餌料加標研究二甲苯麝香在魚體內的蓄積和清除能力

王綠平，趙華清，周忠良，殷浩文,*

1. 上海市檢測中心生物與安全實驗室，上海 201203 2. 華東師范大學生命科學學院，上海 200062

餌料加標研究二甲苯麝香在魚體內的蓄積和清除能力

王綠平1,2，趙華清1，周忠良2，殷浩文1,*

1. 上海市檢測中心生物與安全實驗室，上海 201203 2. 華東師范大學生命科學學院，上海 200062

二甲苯麝香(musk xylene, MX)是一種人造麝香，具有強烈的麝香氣，可用作化妝品香精和皂用香精等的定香劑。由于其持續不斷地輸入環境，它們在水、土壤、大氣中的濃度逐漸升高，并且在動物和人體組織中產生了蓄積，其蓄積效應相當于有機氯農藥(organochlorine pesticides, OCPs)等持久性有機污染物，因而研究MX在魚體內的蓄積特征是十分必要的。本文用含濃度為50 mg·kg-1和100 mg·kg-1的MX的餌料投喂斑馬魚(Danio rerio)和稀有鮈鯽(Gobiocypris rarus)14 d，繼而進入為期28 d的清除實驗。通過快速溶劑萃取(accelerated solvent extraction, ASE)、凝膠滲透色譜(gel permeation chromatography, GPC)、氣相色譜-質譜聯用法(gas chromatography-mass spectrometry, GC-MS)測定斑馬魚和稀有鮈鯽體內MX的濃度，繼而評估魚對MX的清除能力。結果表明，餌料中MX濃度越高，魚體內MX的蓄積水平越高，100 mg·kg-1濃度組的蓄積水平為50 mg·kg-1濃度組的蓄積水平的2～3倍。在整個試驗階段的不同時間點分析魚的體重和脂肪與魚體內MX濃度的關系，數據顯示，MX在魚體內的蓄積水平與魚的體重存在正線性關系，而與魚體內脂肪含量的關系還有待進一步研究。經28 d的清除，魚體內的MX殘留量接近于零，說明斑馬魚和稀有鮈鯽對MX的清除能力較強。

二甲苯麝香；斑馬魚；稀有鮈鯽；攝食暴露生物蓄積；氣相色譜-質譜串聯法；清除速率常數；同化率；攝食生物放大因子

二甲苯麝香(1-tert-butyl-3,5-dimethyl-2,4,6-trinitrobenzene)，是一種常見的人工合成硝基麝香[1]。因其具有與天然麝香提取物相似的芳香特性，被廣泛應用于化妝品、洗滌劑、食品添加劑和身體護理產品等，普遍存在于環境中[2-3]。在地表水、生活污水，以及水產養殖的淡水魚、貽貝(Mytilus edulis)、河蝦(Macrobranchium nipponense)、虹鱒(Oncorhynchus mykiss)中檢測到二甲苯麝香[4]。

化學物質通過多個途徑在魚體內蓄積，其中包括皮膚、鰓或消化系統，重要的暴露途徑是水體和食物鏈。暴露途徑的重要性與化學物質的水溶解度以及魚類所處的生態位有著密切關系。隨著化學物質的水溶解度降低，正辛醇/水系數增大，其通過食物鏈進入魚體的可能性隨之提高[5-7]。二甲苯麝香具有極性較小、親脂憎水性較強(log Kow=4.9，水溶解度為0.15 mg·L-1)和在環境中不易降解的的理化特征[8]。有文獻表明進入生物體內的人工合成麝香的重要途徑是食物鏈[9]。由于MX的特殊用途，有關MX在魚體內的分布和蓄積的研究較少。

斑馬魚是一種國際公認的模式實驗魚，具有世代周期短、繁殖率高、胚胎透明、易于觀察等優點，已廣泛地應用于生態毒理學研究領域。稀有鮈鯽是我國特有的一種小型鯉科魚類，是我國環境保護部的《化學品測試方法》和國家標準《化學品稀有鮈鯽急性毒性試驗》(GB/T29763-2013)推薦的受試生物。目前，稀有鮈鯽正越來越多地應用于化學品急性和亞急性毒性的生態毒理學研究領域，但鮮有文獻報道稀有鮈鯽用于研究化學品在魚體內的蓄積和清除能力的研究。本文研究旨在通過餌料加標以攝食暴露的方式研究斑馬魚和稀有鮈鯽體內的二甲苯麝香蓄積和清除能力。

