/L外源Si處理效果最好。

綜上所述,適當濃度的外源Si(0.25~1.00 mmol/L)對增強甜瓜種子萌芽期及幼苗期的耐鹽性具有一定的作用,可提高鹽脅迫下種子的萌發率、發芽勢、發芽指數和α-淀粉酶活性,促進種子吸水,利于種子萌發。外源Si可提高鹽脅迫下甜瓜幼苗的葉綠素含量,莖葉及根系干物質積累,有利于幼苗的生長發育并增強其抗逆性,減輕鹽害。

[1] Guo W Z, Liu S F, Li D R,etal. Mechanism of soil salinization in protected cultivation. Soils, 2004, 36(1): 25-29.

[2] Chen Y G, Zhang M, Wang D L,etal. Effects of NaCl stress on characteristics of seedling physiology in melon. Journal of Anhui Agriculture Science, 2009, 37(8): 3390-3392.

[3] Zhang Y X, Liu F, Kang E X,etal. Study on ion absorption of muskmelon seedlings under NaCl stress. Plant Nutrition and Fertilizer Science, 2008, 14(3): 533-539.

[4] Chen N L, Ma G J, Zhang Y X,etal. Responses of seed germination and seedling growth of muskmelon to NaCl stress. Journal of Desert Research, 2006, 26(5): 814-819.

[5] Manju M, Naresh C. Silicon effects on nodule growth, dry matter production and mineral nutrition of cowpea (Vignaunguiculata). Journal of Plant Nutrition Soil Science, 2008, 171: 835-840.

[6] Gao D, Chen J N, Cai K Z,etal. Distribution and absorption of silicon in plant and its role in plant disease resistance under environmental stress. Acta Ecologica Sinica, 2010, 30(10): 2747-2749.

[7] Liang Y C, Ding R X, Liu Q,etal. Effects of silicon on salt tolerance of barley and its mechanism. Scientia Agricultura Sinica, 1999, 32(6): 75-83.

[8] Han X R, Hou Y H, Jiang L L,etal. Effects of silicon on cucumber seeding growth and plant nutrition under salt stress. Chinese Journal of Soil Science, 2006, 37(6): 1162-1165.

[9] Shu L Z, Liu Y H. Effects of silicon on growth of maize seedlings under salt stress. Agro-environmental Protection, 2001, 20(1): 38-40.

[10] Fang J Y, Wang H, Zhang F S. Effect of silicon on tobacco suspension cells under salt stress and related mechanism. Acta Agronomica Sinica, 2003, 29(4): 610-614.

[11] Zhang J N, Liu K. Mechanism for plants detecting the optimum time and place to germinate. Acta Pratuculturae Sinica, 2014, 23(1): 328-338.

[12] Wang Y P, Dong W, Zhang X,etal. Effects of salicylic acid on seed germination and physiological characters of cauliflower seedling under salt stress. Acta Prataculturae Sinica, 2012, 21(1): 213-219.

[13] Li H S. The Principle and Technology of Plant Physiology and Biochemistry Experiment[M]. Beijing: Higher Education Press, 2000.

[14] Zheng G H. Seed Phsiology[M]. Beijing: Science Press, 2004.

[15] Qi L L, Chen Y, Jia H X. Effects of organic and inorganic silicon on the germination of rice seeds under salt stress. Journal of Gansu Agriculture University, 2002, 37(3): 272-278.

[16] Zhang W Q, Huang Y Z, Zhao L J,etal. Effects of silicon on the germination of si mutant rice and wild rice seeds under salt stress. Asian Journal of Ecotoxicology, 2009, (6): 868-872.

[17] Lu Y, Lei J Q, Zeng F J,etal. Effect of salt treatments on the growth and ecophysiological characteristics ofHaloxylonammodendron. Acta Pratuculturae Sinica, 2014, 23(3): 152-159.

[18] Liang Y C, Chen Q, Liu Q. Exogenous silicon increase antioxidant enzyme activity and reduces lipid peroxidation in roots of salt-stressed barley (HordeumvulgareL.). Journal of Plant Physiology, 2003, 160: 1157-1164.

[19] Liang Y C, Ding R X. Effect of silicon on ion distribution in barley root and the relationship with the salt tolerance of barley. Science in China (Series C), 2002, 32(2): 113-121.

[20] Qian Q Q, Zai W S, Zhu Z J,etal. Effects of exogenous silicon on active oxygen scavenging systems in chlo-roplasts of cucumber (CucumissativusL.) seedlings under salt stress. Journal of Plant Physiology and Molecular Biology, 2006, 32(1): 107-112.

[21] Wei G Q, Zhu Z J, Fang X Z,etal. The effects of NaCl stress on plant growth, chlorophyll fluorescence characteristics and active oxygen metabolism in seedlings of two cucumber cultivars. Scientia Agricultura Sinica, 2004, 37(11): 1754-1759.

