富血小板血漿(PRP)對兔早期椎間盤退變(IDD)的干預作用

桂柯科 俞永林 任偉民 李 新 董加純 尹望平

(1復旦大學附屬金山醫院骨科,3病理科,4放射科 上海 201508; 2復旦大學附屬華山醫院骨科 上海 200040)

富血小板血漿(PRP)對兔早期椎間盤退變(IDD)的干預作用

桂柯科1俞永林2△任偉民3李 新4董加純1尹望平1

(1復旦大學附屬金山醫院骨科,3病理科,4放射科 上海 201508;2復旦大學附屬華山醫院骨科 上海 200040)

目的 采用纖維環穿刺法建立兔椎間盤退變(intervertebral disc degeneration,IDD)模型,進行椎間盤內注射自體富血小板血漿(platelet-rich plasma,PRP)干預,評價影像學及組織學干預效果。方法 健康成年新西蘭大白兔16只,隨機分為PRP干預組(A組)、磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)注射組(B組)、造模對照組(C組)和單純對照組(D組),每組4只。A、B和C組采用纖維環穿刺法建立L4/5、L5/6 IDD模型。在造模后2周,對各組實驗動物進行二次干預。A組取耳中央動脈血,采用Landesberg法制備PRP,于L4/5、L5/6椎間隙分別注入0.1 mL PRP;B組于L4/5、L5/6椎間隙分別注入0.1 mL PBS;C組暴露椎間隙后不作特殊處理。干預后2周,進行X線及MRI檢查。處死實驗動物,取椎間盤組織進行HE染色、Masson染色、番紅O染色以及Ⅱ型膠原免疫組織化學染色,觀察組織學改變。結果 所有實驗動物均存活至實驗結束。PRP血小板計數約為外周血的3.69倍。隨著時間推移,B組和C組的椎間隙高度逐漸下降、椎間盤信號逐漸降低,各時間點組內椎間盤高度指數百分數(disc height index percentage,%DHI)和MRI分級差異有統計學意義(P<0.05);A組和D組的椎間隙高度、椎間盤信號無明顯變化,在初次手術后4周的時間點與B組和C組相比,差異均有統計學意義(P<0.05)。B組和C組的椎間盤組織病理學表現為髓核軟骨細胞退行性變、壞死,形態不規則,分布不均勻,軟骨基質逐步被纖維束取代,可見蛋白聚糖及Ⅱ型膠原減少;A組和D組的椎間盤組織形態變化不明顯,在初次手術后4周的時間點與B組和C組相比,差異均有統計學意義(P<0.05)。結論 自體PRP注射治療兔早期IDD模型的影像學及組織學評價滿意,PRP早期干預可以有效抑制IDD進程。

富血小板血漿(PRP); 椎間盤退變(IDD); 生物學治療; 兔

下腰痛是現代社會的常見病和多發病,椎間盤退變(intervertebral disc degeneration,IDD)是引起下腰痛的主要原因之一[1],目前在臨床上尚無公認的有效治療方法。近年來,IDD的分子生物學機制和治療方法開始成為研究熱點[2-3]。富血小板血漿(platelet-rich plasma,PRP)作為一種含有超生理濃度血小板的自體全血衍生物,富含多種生長因子和其他細胞因子,能促進多種類型細胞的遷移和增殖,為骨、軟骨以及肌腱、肌肉等軟組織的修復再生提供良好的微環境,近年來在骨科和整形外科領域得到了廣泛關注[4]。目前國內外有關PRP對IDD的修復作用的研究仍處于起步階段。本研究采用纖維環穿刺法建立兔IDD模型,抽取兔外周血通過高速離心制備PRP,對兔退變椎間盤進行盤內注射自體PRP干預,通過觀察影像學及組織學表現對干預效果進行評價,以期為進一步臨床應用提供實驗基礎。