1 材料與方法(Materials and methods)

1.1 儀器與試劑

CHRiST凍干機(北京博勱行儀器有限公司)，ASE200型快速溶劑萃取儀(戴安中國有限公司)，AccuPrep MPSTM凝膠滲透色譜儀(美國J2 Scientific公司)，Quattro micro GC型氣相色譜串聯質譜儀(美國Waters公司)，Tissuelyser-48多樣品組織研磨機(上海凈信實驗科技研究部)，AL204型電子分析天平(梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司)，MultivapTM118氮氣蒸發系統(Organomation Associates, Jnc公司)，JL-360DTH型超聲波清洗器(上海吉理科學儀器有限公司)，Forma-86C ULT型冷凍冰箱(Thermo Electron Corporation公司)，WT600-2J型蠕動泵驅動器(保定蘭格恒流泵有限公司)，帶溫控的水浴槽。HI98128型手持式pH計(HANNA?instruments)，Thermo 3 Star溶氧儀(Thermo Electron Corporation公司)。

丙酮(分析純)、正己烷(色譜純)、異辛烷(分析純)、乙酸乙酯(分析純)、環己烷(色譜純)均購于sigma-aldrich西格瑪奧德里奇(上海)貿易有限公司，無水硫酸鈉(分析純，上海國藥集團化學試劑有限公司)，二甲苯麝香標準溶液(100 mg·L-1in acetonitrile)購自sigma-aldrich西格瑪奧德里奇(上海)貿易有限公司，二甲苯麝香(1-tert-butyl-3,5-dimethyl-2,4,6-trinitrobenzol, MX)購自上海天王化工原料有限公司，純度>99%。

1.2 稀釋水

經活性炭過濾、紫外滅菌的自來水，并在儲水箱中24 h連續曝氣，恒溫(23±2) ℃。水的硬度為145 mg CaCO3·L-1；pH 6.90～7.09；溶解氧濃度大于90%空氣飽和值(air saturation value, ASV。

1.3 飼料商品

鹵蟲薄片飼料(O.S.I Marine Lab.Inc.)，主要成分為魚粉、小麥粉、鹵蟲、蝦粉、濃縮魚蛋白、胡蘿卜素、干圓酵母、魚油、天然人工色素、卵磷脂和各種維生素，其中粗蛋白含量≥48%，粗脂肪含量≥7%。

1.4 試驗魚種

試驗魚種為斑馬魚和稀有鮈鯽，且處于同一年齡階段。在試驗開始前，試驗魚在試驗條件下馴養2周，每次投餌量為魚濕重的1.5%，一天投喂2次。試驗過程中，根據試驗魚的數量和體重的變化，修正投喂量。

1.5 實驗方法

1.5.1 試驗設計

斑馬魚和稀有鮈鯽的對照組和2個處理組均未設置平行組。斑馬魚和稀有鮈鯽的對照組，試驗魚總尾數均為150尾，斑馬魚和稀有鮈鯽的各處理組，試驗魚的總尾數均為250尾。2個處理組的餌料中二甲苯麝香的配制濃度分別為50.0 mg·kg-1(處理組1)，100 mg·kg-1(處理組2)。

1.5.2 餌料制備

將一定量的MX溶解在丙酮中，分別配制成100 mg·L-1和200 mg·L-1的MX母液。稱取一定量研磨后的餌料(粉末狀)，往其中添加相同體積不同濃度的MX母液，分別配制成50.0 mg·kg-1和100 mg·kg-1的試驗餌料。經攪拌均勻后，放置于通風櫥，室溫干燥過夜。餌料加標完成后，分別在0 d、3 d、5 d、7 d和14 d取樣，測定餌料中MX的實測濃度，分析其在餌料中的穩定性和均一性，以確定加標餌料的更新周期。對照組餌料按處理組的加標方式處理，不同之處是丙酮中不含MX。加標餌料置于4 ℃冷藏儲存，直至使用。

1.5.3 試驗魚的選擇

選擇在試驗條件下馴養、無疾病或明顯畸形的斑馬魚魚齡3月，體重(0.336±0.05) g (mean±SD，下同)，體長(3.5±0.5) cm和稀有鮈鯽魚齡3月，體重(0.524±0.09) g，體長(3.0±1) cm，來源于中國科學院水生生物研究所。魚體重相似，最小的不低于最大的體重的2/3。試驗開始時，試驗魚隨機地從馴養魚群中選擇，稱重后轉入試驗容器中。