參考文獻:

[1] 郭文忠, 劉聲鋒, 李丁仁, 等. 設施蔬菜土壤次生鹽漬化發生機理的研究現狀與展望.土壤, 2004, 36(1): 25-29.

[2] 陳友根, 章敏, 王冬良, 等. 甜瓜幼苗對NaCl脅迫傷害的生理響應.安徽農業科學, 2009, 37(8): 3390-3392.

[3] 張玉鑫, 劉芳, 康恩祥, 等. NaCl脅迫下甜瓜幼苗離子吸收特性研究.植物營養與肥料學報, 2008, 14(3): 533-539.

[4] 陳年來, 馬國軍, 張玉鑫, 等. 甜瓜種子萌發和幼苗生長對NaCl脅迫的響應.中國沙漠, 2006, 26(5): 814-819.

[6] 高丹, 陳基寧, 蔡昆爭, 等. 硅在植物體內的分布和吸收及其在病害逆境脅迫中的抗作用.生態學報, 2010, 30(10): 2747-2749.

[7] 梁永超, 丁瑞興, 劉謙, 等. 硅肥對大麥耐鹽性的影響及其機制. 中國農業科學, 1999, 32(6): 75-83.

[8] 韓曉日, 侯玉慧, 姜琳琳, 等. 硅對鹽脅迫下黃瓜幼苗生長和礦質元素吸收的影響.土壤學報, 2006, 37(6): 1162-1165.

[9] 束良佐, 劉英慧. 硅對鹽脅迫下玉米幼苗生長的影響.農業環境保護, 2001, 20(1): 38-40.

[10] 房江育, 王賀, 張福鎖. 硅對鹽脅迫煙草懸浮細胞的影響.作物學報, 2003, 29(4): 610-614.

[11] 張佳寧, 劉坤. 植物調節萌發時間和萌發地點的機制.草業學報, 2014, 23(1): 328-338.

[12] 王玉萍, 董雯, 張鑫, 等. 水楊酸對鹽脅迫下花椰菜種子萌發及幼苗生理特性的影響.草業學報, 2012, 21(1): 213-219.

[13] 李合生. 植物生理生化實驗原理和技術[M]. 北京: 高等教育出版社, 2000.

[14] 鄭光華. 種子生理[M]. 北京: 科學出版社, 2004.

[15] 戚樂磊, 陳陽, 賈恢先. 鹽脅迫下有機及無機硅對水稻種子萌發的影響.甘肅農業大學學報, 2002, 37(3): 272-278.

[16] 張文強, 黃益宗, 招禮軍, 等. 鹽脅迫下外源硅對硅突變體與野生型水稻種子萌發的影響.生態毒理學報, 2009, (6): 868-872.

[17] 魯艷, 雷加強, 曾凡江, 等. NaCl處理對梭梭生長及生理生態特征的影響.草業學報, 2014, 23(3): 152-159.

[19] 梁永超, 丁瑞興. 硅對大麥根系中離子的微域分布的影響及其與大麥耐鹽性的關系.中國科學(C輯), 2002, 32(2): 113-121.

[20] 錢瓊秋, 宰文珊, 朱祝軍, 等. 外源硅對鹽脅迫下黃瓜幼苗葉綠體活性氧清除系統的影響. 植物生理與分子生物學學報, 2006, 32(1): 107-112.

[21] 魏國強, 朱祝軍, 方學智, 等. NaCl脅迫對不同品種黃瓜幼苗生長、葉綠素熒光特性和活性氧代謝的影響.中國農業科學, 2004, 37(11): 1754-1759.

Effects of exogenous silicon on melon seed germination and the growth of seedlings under NaCl stress

WANG Yu-Ping1,2, WANG Ying-Xia2, BAI Xiang-Li1, WANG Xiao-Qing1, ZHANG Feng1,3*

1.GansuKeyLaboratoryofCropGenetic&GermplasmEnhancement,GansuKeyLaboratoryofAridlandCropScience,GansuAgriculturalUniversity,Lanzhou730070,China; 2.CollegeofHorticulture,GansuAgriculturalUniversity,Lanzhou730070,China; 3.CollegeofLifeScienceandTechnology,GansuAgriculturalUniversity,Lanzhou730070,China

