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干擾乳酸脫氫酶A表達對肝癌HepG2細胞增殖與遷移的影響

2015-11-21 02:03:52司素華熊二夢杜鳳儀彭琬昕龔愛華
江蘇大學學報(醫(yī)學版) 2015年6期
關(guān)鍵詞:肝癌

司素華,熊二夢,杜鳳儀,彭琬昕,龔愛華

(1.如皋市中醫(yī)院檢驗科,江蘇如皋226500;2.江蘇大學醫(yī)學院,江蘇鎮(zhèn)江212013)

干擾乳酸脫氫酶A表達對肝癌HepG2細胞增殖與遷移的影響

司素華1,熊二夢2,杜鳳儀2,彭琬昕2,龔愛華2

(1.如皋市中醫(yī)院檢驗科,江蘇如皋226500;2.江蘇大學醫(yī)學院,江蘇鎮(zhèn)江212013)

目的:觀察靶向乳酸脫氫酶A(1actate dehydrogenase-A,LDHA)的短發(fā)夾RNA(short hairpin RNA,shRNA)對肝癌HepG2細胞系的干擾效率及其對細胞增殖與遷移的影響。方法:設(shè)計合成LDHA及對照eGFP shRNA序列,克隆至真核表達質(zhì)粒pLKO.1-TRC,質(zhì)粒抽提純化后測序鑒定。重組質(zhì)粒用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染肝癌細胞系,采用反轉(zhuǎn)錄(RT)-PCR和免疫印跡檢測LDHA的表達,驗證shRNA的干擾效率。采用CCK-8和克隆形成實驗檢測干擾LDHA后細胞增殖的變化,劃痕實驗檢測干擾LDHA對細胞遷移的影響。結(jié)果:成功構(gòu)建針對LDHA和對照eGFP的shRNA表達質(zhì)粒。與轉(zhuǎn)染sh-eGFP組相比,轉(zhuǎn)染sh-LDHA組HepG2細胞中LDHA mRNA和蛋白表達水平明顯降低(P均<0.05)。與sh-eGFP組相比,sh-LDHA組72,96 h細胞增殖明顯降低,克隆形成數(shù)減少,細胞遷移距離短(P均<0.05)。結(jié)論:LDHA的干擾質(zhì)粒能有效干擾LDHA在肝癌HepG2細胞中的表達,明顯抑制HepG2細胞的增殖活力和遷移能力。

肝細胞肝癌;乳酸脫氫酶A;RNA干擾

肝細胞肝癌簡稱肝癌,在世界致死性腫瘤中位居第三,每年死亡人數(shù)約70萬[1]。由于肝癌患者確診晚、伴有肝病和缺乏有效的治療方式,只有30%~40%患者適合治療[2]。瓦伯格效應(Warburg Effect)是指癌細胞生長很快,使得細胞經(jīng)常處于一種缺氧狀態(tài),于是癌細胞就關(guān)閉了線粒體的有氧氧化,通過葡萄糖無氧酵解提供能量的現(xiàn)象。腫瘤細胞依賴糖酵解產(chǎn)生ATP,抑制糖酵解干擾能量代謝治療腫瘤成為可能[3]。瓦伯格效應的最后一步是丙酮酸經(jīng)乳酸脫氫酶A(1actate dehydrogenase-A,LDHA)催化轉(zhuǎn)變?yōu)槿樗帷Q芯勘砻鱈DHA在胰腺癌、胃癌等多種腫瘤中異常表達,與腫瘤發(fā)生、進展有關(guān)[4]。但LDHA在肝癌細胞中的作用尚不清楚。本研究旨在探討干擾人肝癌HepG2細胞中LDHA的表達后細胞增殖與遷移的變化。