1.5.4 試驗程序

MX的攝食暴露生物蓄積試驗分2個階段：吸收階段(加標餌料)和清除階段(清潔餌料)。吸收階段持續時間為14 d，清除階段持續時間為28 d[10]。試驗開始時，對照組斑馬魚和稀有鮈鯽的承載量分別為0.072 g魚·(d·L)-1和0.112 g魚·(d·L)-1，處理組1和處理組2的斑馬魚和稀有鮈鯽的承載量分別為0.120 g魚·(d·L)-1和0.187 g魚·(d·L)-1；光照周期為14 h:10 h；水中溶解氧濃度平均值為90%ASV，溫度為(23.2±0.4) ℃(mean+SD)，pH值為(7.36±0.23) (mean+SD)。實驗裝置為流水系統，試驗容器為不銹鋼桶(高60 cm，直徑60 cm，有效容積140 L)，流速為500 mL·min-1，每天試驗用水更新700 L。

吸收階段，處理組的斑馬魚和稀有鮈鯽分別投喂加標餌料，對照組的魚投喂清潔餌料，每天2次。清除階段，處理組和對照組的魚均投喂清潔餌料，投餌量和頻率與吸收階段一致。每次魚的攝食率均為平均魚濕重的1.5%。

在試驗開始前和試驗結束時，空白對照組和處理組的魚均隨機取20尾用于體重分析，以及在每個取樣點均對所取的魚樣逐條測量體重。

整個試驗期間，在吸收階段第3天和第13天，清除階段第3、5、7、9、13、20、28天，從空白對照組和各處理組中分別采集魚樣6尾。為了確保腸道內沒有餌料殘留，吸收階段第3天和第13天取魚樣時，試驗魚第2次進食后30 min后，分別在對照組和每個處理組的容器中隨機取魚樣，迅速放入對應的盛有清潔水的小型玻璃容器中。大約5 h后，再投喂清潔餌料(不含二甲苯麝香)。于次日上午安樂死之后逐條稱重和測定二甲苯麝香濃度。吸收階段的第13天對應清除階段的第1天。

試驗開始前對試驗用水進行目標物的檢測分析。試驗過程中每周對水樣中目標物測定一次。在整個試驗過程中，水的質量參數(溫度、流速、溶解氧、硬度、堿度和pH)沒有明顯的改變。

1.6 化學分析方法

使用氣相色譜-串聯質譜方法定量分析水、餌料和魚體中的二甲苯麝香濃度，餌料和魚樣的前處理方法均選用快速溶劑萃取(ASE)法和凝膠滲透色譜(GPC)法，萃取溶劑為正己烷，凝膠滲透色譜流動相為乙酸乙酯/環己烷(1:1，V/V)。水樣的前處理方法為液液萃取，萃取溶劑為正己烷。具體的儀器方法和分析條件見參考文獻[11-12]。

1.7 數據處理

當化合物的BMFk的實地測量值缺乏或不存在時，實驗室測定值可被認為是此化合物生物蓄積的一個關鍵指標。計算BMFk值，首先需獲得同化率(受試物在腸道的吸收，α)，同時還要知道清除階段開始時魚體內樣品的濃度(C0,d)、(總體)清除速率常數(k2)、餌料中受試物的濃度(Cfood)、攝食率(I)和吸收階段持續時間(t)。魚體內樣品濃度的自然對數(ln(濃度)與清楚階段持續時間之間的線性關系的斜率為k2，截距為C0,d。如果有必要做生長校正和脂肪校正，需計算生長校正清除速率常數(k2g)和脂肪校正因子(Lc)，從而計算出生長校正生物放大因子(BMFg)和脂肪校正生物放大因子(BMFL)[10]。

1.7.1 動態攝食生物放大因子(BMFK)計算

式中：α，同化率；C0，清除階段零時魚體內樣品的濃度，mg·kg-1；k2，總體清除速率常數(非生長糾正)，d-1；I，攝食率，g餌料/g魚/天；Cfood，試驗餌料中樣品的濃度，mg·kg-1；t，吸收階段持續時間，d；魚體內樣品濃度的自然對數(ln(濃度))與清除階段持續時間之間的線性關系的斜率為k2，截距為C0,d。

