999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

骨髓單個(gè)核細(xì)胞與骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞促進(jìn)大鼠皮瓣存活率的比較

2015-11-26 07:49:51許鵬唐鄭雅陸陽(yáng)周廣東劉偉曹誼林張文杰
組織工程與重建外科雜志 2015年2期
關(guān)鍵詞:劑量

許鵬唐 鄭雅 陸陽(yáng) 周廣東 劉偉 曹誼林 張文杰

骨髓單個(gè)核細(xì)胞與骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞促進(jìn)大鼠皮瓣存活率的比較

許鵬唐 鄭雅 陸陽(yáng) 周廣東 劉偉 曹誼林 張文杰

目的比較來(lái)源于等量骨髓的單個(gè)核細(xì)胞與經(jīng)擴(kuò)增的間充質(zhì)干細(xì)胞,促進(jìn)大鼠隨意皮瓣成活率的效果。方法取等質(zhì)等量的大鼠骨髓,一半直接離心獲得骨髓單個(gè)核細(xì)胞,一半經(jīng)體外培養(yǎng)獲得骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞,注射相等數(shù)量(n=6)的大鼠隨意皮瓣。術(shù)后測(cè)量并計(jì)算皮瓣成活面積,取材,行組織學(xué)檢測(cè),計(jì)數(shù)CD31陽(yáng)性血管數(shù)量。結(jié)果未經(jīng)培養(yǎng)的骨髓單個(gè)核細(xì)胞組皮瓣的平均存活率為(71.6±8.4)%,培養(yǎng)的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞組平均存活率為(66.2±3.1)%,這兩組存活率均顯著高于注射平衡液的對(duì)照組(55.9±3.4)%;注射細(xì)胞組之間平均存活率沒(méi)有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。組織學(xué)血管密度計(jì)數(shù)顯示,骨髓單個(gè)核細(xì)胞組和骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞組的微血管數(shù)量分別是(58.2±6.8)和(42.7±5.1),都顯著高于PBS對(duì)照組(22.8±3.1),而骨髓單個(gè)核細(xì)胞組也顯著高于骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞組。結(jié)論與不經(jīng)培養(yǎng)的骨髓單個(gè)核細(xì)胞相比,通過(guò)體外擴(kuò)增的骨髓間充質(zhì)細(xì)胞,未能顯著提高大鼠隨意皮瓣的成活率。

隨意皮瓣細(xì)胞治療骨髓單個(gè)核細(xì)胞骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞

doi∶10.3969/j.issn.1673-0364.2015.02.011

隨意皮瓣的游離端易壞死,因此在使用中其長(zhǎng)寬比例收到限制,一般為1.5∶1~2∶1。應(yīng)用交感神經(jīng)藥物、鈣通道阻滯劑、血管擴(kuò)張藥物等,可以改善皮瓣的壞死情況[1-2],但是全身高劑量應(yīng)用這些藥物會(huì)帶來(lái)很多副作用。研究證實(shí),血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF)、堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(b-FGF)、轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β(TGF-β)等生長(zhǎng)因子,可以改善皮瓣的壞死情況[3-5],但應(yīng)用受到短暫半衰期的限制。

近年來(lái),在組織再生與修復(fù)重建領(lǐng)域,干細(xì)胞的應(yīng)用受到了廣泛關(guān)注。通過(guò)離心骨髓獲得的骨髓單個(gè)核細(xì)胞(BM-MNCs)和通過(guò)體外培養(yǎng)獲得的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSCs),都被證明可以促進(jìn)皮瓣的成活[6-7]。理想的狀態(tài)是抽取少量的骨髓,在不丟失干細(xì)胞干性的前提下,通過(guò)體外培養(yǎng)獲得大量的BMSCs來(lái)滿足臨床應(yīng)用的需要。但是,隨著體外培養(yǎng)代次的增加,細(xì)胞的表型和功能都會(huì)有所改變。因此,我們比較來(lái)源于等質(zhì)等量骨髓的BM-MNCs和BMSCs對(duì)大鼠隨意皮瓣成活率的促進(jìn)作用。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物、試劑及儀器