材 料 和 方 法

實驗動物 健康成年新西蘭大白兔16只,雌雄不限,體質量(2.5±0.5) kg,由復旦大學實驗動物科學部提供。經X線及MRI檢查排除脊柱的先天性畸形和椎間盤病變。所有實驗動物隨機分為PRP干預組(A組)、磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)注射組(B組)、造模對照組(C組)和單純對照組(D組),每組各4只。其中A、B和C組分別按下述方法進行手術干預,D組實驗動物不加干預,只在標準條件下飼養,用于對照。

IDD模型制備 對A組、B組和C組實驗動物,采用氯胺酮0.2 g:地西泮10 mg混合后肌注麻醉,左側臥位,固定妥四肢,腰背部電動剃毛器備皮,常規消毒鋪巾。由第12肋緣至髂嵴作平行于脊柱長軸的縱切口長約8 cm,剪開腹外斜肌與背肌間隙,鈍性分離至脊柱橫突處,注意避免損傷腹膜,由于髂嵴與L6椎體大致在同一水平,可據此定位,找到相應的椎間隙,暴露L4/5、L5/6椎間盤。采用16 G穿刺針進行單次纖維環穿刺,穿刺方向為椎間盤側前方平行終板,蚊式鉗夾持穿刺針前端,控制刺入椎間盤中央深度為5 mm,維持5 s,然后拔出穿刺針。注意操作輕柔,避免將髓核帶出。生理鹽水沖洗創口后逐層縫合。所有動物分別于術前和手術結束時肌肉注射青霉素80萬U。術后佩戴伊麗莎白項圈以防止動物舔咬手術切口,置于標準條件下自由喂養。

PRP制備 A組實驗動物取耳中心動脈血約11 mL,其中0.5 mL用于鏡下血小板計數,剩余10.5 mL加入含枸櫞酸鈉的試管中搖勻用于制備PRP。根據Landesberg等[5]推薦的二次離心條件,先以200×g離心10 min,留取上層及交界面以下約1 mm處共約4.5 mL,再以200×g離心10 min,留取下層1/4約1.1 mL液體搖勻,即為PRP。取0.5 mL PRP用于鏡下血小板計數,剩余約0.6 mL PRP中加入0.06 mL凝血酶(濃度1 000 U/mL),形成凝膠狀物備用。

二次手術干預 在初次手術后2周,分別對A、B、C組實驗動物進行二次手術干預,具體方法如下。A組:暴露L4/5、L5/6椎間盤,分別注入0.1 mL自體PRP,然后逐層縫合。B組:暴露L4/5、L5/6椎間盤,分別注入0.1 mL PBS緩沖液(pH 7.4),然后逐層縫合。C組:暴露L4/5、L5/6椎間盤,不作特殊處理,然后逐層縫合。

X線檢查 在初次手術前和二次手術干預后2周,所有實驗動物攝腰椎正側位DR片。應用PACS系統分別測量相應側位片的椎間盤高度(DH)、上位椎體高度(UB)、下位椎體高度(LB),計算椎間盤高度指數(DHI)以及手術前后椎間盤高度指數百分數(disc height index percentage,%DHI,圖1)。

MRI檢查 在初次手術前和二次手術干預后2周,所有實驗動物取仰臥位,采用Siemens 1.5T超導MRI掃描儀進行矢狀位T2WI掃描,用SE序列,掃描參數為TR/TE 3500/100 ms,層厚1.5 mm,間隔0 mm。以Pfirrmann改良分級法[6]作為評估標準,根據T2WI像兔椎間盤信號強度將退變分為5級:I級,髓核結構均一、亮白,髓核纖維環界限清楚,髓核信號強度高,椎間盤高度正常;Ⅱ級,髓核結構不均,可有水平帶,髓核纖維環界限清楚,髓核信號強度高,椎間盤高度正常;Ⅲ級,髓核結構不均、灰,髓核纖維環界限不清,髓核信號強度中,椎間盤高度輕度降低;Ⅳ級,髓核結構不均、灰到黑,髓核纖維環界限丟失,髓核信號強度中到低,椎間盤高度中度降低;V級,髓核結構不均、黑,髓核纖維環界限丟失,髓核信號強度低,椎間盤高度重度降低。