1.7.2 生長和脂肪-校正動態生物放大因子(BMFg，BMFL)計算

k2g=k2-kg

式中：Lc，脂肪校正因子；Lfish，魚體內平均脂肪含量，%；Lfood，餌料中平均脂肪含量，%。

1.7.3 統計分析

根據各個取樣時間點的餌料和魚體內MX的濃度，繪制ln(濃度)-時間曲線圖，用線性回歸分析，得出回歸方程，方程的斜率即為k2。同時，對不同取樣時間點的魚體重量和脂肪含量進行線性回歸分析，得出kg。用t-檢驗方法分析試驗開始時和試驗結束時魚的體重，判斷在整個試驗期間魚體重的增加對魚體內MX的濃度是否存在生長稀釋效應。

2 結果與討論(Results and discussion)

2.1 餌料分析

對照餌料未檢測到二甲苯麝香，加標餌料中MX實測平均濃度分別為48.1 mg·kg-1和95.1 mg·kg-1。平均加標回收率分別為87.3 %和90.2 %。吸收階段開始和結束時，餌料中平均脂肪含量分別為20.5 %和20.8 %。

2.2 餌料中MX的穩定性和均一性

加標餌料中MX的穩定性和均一性的結果分別見下表1和表2。表中MX的實測平均濃度為5個平行值的平均數，濃度變化百分比為第3、5、7、14天所取餌料中MX的實測濃度值與0 d餌料中MX的實測濃度值的差異。從表中可以看出，0 d～7 d內餌料中MX的濃度變化范圍均在±20%的范圍內。因此可判定7 d內餌料中的MX濃度穩定。吸收階段，試驗餌料每7 d更新1次。每次取樣所測的5個平行組之間的數值的標準偏差和變異系數(CV)基本小于10，說明配制餌料中MX分布比較均勻。

2.3 MX對斑馬魚和稀有鮈鯽的生長影響

試驗期間，水質參數(溫度、流水、溶解氧、硬度和pH)沒有明顯的變化。試驗用水中未檢出MX。在整個試驗階段，空白對照組和處理組的斑馬魚和稀有鮈鯽均正常和健康，并且無死亡。

表1 餌料中MX(配制濃度為50.0 mg·kg-1)的實測濃度及變化率Table 1 The measured concentration and variation of MX in fish feed (50 mg·kg-1 preparation concentration)

表2 餌料中MX(配制濃度為100 mg·kg-1)的實測濃度及變化率Table 2 The measured concentration and variation of MX in fish feed (100 mg·kg-1 preparation concentration)

表3 試驗期間不同時間的魚的體重值Table 3 The weight of fishes during test

表3中顯示在整個試驗階段內空白對照組和處理組的試驗魚的體重呈增加的趨勢，而且處理組的斑馬魚和稀有鮈鯽分別與相對應的空白對照組相比較，沒有明顯的差異(P>0.05)。因此，MX對斑馬魚和稀有鮈鯽的生長沒有抑制作用。

在試驗開始前、吸收階段結束時以及清除階段結束時，分別從2種魚的各個試驗組中取5尾魚檢測魚體內的脂肪平均濃度(w/w)，測定隨著試驗進展，斑馬魚和稀有鮈鯽體內脂肪含量的變化趨勢，從而推斷斑馬魚和稀有鮈鯽對MX的蓄積程度與其體內脂肪含量之間的關系。

由表4可知，在整個試驗過程中，2種魚體內的脂肪含量總體呈增加趨勢。試驗結束時，空白對照組和所有處理組斑馬魚體內脂肪含量與試驗開始時斑馬魚體內脂肪含量相比較，分別增加了93.5%、55.8%和57.0%，空白對照組和所有處理組稀有鮈鯽體，則脂肪含量分別增加了18.4%、19.3%和15.8%。Nakata等[13]報道的研究表明，MX濃度與脂肪含量有關，且脂肪含量越高，MX濃度越大。本研究可能是由于試驗取樣的頻率少和樣本數量不多，試驗魚體內MX的濃度與脂肪含量的相關性并不明顯。因而，還有待進一步的研究。

表4 魚體內脂肪含量及脂肪中MX的濃度Table 4 The content of fat in fish and the concentration of MX in fat

2.4 MX在斑馬魚和稀有鮈鯽體內的蓄積

整個試驗過程中，不同取樣時間點試驗魚體內檢測到的MX的平均濃度(n=3)和時間的關系分別如見下圖1、2、3、4。從圖中顯示斑馬魚和稀有鮈鯽暴露于不同劑量的餌料后，其對MX的蓄積及清除趨勢相似。對照組魚體內均未檢測到MX。在所有樣品的分析過程中均加入了空白魚樣加標準樣品回收率試驗以控制分析質量，其回收率范圍在80.3%～125%，平均回收率為97.5%。以ln(魚體內MX的濃度)對清除時間作圖，得出魚體內MX的總體清除速率常數k2(k2=斜率)，斑馬魚和稀有鮈鯽體內MX的總體清除速率見圖5～8。