1 材料與方法

1.1 材料

人肝癌HepG2細胞株購自中國科學院上海細胞庫;pLKO.1-TRC環(huán)形質(zhì)粒(美國Addgene公司);DMEM及胎牛血清(美國Gibco公司);LipofectamineTM2000和Stb13感受態(tài)細胞(美國Invitrogen公司);細胞計數(shù)試劑盒,簡稱CCK-8(美國Sigma公司);內(nèi)切酶AgeⅠ、EcoRⅠ和T4連接酶(美國Neb公司);總RNA抽提用Trizo1、RNA反轉(zhuǎn)錄試劑盒、PCR試劑盒及膠回收試劑盒(日本TaKaRa公司);質(zhì)粒大提及小提試劑盒(美國Omega公司);鼠抗人α-微管蛋白抗體、兔抗人LDHA抗體、辣根過氧化物酶標記的羊抗鼠和羊抗人二抗(美國Biowor1d公司);引物及測序由上海生工生物公司完成。

1.2 細胞培養(yǎng)及質(zhì)粒的瞬時轉(zhuǎn)染

人肝癌細胞HepG2接種于含10%胎牛血清的DMEM中,37℃、5%CO2飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。傳代24 h后按照LipofectamineTM2000推薦的操作步驟轉(zhuǎn)染質(zhì)粒。細胞轉(zhuǎn)染24 h后用0.25%胰酶消化,制成單細胞懸液用于后續(xù)實驗。

1.3 干擾質(zhì)粒構(gòu)建

登錄www.broad.mit.edu/genome_bio/trc/rnai. htm1網(wǎng)站搜索與pLKO.1質(zhì)粒相兼容的LDHA shRNA序列,上游序列:5′-CCGGGCCTGTGCCATCAGTATCTTACTCGAGTAAGATACTGATGGCACAGGCTTTTTG-3′,下游序列:5′-AATTCAAAAAGCCTGTGCCATCAGTATCTTACTCGAGTAAGATACTGATGGCACAGGC-3′;對照eGFP shRNA上游序列:5′-CCGGTACAACAGCCACAACGTCTATCTCGAGATAGACGTTGTGGCTGTTGTATTTTTG-3′,下游序列:5′-AATTCAAAAATACAACAGCCACAACGTCTATCTCGAGATAGACGTTGTGGCTGTTGTA-3′,由上海生工合成,按Moffat等[5]報道的方法構(gòu)建sh-RNA表達載體,構(gòu)建好的載體經(jīng)測序確認。

1.4 反轉(zhuǎn)錄(RT)-PCR

在轉(zhuǎn)染后48 h Trizo1法提取轉(zhuǎn)染細胞總RNA, RT-PCR檢測各組細胞LDHA mRNA的表達,灰度值分析LDHA的干擾效率。LDHA的上游引物為5′-CCAACATGGCAGCCTTTTCC-3′,下游引物為5′-TCACGTTACGCTGGACCAAA-3′,擴增產(chǎn)物片段為149 bp;GAPDH的上游引物為5′-CTCTGCTCCTCCTGTTCGAC-3′,下游引物為5′-GCGCCCAATACGACCAAATC-3′,擴增產(chǎn)物片段為121 bp;PCR反應條件為94℃預變性2 min,然后進入以下28個循環(huán):94℃變性30 s,60℃退火30 s,72℃延伸30 s。循環(huán)完畢,72℃延伸5 min。取5 μL擴增產(chǎn)物在2%瓊脂糖凝膠中電泳。SmartGe1凝膠成像分析系統(tǒng)成像,Lane 1D Ver 4.0軟件進行半定量分析。

1.5 免疫印跡檢測蛋白表達

質(zhì)粒轉(zhuǎn)染72 h后提取蛋白,行10%SDSPAGE,轉(zhuǎn)膜,封閉,洗膜。4℃孵育一抗過夜,LDHA抗體按1∶1 000稀釋,α-微管蛋白抗體(內(nèi)參)按1∶10 000稀釋,二抗1∶10 000稀釋,室溫孵育1 h,用化學發(fā)光試劑顯示陽性條帶,圖像分析,每組實驗重復3次。