圖1 X線測量和計算方法Fig 1 Measurement and calculation of X-rays

組織學檢查 在二次手術干預后2周,結束X線及MRI檢查后,經耳緣靜脈注入10 mL空氣處死實驗動物,獲取手術節段椎間盤髓核組織。常規切片,進行HE染色,觀察髓核組織形態學變化;進行Masson染色,觀察膠原纖維的變化;進行番紅O染色,觀察蛋白聚糖的變化;進行免疫組化染色,觀察Ⅱ型膠原表達情況。在HE染色和番紅O染色的基礎上,參考文獻[7]的半定量標準對髓核的病理變化進行分級:0級,正常結構;1級,細胞外基質蜂窩狀改變,無結締組織增生;2級,<24%的髓核組織被增生的結締組織替代;3級,25%～50%的髓核組織被增生的結締組織替代;4級,>50%的髓核組織被增生的結締組織替代;5級,原有正常的髓核組織全部被增生的結締組織替代。

結 果

一般情況 所有動物均順利存活至本實驗結束。未發生切口感染、積液、裂開等情況,術后2周切口愈合良好。所有動物術后雙下肢活動正常,未發生因穿刺過深導致癱瘓的情況。

PRP制備 A組所有實驗動物外周血經二次離心后可得血小板富集層,吸棄大部分上清液后即可制得PRP(圖2)。所得PRP中血小板計數P2約為外周血血小板計數P1的3.69倍(表1)。

圖2 血小板富集層(中間層)Fig 2 Platelet rich layer (the center layer)

表1 A組血小板計數Tab 1 Platelet counts in group A

1～4:Animal No.

X線檢查 通過對不同時間點兔側位X線的測量和計算發現,A組和D組相應節段椎間隙高度無明顯下降,組內各時間點%DHI差異無統計學意義(P>0.05)。B組和C組相應節段椎間隙高度隨時間推移均逐漸下降,組內各時間點%DHI差異有統計學意義(P<0.05)。在初次手術后4周(二次手術后2周)時間點,A組與B組或C組相比,%DHI差異均有統計學意義(P<0.05)。A組與D組相比,%DHI差異無統計學意義(P>0.05)。B組與C組相比,%DHI差異無統計學意義(P>0.05)。B組或C組與D組相比,%DHI差異均有統計學意義(P<0.05,表2)。

表2 不同時間點X線檢查所示的%DHITab 2 %DHI indicated by X-rays at different time points

T1:Before the 1stoperation; T2:4 weeks after the 1stoperation.Data were compared between the same colum respectively.(1)vs.T1,P<0.05;(2)vs.group A,P<0.05;(3)vs.group D,P<0.05.

MRI檢查 通過對不同時間點兔矢狀位T2WI MRI影像的觀察發現,B組和C組相應節段椎間盤髓核信號強度在術后呈現逐漸降低趨勢,髓核面積逐漸縮小,椎間隙高度也逐步下降。A組和D組相應節段椎間盤髓核信號強度、髓核面積以及椎間隙高度的變化不明顯(圖3)。

根據Pfirrmann改良分級法進行IDD分級。A組和D組內各時間點差異無統計學意義(P>0.05);B組和C組組內各時間點差異有統計學意義(P<0.05)。在初次手術后4周(即二次手術后2周),A組與B組或C組相比,差異均有統計學意義(P<0.05);A組與D組相比,差異無統計學意義(P>0.05);B組與C組相比,差異無統計學意義(P>0.05);B組或C組與D組相比,差異均有統計學意義(P<0.05,表3)。

組織學檢查 通過對兔椎間盤的HE染色檢查發現,隨著時間的推移,B組和C組的椎間盤組織表現為髓核軟骨細胞退行性變、壞死,形態不規則,分布不均勻;Masson染色顯示軟骨基質逐步被纖維束取代;番紅O染色可見蛋白聚糖減少;而Ⅱ型膠原免疫組化染色則提示Ⅱ型膠原減少。A組的椎間盤組織形態與D組相比變化不明顯(圖4～7)。