從圖1～4中可以看出，在吸收階段中，魚體內MX的含量均呈上升趨勢，100 mg·kg-1濃度組的蓄積量比50 mg·kg-1度的蓄積量要高，大約成2～3倍關系，表明斑馬魚和稀有鮈鯽對MX的蓄積程度與餌料中MX的濃度劑量有關。有研究證明，用含有MX(其含量分別為1.0 μg·kg-1和10 μg·kg-1)的餌料喂養魚140 d后，在魚體內未有MX檢出[14]。這也說明MX在魚體內蓄積是攝入、生物轉化和排泄等作用的綜合競爭結果。低劑量的暴露，MX在魚體內可能是以生物轉化和排泄作用為主導，因而未能在體內產生蓄積。而本次研究的暴露劑量明顯超出了魚體內的生物轉化和排泄作用的能力，并隨著暴露劑量的增加，魚體內MX的蓄積濃度而隨之上升。清除階段，魚體內的MX的含量總體呈下降趨勢，50 mg·kg-1和100 mg·kg-1濃度組的斑馬魚體內MX的殘留量分別下降了99.4%和94.4%；稀有鮈鯽體內MX的殘留量也分別下降了97.1%和96.8%。不同暴露濃度的斑馬魚體內達到50%清除率需要的時間(t50)分別為3.80 d(50.0 mg·kg-1)和6.73 d(100 mg·kg-1)；稀有鮈鯽體內則分別為5.46 d(50.0 mg·kg-1)和5.66 d(100 mg·kg-1)。

圖1 50 mg·kg-1 處理組斑馬魚體內 MX的濃度與時間的關系Fig. 1 Relationship between the concentration of MX in Danio rerio and time for 50 mg·kg-1 group

圖2 100 mg·kg-1 處理組斑馬魚體內 MX的濃度與時間的關系Fig. 2 Relationship between the concentration of MX in Danio rerio and time for 100 mg·kg-1 group

圖3 50 mg·kg-1 處理組稀有鮈鯽體內 MX的濃度與時間的關系Fig. 3 Relationship between the concentration of MX in Gobiocypris rarus and time for 50 mg·kg-1 group

圖4 100 mg·kg-1 處理組稀有鮈鯽體內 MX的濃度與時間的關系Fig. 4 Relationship between the concentration of MX in Gobiocypris rarus and time for 100 mg·kg-1group

圖5 50 mg·kg-1 濃度組ln(斑馬魚體內 MX的濃度)與時間的關系Fig. 5 Relationship between ln(the concentration of MX in Danio rerio) and time for 50 mg·kg-1 group

圖6 100 mg·kg-1 濃度組ln(斑馬魚體內 MX的濃度)與時間的關系Fig. 6 Relationship between ln(the concentration of MX in Danio rerio) and time for 100 mg·kg-1 group

圖7 50 mg·kg-1 濃度組ln(稀有鮈鯽體內 MX的濃度)與時間的關系Fig. 7 Relationship between ln(the concentration of MX in Gobiocypris rarus) and time for 50 mg·kg-1 group

圖8 100 mg·kg-1 濃度組ln(稀有鮈鯽體內 MX的濃度)與時間的關系Fig. 8 Relationship between ln(the concentration of MX in Gobiocypris rarus) and time for 100 mg·kg-1 group

表5列出了斑馬魚和稀有鮈鯽對MX的k2、k2g、α、Lc、BMFk、BMFg和BMFL值。兩種魚種同屬于小型魚種，對相同劑量MX暴露后的清除速率和食物鏈上的生物放大程度相似。英國和威爾士的環境局(代表Defra)聯合荷蘭(RIVM)和德國(UBA)的多個實驗室曾開展一次攝食暴露的魚類蓄積比對試驗[15]。所用試驗生物分別為虹鱒(Oncorhynchus mykiss)和鯉魚(Cyprinus carpio)。該比對結果顯示，MX在魚體內的清除速率在0.062～0.459范圍內，BMF值均小于1。本文所得斑馬魚和稀有鮈鯽的k2值和BMF值均在此范圍內。說明稀有鮈鯽對二甲苯麝香在體內的中清除速率和生物放大因子與國際公認的模式實驗魚斑馬魚、虹鱒和鯉魚相似。