The effects of exogenous silicon on the growth of melon under salt stress were investigated. Seedlings of two melon cultivars (Xueli No.1 and Longqinyinmi) with different salt tolerance were grown with 125 mmol/L NaCl stress Exposure to 125 mmol/L NaCl stress significantly inhibited melon seed germination. Compared with control, treatments with 0.5-1.0 mmol/L exogenous silicon significantly increased seed germination rate, germination energy, germination index, alpha-amylase activity and water absorption and the treatment with 0.75 mmol/L exogenous silicon performed best. In addition, melon seedlings with 0.25-1.00 mmol/L silicon exposed to 125 mmol/L NaCl had significantly increased plant height, leaf area, chlorophyll content, shoot dry weight and root dry weight, compared to controls. Treatment with 0.50 mmol/L was optimal for Longqinyinmi, while 0.75 mmol/L gave best results for Xueli No.1. These results indicate that exogenous silicon concentration from 0.50 mmol/L to 0.75 mmol/L can promote melon seed germination by enhancing alpha-amylase activity and water absorption, and promote seedling growth by increasing chlorophyll content and photosynthesis capacity under salt stress. When the silicon concentration was more than 1.25 mmol/L, there was no effect on the seed germination and growth of seedlings under salt stress.

silicon; NaCl stress; seed germination; seedlings growth; melon

10.11686/cyxb20150513

http://cyxb.lzu.edu.cn

2014-05-16;改回日期:2014-08-26

國家自然科學基金項目(31060063,31260094),甘肅省自然科學基金項目(0803RJZA051)和甘肅省財政廳項目資助。

王玉萍(1974-),女,甘肅天水人,副教授,博士。E-mail: wangyp@gsau.edu.cn *通訊作者Corresponding author. E-mail: zhangf@gsau.edu.cn

王玉萍, 王映霞, 白向利, 王小青, 張峰. 硅對NaCl脅迫下甜瓜種子萌發及幼苗生長的影響. 草業學報, 2015, 24(5): 108-116.

Wang Y P, Wang Y X, Bai X L, Wang X Q, Zhang F. Effects of exogenous silicon on melon seed germination and the growth of seedlings under NaCl stress. Acta Prataculturae Sinica, 2015, 24(5): 108-116.

猜你喜歡
影響
是什么影響了滑動摩擦力的大小
哪些顧慮影響擔當?
當代陜西(2021年2期)2021-03-29 07:41:24
影響大師
沒錯,痛經有時也會影響懷孕
媽媽寶寶(2017年3期)2017-02-21 01:22:28
擴鏈劑聯用對PETG擴鏈反應與流變性能的影響
中國塑料(2016年3期)2016-06-15 20:30:00
基于Simulink的跟蹤干擾對跳頻通信的影響
如何影響他人
APRIL siRNA對SW480裸鼠移植瘤的影響
對你有重要影響的人
主站蜘蛛池模板: 国产亚洲欧美在线中文bt天堂| 性欧美久久| 欧美中日韩在线| 中文字幕第4页| 久久人人97超碰人人澡爱香蕉| 另类重口100页在线播放| 欧美性久久久久| 另类重口100页在线播放| 日韩色图区| 无码电影在线观看| 日韩色图区| 久久香蕉国产线看观| 久草青青在线视频| 国产欧美精品一区aⅴ影院| 666精品国产精品亚洲| 一级高清毛片免费a级高清毛片| 91娇喘视频| 亚洲91精品视频| 亚洲欧洲综合| 2022国产91精品久久久久久| 99人妻碰碰碰久久久久禁片| 亚洲成网777777国产精品| 国产鲁鲁视频在线观看| 99激情网| 日韩大片免费观看视频播放| 亚洲欧洲日本在线| 亚洲精品无码在线播放网站| 国产精品欧美激情| 欧美另类视频一区二区三区| 亚洲欧洲自拍拍偷午夜色| 欧美www在线观看| 久久伊人久久亚洲综合| 国产美女免费| 国产成人亚洲综合A∨在线播放| 免费看a级毛片| 青青草原偷拍视频| 亚洲an第二区国产精品| 国产麻豆另类AV| 无码中字出轨中文人妻中文中| 噜噜噜综合亚洲| 99久久精品国产自免费| 午夜久久影院| 国产玖玖视频| av一区二区无码在线| 激情综合婷婷丁香五月尤物| 国产主播喷水| 亚洲欧美人成人让影院| 欧美激情福利| 在线观看国产黄色| 日韩免费毛片视频| 91人妻在线视频| 欧美日韩另类在线| 国内精品小视频在线| 国产一区二区丝袜高跟鞋| 日韩人妻精品一区| 国产精品片在线观看手机版 | 高清免费毛片| 国产另类视频| 亚洲精品无码在线播放网站| 久久精品91麻豆| 就去吻亚洲精品国产欧美| 久久伊人色| 国产综合在线观看视频| 免费av一区二区三区在线| 亚洲国产综合自在线另类| 久久6免费视频| 亚洲VA中文字幕| 国产Av无码精品色午夜| 亚洲欧美一区二区三区蜜芽| 国产在线啪| 亚洲国产日韩一区| 97狠狠操| 亚洲国产亚洲综合在线尤物| 欧美a在线看| 国产女同自拍视频| 国产情精品嫩草影院88av| 国产精品久久久久久久久久久久| 91精品国产自产在线观看| 99热亚洲精品6码| 国产成人免费| 国产91蝌蚪窝| 国产主播喷水|