1.6 CCK-8實驗

將細胞以1 000個/孔接種于96孔培養(yǎng)板(100 μL/孔),每組6孔,于培養(yǎng)箱培養(yǎng)。于24、48、72、96 h,每孔分別加10 μL CCK-8溶液,培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)2 h后,酶標儀于450 nm波長檢測每孔光密度(D)值,記錄結(jié)果,繪制生長曲線。

1.7 克隆形成實驗

細胞以500個/孔接種于6孔板中常規(guī)培養(yǎng),連續(xù)培養(yǎng)14 d,經(jīng)固定、結(jié)晶紫染色后,在顯微鏡下計數(shù),記錄含有50個細胞以上的克隆數(shù)量。

1.8 劃痕實驗

細胞以50 000個/孔接種于24孔板中,待接近形成細胞單層時,用10 μL槍頭在24孔板內(nèi)均勻劃直線,PBS洗滌3次;加入含1%胎牛血清的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)48 h,分別測量0 h和48 h劃痕寬度,平均遷移距離=(0 h劃痕寬度-48 h劃痕寬度)/2。

1.9 統(tǒng)計學處理

應用SPSS 19.0軟件進行統(tǒng)計學分析。計量數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準差(±s)表示,兩組間比較采用t檢驗;P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

2 結(jié)果

2.1 重組sh-LDHA和sh-eGFP質(zhì)粒

構(gòu)建好的干擾質(zhì)粒sh-LDHA和對照質(zhì)粒sheGFP經(jīng)測序確認,與設(shè)計完全相符。

2.2 轉(zhuǎn)染干擾質(zhì)粒后LDHA mRNA和蛋白表達

結(jié)果見圖1和圖2,與sh-eGFP組細胞相比,sh-LDHA組LDHA mRNA表達水平明顯降低,下降了76.6%(t=6.045,P<0.05);蛋白表達水平也明顯降低,下降了82.6%(t=7.007,P<0.05)。由此表明,LDHA干擾效果明顯。

圖1 RT-PCR檢測LDHA mRNA的表達

圖2 蛋白質(zhì)印跡檢測LDHA蛋白的表達

2.3 干擾LDHA后細胞增殖活力和克隆形成能力的改變

如圖3所示,干擾HepG2細胞中LDHA的表達,與sh-eGFP組相比,sh-LDHA組細胞增殖逐漸減慢,轉(zhuǎn)染72 h后兩組D值差異有統(tǒng)計學意義(t= 5.840,P<0.05),96 h時sh-LDHA組細胞增殖活力受到明顯抑制,抑制率為64.5%。

圖3 兩組HepG2細胞的增殖能力比較

克隆形成實驗結(jié)果顯示(圖4),sh-eGFP組克隆數(shù)為(429.3±19.8),而sh-LDHA組克隆數(shù)為(204.0±10.4),差異有統(tǒng)計學意義(t=18.557,P<0.05),表明干擾LDHA可以明顯抑制肝癌細胞增殖。

圖4 兩組HepG2細胞克隆形成的比較

2.4 下調(diào)LDHA表達對細胞遷移能力的影響

劃痕實驗結(jié)果見圖5,sh-eGFP組平均遷移距離是(211.3±17.1)μm,而sh-LDHA組平均遷移距離是(83.7±4.9)μm,差異具有統(tǒng)計學意義(t=6. 026,P<0.05),由此表明,干擾LDHA能明顯抑制HepG2細胞的遷移能力。