圖3 不同時間點兔腰椎MRI圖像Fig 3 MR images of rabbit lumbar at different time points

表3 不同時間點MRI的IDD分級Tab 3 IDD grades of MR images at different time points (n)

圖4 初次手術后4周兔椎間盤組織的HE染色(×100)Fig 4 HE staining of rabbit intervertebral discs 4 weeks after the 1st operation (×100)

圖5 初次手術后4周兔椎間盤組織的Masson染色(×100)Fig 5 Masson staining of rabbit intervertebral discs 4 weeks after the 1st operation (×100)

圖6 初次手術后4周兔椎間盤組織的safranin O染色(×100)Fig 6 Safranin O staining of rabbit intervertebral discs 4 weeks after the 1st operation (×100)

圖7 初次手術后4周兔椎間盤組織的IHC染色(×100)Fig 7 IHC staining of rabbit intervertebral discs 4 weeks after the 1st operation (×100)

根據半定量評估標準進行IDD分級,在初次手術后4周(二次手術后2周)的時間點,A組與B組或C組相比,差異均有統計學意義(P<0.05);A組與D組相比,差異無統計學意義(P>0.05);B組與C組相比,差異無統計學意義(P>0.05);B組或C組與D組相比,差異均有統計學意義(P<0.05,表4)。

表4 術后4周組織學(HE染色)的IDD分級Tab 4 IDD grades of pathology (HE staining) at the time points of 4 weeks after the 1st operation (n)

The pathological changes of nucleus pulposus were graded according to the semiquantitative criterion from the literature[7]

討 論

IDD動物模型的建立與評價方法 建立簡單、經濟、可靠、重復性好的動物模型。以提供良好的實驗載體,對有關IDD的發病機制和修復策略的研究具有重要意義。雖然已有報道的用于建立IDD模型的實驗動物有十余種,但由于倫理和經濟因素等條件限制,靈長類、豬、犬等大型哺乳動物難以大量應用,故目前仍多以兔和大鼠作為構建IDD模型的常規實驗動物。兔相對大鼠具有更能耐受手術創傷、更易獲取椎間盤及分離髓核組織等優點,是用于構建IDD模型較為實用、可行的動物。通過外科手術方法損傷纖維環引發IDD是一種廣泛應用的建模方法。傳統的采用刀片直接損傷纖維環的方法可以較快引起椎間盤退變,但該方法不易控制損傷程度,所誘導的椎間盤退變過程往往周期短、進展快、可重復性差。近年來,Masuda等[8]提出使用普通針頭穿刺纖維環的方法建立兔IDD模型,具有操作簡便、實驗周期短、成功率高等優點,使用較為廣泛。通過穿刺可以直接損傷纖維環,從而降低了椎間盤內的靜水壓,繼而引起蛋白聚糖及膠原成分的改變,使得椎間盤的載負能力下降,退變進行性加重,能比較真實地模擬人類IDD的過程。我們已通過以往的實驗證實,采用纖維環穿刺法能成功建立IDD模型[9]。

X線能夠提供椎間盤高度降低、骨贅形成及椎間盤鈣化等病變信息,DHI是椎間盤前部、中部、后部三者高度的均數除以相鄰椎體高度均數的結果[8],是定量分析IDD程度的重要指標。MRI能夠提供清晰的椎間盤圖像,對評估IDD非常有價值。IDD的變化反映在MRI上變現為,代表含水量的T2信號強度減弱并有椎間隙狹窄[10]。組織學方面,HE染色能夠清晰顯示各層組織結構;Masson染色可使膠原纖維呈現藍色,能良好顯示膠原纖維的變化;番紅O染色主要反映蛋白聚糖含量及分布情況;通過免疫組織化學染色的觀察,則可以了解Ⅱ型膠原的變化情況。正常椎間盤髓核主要由脊索細胞和軟骨樣細胞構成;纖維環內層主要為軟骨樣細胞,外層則為纖維樣細胞。脊索細胞在維持椎間盤的完整性和基質的穩定性方面發揮至關重要的作用。IDD早期出現脊索細胞的減少,此時軟骨樣細胞增殖試圖修復因脊索細胞減少引起的退變,這種修復進程一旦失敗,則隨著退變的進展,基質和軟骨樣細胞也逐漸減少;到了IDD晚期,髓核被纖維軟骨替代并伴有周圍廣泛的骨贅形成[11]。