通過攝食暴露方法，研究了MX在斑馬魚和稀有鮈鯽體內的生物蓄積水平及對MX的清除能力。結果顯示，不同的MX餌料暴露劑量，魚體內MX蓄積程度亦不同；隨著暴露劑量的增加，魚體內MX的濃度隨之而上升。在整個試驗過程中，2種魚的體重和魚體內脂肪含量均呈上升趨勢，魚體內MX的濃度與魚體內脂肪含量之間沒有明顯的相關性，有待進一步研究。經清除階段，斑馬魚和稀有鮈鯽的清除速率系數分別為0.111～0.177和0.105～0.124，體內達到50%清除率需要的時間(t50)分別為3.80～6.73 d和5.46～5.66 d，2種魚對MX的清除能力均很強。斑馬魚和稀有鮈鯽生物放大因子均小于1，2種魚在食物鏈中對MX均無生物放大作用。稀有鮈鯽與斑馬魚同屬鯉科的小型魚種，本次研究結果豐富了稀有鮈鯽在化學品經攝食暴露(食物鏈途徑)的生物蓄積試驗的數據庫。

表5 整個試驗不同階段的K2、Kg、K2g、α、Lc、BMFk、BMFg和BMFL值Table 5 The K2, Kg, K2g, α and Lc, BMF of different stages during the whole test

致謝：感謝上海市檢測中心生物與安全實驗室趙華清老師的幫助和支持。

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Analysis of the Dietary Exposure Bioaccumulation and Depuration of MX-Spiked Feed in Fish

Wang Lvping1,2, Zhao Huaqing1, Zhou Zhongliang2, Yin Haowen1,*

1. Bioassay and Safety Assessment Laboratory, Shanghai Academy of Public Measurement, Shanghai 201203, China 2. Academy of Life Sciences, East China Normal University, Shanghai 200062, China

4 August 2014 accepted 21 November 2014

Musk xylene (MX) is a synthetic musk fragrance ingredient with strong odor characteristics used as fixative principally in cosmetics and soaps. Because of its continuous input to environment, the concentrations of MX was increasing in water, soil and air, and concentrated in animals and human tissues. Its accumulative effect was equivalent to that of persistent organic pollutants such as organo-chlorine pesticides (OCPs). It was necessary to study the bioaccumulation of MX in fishes. Zebrafish (Danio rerio) and rare minnow (Gobiocypris rarus) were fed with MX-containing chow (0, 50 and 100 mg MX/kg fish feed) for 14 days followed by 28 days of clean food. The concentrations of MX in zebrafish and rare minnow were measured by accelerated solvent extraction (ASE), gel permeation chromatography (GPC) and gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS), and then the depuration ability of fish to MX was evaluated. The more MX content in diets, the higher MX concentration was found in fishes, e.g., the MX in fishes of 100 mg·kg-1was two or three times as high as that of 50 mg·kg-1. A positive linear relationship was observed between the MX concentration in fishes and body weight of fishes, however, the body fat content was not related to the MX concentration in fishes. After depuration for 28 days, the levels of MX in fishes were close to zero, implying that zebrafish and rare minnow have a strong ability to depurate MX.

musk xylene; Danio rerio; Gobiocypris rarus; dietary exposure bioaccumulation; gas chromatography-mass spectrometry series method; depuration rate constant; assimilation; dietary biomagnification factor (BMFk)

環保公益性行業科研專項(No.201309028)

王綠平(1986-)，女，碩士，研究方向為水生生態毒理學，E-mail: lvping_wang@139.com

*通訊作者(Corresponding author)， E-mail: yinhaowen@126.com

10.7524/AJE.1673-5897.20140804001

2014-08-04 錄用日期：2014-11-21

1673-5897(2015)2-454-10

X171.5

A

殷浩文(1959-)，男，教授級高工，中國毒理學會理事，上海市建委環境生態學學科帶頭人，環境與職業健康雜志常務編委。研究方向為生態毒理學及生物檢測技術、生態風險評價。三次獲上海市科技進步一等獎、一次三等獎。

王綠平, 趙華清, 周忠良, 等. 餌料加標研究二甲苯麝香在魚體內的蓄積和清除能力[J]. 生態毒理學報, 2015, 10(2): 454-463

Wang L P, Zhao H Q, Zhou Z L, et al. Analysis of the dietary exposure bioaccumulation and depuration of MX-spiked feed in fish [J]. Asian Journal of Ecotoxicology, 2015, 10(2): 454-463 (in Chinese)