圖5 兩組HepG2遷移能力的比較

3 討論

LDHA是糖酵解途徑中將丙酮酸轉(zhuǎn)化為乳酸的關(guān)鍵酶,是糖酵解途徑的關(guān)鍵檢驗點,高表達于多種類型的腫瘤,包括淋巴瘤、前列腺癌、腎細胞癌、胰腺癌和黑色素瘤等。LDHA的表達與腫瘤的增殖、維持與侵襲轉(zhuǎn)移密切相關(guān)。在小鼠模型的研究中已經(jīng)表明,腫瘤細胞依賴于LDHA而正常組織細胞依賴于氧化磷酸化,敲除LDHA的小鼠癌旁細胞增殖速率約是癌細胞的100倍,而過表達LDHA則可逆轉(zhuǎn)該增殖抑制[10]。另外,Xie等[11]研究表明LDHA在肺癌A549細胞侵襲轉(zhuǎn)移中起重要作用。因此,抑制LDHA的表達可能限制腫瘤的能量供應,從而抑制腫瘤細胞的增殖和侵襲轉(zhuǎn)移能力。肝癌是發(fā)展迅速的實體瘤,腫瘤中存在大片的缺氧區(qū)域,同時患者血漿中乳酸活性較健康人異常增強,提示肝癌細胞存在糖酵解活性增強的現(xiàn)象。本研究結(jié)果顯示,降低LDHA的表達可明顯抑制肝癌細胞HepG2的增殖與轉(zhuǎn)移能力,與Rong等[4]報道在胰腺癌中下調(diào)LDHA表達可抑制腫瘤增殖活力與轉(zhuǎn)移一致。LDHA遺傳缺陷患者只有在劇烈運動后才會出現(xiàn)肌紅蛋白尿癥[10],因此,在正常情況下抑制LDHA的表達可能不會出現(xiàn)嚴重不良反應,LDHA有望成為癌癥治療的靶點。

綜上,本研究結(jié)果顯示干擾LDHA后肝癌細胞HepG2的增殖活力及轉(zhuǎn)移能力受到了明顯的抑制,但其作用機制尚需進一步研究。

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Effects of LDHA knockdown on proliferation and migration of HepG2 cells by RNA interference

SI Su-hua1,XI0NG Er-meng2,DU Feng-yi2,PENG Wan-xin2,G0NG Ai-hua2
(1.Department of Laboratory Medicine,Rugao Hospita1 of Traditiona1 Chinese Medicine,Rugao Jiangsu 226500;2.Medica1 Co11ege of Jiangsu University,ZhenJiang Jiangsu 212013,China)

Objective:To exp1ore the pro1iferation and migration effects of 1actate dehydrogenase-A(LDHA)short hairpin RNA(shRNA)on hepatoce11u1ar carcinoma HepG2 ce11s.Methods:LDHA and eGFP shRNA sequences were designed and inserted into pLKO.1-TRC p1asmid.HepG2 ce11s were transfected with the recombinant p1asmids that were identified by sequencing.Reverse transcription(RT)-PCR and Western b1otting were used to eva1uate the si1encing effect,CCK-8 experiment and c1one formation assay for pro1iferation,wound hea1ing assay for migration.Results:In HepG2 ce11s,LDHA shRNA significant1y reduced the expression of LDHA,the efficiency of si1encing were 76.6%and 82.6%on the transcription of LDHA gene and the expression of LDHA protein respective1y.Compared with the sh-eGFP group,sh-LDHA group showed decresed ce11uar vitab1it1y,1ower 1eve1s of the formed c1ones,shorter migration distance(both P<0.05).Conclusion:LDHA shRNA was successfu11y constructed and cou1d effective1y knockdown target gene in HepG2 ce11s.Inhibition of LDHA expression evident1y resu1ted in inhibition of HepG2 pro1iferation and migration.

hepatoce11u1ar carcinoma;1actate dehydrogenase-A;RNA interference

R735.7

A

1671-7783(2015)06-0487-04

10.13312/j.issn.1671-7783.y150180

2015-08-14 [編輯]劉星星

司素華(1979—),男,江蘇如皋人,主管檢驗師,主要從事腫瘤細胞生物學的研究。

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