IDD的分子機制與生物學治療策略 IDD的分子機制十分復雜,涉及到基因變異、細胞衰老、細胞外基質改變、降解酶生成增加、促炎因子表達、細胞凋亡、神經內生長等多個方面[2,12]。基因變異作為IDD的危險因素已得到廣泛證實,目前已發現了部分可能與IDD進程相關的基因類型。通過對衰老相關酶的研究和對端粒長度的測量,發現在退變的椎間盤中細胞會加速衰老,壓力誘導性早發衰老(stress-induced premature senescence,SIPS)可能是加速細胞衰老的原因。在退變的椎間盤中,最初Ⅱ型膠原合成會出現短暫代償性上升,隨后Ⅱ型膠原和Ⅸ型膠原的合成速度都會加速下降?；|合成下降伴隨著膠原交聯的減少,進而影響髓核結構的完整性。反之,Ⅰ型和Ⅹ型膠原的表達增加,導致髓核纖維化,髓核和纖維環分界不清。隨著IDD進展,可能在細胞外基質的產生和修復過程中發揮作用的多種蛋白聚糖的表達也出現下降。細胞外基質生成減少與退變的椎間盤細胞中降解酶生成增加有關。基質金屬蛋白酶(matrix metalloproteinase,MMP)家族不僅直接減少基質生成,還通過激活其他潛在酶間接引起IDD。帶有血小板凝血酶敏感蛋白樣模體的解整鏈蛋白金屬蛋白酶家族在正常椎間盤中表達,在退變椎間盤中表達增加,提示其可能具有穩定活性,正常狀態下維持基質代謝,在退變椎間盤中加速基質降解。促炎因子通過刺激椎間盤細胞產生炎性介質,從而在IDD進程中間接發揮作用。白細胞介素(interleukin,IL)-1是在椎間盤中表達的典型炎癥因子。在正常椎間盤中,IL-1的激活受體IL-1RI和抑制受體IL-1Ra處于平衡狀態,而在退變椎間盤中,平衡狀態被打破,產生抑制細胞外基質生成、促進降解酶生成、建立正反饋促進炎癥因子生成、間接啟動細胞凋亡等作用。腫瘤壞死因子α(tissue necrosis factor-alpha,TNF-α)在退變椎間盤中的表達增加,其對代謝通路的影響方式與IL-1有相似之處,但引起疼痛的作用更加突出。正常代謝狀態下椎間盤細胞結構的衰退,一定程度上是由細胞凋亡或稱程序性細胞死亡(programmed cell death,PCD)引起的。在退變的椎間盤中,進入PCD的細胞比率明顯升高,這可能是繼發于多種機械因素或者生化因素的刺激。正常的椎間盤內無神經血管生長,而在退變的椎間盤中,可見神經血管沿著外層纖維環的裂隙向內生長,這些游離的神經末梢可通過釋放神經遞質P介導疼痛。正是基于對IDD分子機制認識的不斷深入,國內外學者陸續提出了椎間盤細胞移植、干細胞移植、疼痛椎間盤去神經支配、注射治療蛋白、基因治療等生物學策略,但此類方法目前大多仍處于起步階段[2]。

PRP修復IDD的機制與優點 近年來,有關PRP在骨、軟骨、肌肉、肌腱等組織再生過程中的作用得到廣泛關注,使其成為骨科、整形外科等領域的研究熱點[4]。目前國內外有關PRP對IDD修復作用的研究仍局限于細胞試驗和小型動物實驗。Akeda等[13]經體外實驗研究PRP對豬椎間盤細胞的蛋白聚糖和膠原合成的影響,發現PRP能有效地刺激細胞增殖和細胞外基質代謝,其對外層纖維環細胞的作用比對髓核細胞更明顯。Nagae等[14]和Sawamura等[15]針對PRP對IDD的修復作用,應用部分髓核摘除的兔IDD模型進行體內實驗,結果顯示,單純PRP可抑制椎間盤的進行性退變,而PRP結合明膠凝膠微球則可顯著抑制IDD,與對照組相比,MRI影像可見椎間盤高度顯著增加,組織學檢查可見蛋白聚糖核心蛋白以及Ⅱ型膠原蛋白表達均增加。考慮到髓核摘除建立IDD模型的損傷程度嚴重,因此需要明膠凝膠微球作為PRP的載體,以延長作用時間、提供力學支持,充分發揮其治療作用。

PRP修復IDD的具體機制目前尚未明確,可能與其包含的多種生長因子和其他細胞因子調控細胞功能、改善組織微環境、促進修復再生有關。PRP含有轉化生長因子(TGF-β1和β2)、血小板源性生長因子(PDGF-AA、-AB和-BB)、血管內皮生長因子(VEGF A和C)、胰島素樣生長因子(IGF-1)和表皮生長因子(EGF)等在內的多種生長因子[4]。Chen等[16]研究表明,補充TGF-β1,尤其是劑量達到30 ng/mL時,能顯著提高椎間盤髓核細胞生存能力、促進細胞增殖。Chen等[17]認為,TGF-β1介導的細胞通路可以特異性的激活磷酸化Smad2/3蛋白,上調包括Sox9、Ⅱ型膠原和蛋白聚糖在內的促軟骨形成基因的表達,而PRP對Smad2/3蛋白磷酸化的激活作用比單純的TGF-β1更強。Konttinen等[18]認為TGF-β和EGF具有較強的促增殖作用,而在退變的椎間盤中未能檢測到TGF-β和EGF的表達,提示EGF在抑制IDD進程中可能發揮作用。Gruber等[19]研究證實,50～500 ng/mL的IGF-1或100 ng/mL的PDGF都能顯著減少椎間盤內凋亡細胞的比例。由此可見,PRP對IDD的修復作用可能是多種生長因子共同參與的結果。

本實驗采用纖維環穿刺法建立IDD模型,與Nagae等[14]和Sawamura等[15]采用髓核摘除建模的研究相比,損傷程度較輕。影像學檢查的結果表明,PBS注射組和對照組的椎間盤高度均進行性下降,椎間盤信號強度不斷減弱,符合IDD的過程;而PRP干預組的椎間盤高度和信號強度改變不明顯,提示該組實驗兔的IDD受到抑制。組織學檢查的結果顯示,隨著時間的推移,PBS注射組和對照組的實驗椎間盤組織病理學表現為髓核軟骨細胞退行性變、壞死,形態不規則,分布不均勻,蛋白聚糖及Ⅱ型膠原減少,軟骨基質逐步被纖維束取代;而PRP干預組的椎間盤組織形態未發生顯著變化,蛋白聚糖及Ⅱ型膠原表達較PBS注射組和對照組明顯增加,說明PRP早期干預可以抑制IDD進程。

本研究的局限性在于,從穿刺建立IDD模型到進行PRP注射干預的時間相對較短,雖然治療效果滿意,但對于晚期嚴重退變的椎間盤,單純應用PRP是否具有較好的治療作用還需研究。Obata等[20]報道了一項類似實驗,與本研究選擇注射干預后2周進行MRI檢查不同的是,作者選取了注射干預后8周的時間點再進行MRI檢查,結果顯示雖然PRP干預組的椎間盤信號強度仍高于對照組,但差異無統計學意義。由此可見,單次注射PRP干預IDD是否具有持續的治療效果,目前尚不明確。另外,雖然影像學和組織學檢查提示,PRP早期干預可顯著抑制IDD,但其對椎間盤源性腰腿痛是否具有緩解作用尚不明確。同時,PRP發揮作用的具體機制也有待進一步闡明。

綜上所述,自體PRP椎間盤內注射治療早期IDD的影像學及組織學評價滿意,與對照組相比,經PRP干預后椎間盤高度和信號強度明顯恢復,蛋白聚糖及Ⅱ型膠原表達明顯增加,椎間盤組織形態接近正常椎間盤,說明PRP干預可以有效抑制早期IDD進程。

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Interentional effect of platelet-rich plasma (PRP) on a rabbit model of early-stage intervertebral disc degeneration (IDD)

GUI Ke-ke1, YU Yong-lin2△, REN Wei-min3, LI Xin4, DONG Jia-chun1, YIN Wang-ping1

(1DepartmentofOrthopaedics,3DepartmentofPathology,4DepartmentofRadiology,JinshanHospital,FudanUniversity,Shanghai201508,China;2DepartmentofOrthopaedics,HuashanHospital,FudanUniversity,Shanghai200040,China)

Objective To evaluate imaging and histological outcomes of a new approach for repair of degenerative intervertebral discs in rabbit models by annular puncture injection of autologous platelet-rich plasma (PRP) into the discs. Methods Sixteen healthy adult New Zealand white rabbits were randomly divided into 4 groups:group A,PRP intervention group (n=4); group B,phosphate buffered saline (PBS) injection group (n=4); group C,modeling group (n=4); group D,control group (n=4).Rabbits in A,B and C group were treated by intervertebral disc degeneration (IDD) models L4/5 and L5/6 by annular puncture.The intervention was repeated two weeks later.The animals in group A were administered PRP prepared from the arterial blood of rabbit ears according to a method developed by Landesberg.Next,0.1 mL PRP was injected into the discs according to models L4/5 and L5/6.Animals in group B were additionally injected with 0.1mL PBS into the same intervertebral spaces,while no further steps were taken for animals in group C.Two weeks after the second intervention,X-ray and magnetic resonance imaging (MRI) were performed.The animals were then euthanized and experimental disc tissues were removed.HE staining,Masson′s trichrome,Safranin O staining,and immunohistochemical staining of type Ⅱ collagen were performed to demonstrate the histological changes. Results All animals survived to the end of the experiment.The platelet count of PRP was approximately 3.69 times as much as that of peripheral blood.Over time,intervertebral space heights and disc signals decreased in group B and C,the differences of disc height index percentage (%DHI) and IDD classification of MRI between each time points were statistically significant (P<0.05).In group A and D,intervertebral space heights and disc signals had no significant changes,while at the time point of 4 weeks after first operation,the differences were statistically significant compared with group B and C (P<0.05).In group B and C,degeneration,necrosis,irregular,and uneven distribution of chondrocytes in the nucleus pulposus could be watched,cartilage matrix was gradually replaced by fiber bundles,proteoglycans and type Ⅱ collagen decreased.In group A and D,disc tissue morphology had no significant changes,while at the time point of 4 weeks after the first operation,the differences were statistically significant compared with group B and C (P<0.05). Conclusions The imaging and histological effects of autologous PRP injection on rabbit models of early-stage IDD are satisfactory.Early PRP intervention may effectively inhibit the progress of IDD.

platelet-rich plasma (PRP); intervertebral disc degeneration (IDD); biological therapy; rabbit

R 681.5

A

10.3969/j.issn.1672-8467.2015.02.010

2013-12-24;編輯:段佳)

上海市金山區科技創新基金(2012-03-05)

△Corresponding author E-mail:yuyonglin@fudan.edu.cn

*This work was supported by the Scientific and Technical Innovation Foundation of Science and Technology Commission of Jinshan District,Shanghai (2012-03-05).