Wistar雄性大鼠若干,由上海西普爾-必凱公司提供,依照實(shí)驗(yàn)動(dòng)物保護(hù)指南,所有動(dòng)物都獲得人道主義對(duì)待。

胎牛血清(HyClone公司,美國(guó));低糖DMEM(Invitrogen公司,美國(guó));Ficoll液(Sigma公司,美國(guó));胰蛋白酶(Sigma公司,美國(guó));FITC或PE標(biāo)記的抗大鼠CD29、CD90、CD45抗體(BD公司,美國(guó));抗大鼠CD14、CD133、CD144、CD31、CD34、KDR一抗和FITC或PE標(biāo)記的相應(yīng)二抗(Abcam公司,英國(guó));攜辣根過(guò)氧化物酶的羊抗小鼠二抗(Abcam公司,英國(guó));DAB顯色劑(Dako公司,丹麥);石蠟切片機(jī)(Thermo公司,美國(guó));流式細(xì)胞儀(BD公司,美國(guó))。

1.2 BM-MNCs的分離

BM-MNCs的分離方法參照文獻(xiàn)[7]。頸椎脫臼法處死3周大的Wistar雄性大鼠,75%乙醇浸泡消毒10 min,取下雙側(cè)股骨和脛骨,剪開(kāi)長(zhǎng)骨的兩端,注射器吹出骨髓腔中的骨髓,重懸在含10%胎牛血清的低糖DMEM中。10m L骨髓重懸液加入到3m L的Ficoll液上,密度梯度離心后,分4層,抽取第2層“云霧狀”的細(xì)胞層,重懸在PBS中備用。

1.3 BMSCs的分離及培養(yǎng)

骨髓獲取方法同上。分離及培養(yǎng)方法參照文獻(xiàn)[8]。骨髓重懸液按照1只大鼠的骨髓量接種1個(gè)10 cm培養(yǎng)皿,放置在含5%CO2、37℃的恒溫培養(yǎng)箱中。2~3 d換液一次,去掉不貼壁的血液細(xì)胞,6~7 d待細(xì)胞長(zhǎng)滿90%左右傳代。之后3~4 d用0.25%胰蛋白酶消化傳代,傳代至第4代,重懸于PBS中備用。

1.4 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)BM-MNCs和BMSCs的表型

收集新鮮分離的BM-MNCs和第4代的BMSCs,配置含4%胎牛血清的PBS緩沖液。200μL緩沖液重懸5×105個(gè)細(xì)胞,加入到EP管中并作標(biāo)記。每個(gè)EP管中分別加入1μL FITC結(jié)合的抗CD29抗體和抗CD90抗體,1μL PE結(jié)合的抗CD45抗體,1μL抗CD14、抗CD133、抗CD144、抗KDR、抗CD31、抗CD34的一抗,4℃條件下孵育30min,期間每10 min搖晃一次。孵育后,PBS緩沖液清洗3次,加入FITC或PE標(biāo)記的相應(yīng)的二抗繼續(xù)在4℃條件下孵育30min,孵育后,PBS緩沖液清洗3次。所有標(biāo)記好的樣本重懸成100μL,待上機(jī)。

1.5 隨意皮瓣模型的建立和細(xì)胞移植

選取體質(zhì)量為200~250 g的Wistar雄性大鼠,按照0.4m L/100 g的劑量腹腔注射水合氯醛麻醉大鼠,備皮。手術(shù)前2 d(-2 d),把細(xì)胞懸液按7個(gè)點(diǎn)平均注射在大鼠背部皮下。手術(shù)當(dāng)天(0 d),以髂前上棘連線為蒂部在大鼠背部切取一個(gè)長(zhǎng)8 cm、寬2 cm的隨意皮瓣。切取后,用3-0的絲線原位縫合。術(shù)后第7天,測(cè)量隨意皮瓣的成活面積[9]。

為了確定有效的細(xì)胞移植劑量,新鮮分離一定數(shù)量的BM-MNCs,分別以1×106和5×106的BMMNCs注射兩組隨意皮瓣模型(n=6),同樣劑量的PBS注射作為對(duì)照組(n=6)。在術(shù)后7 d測(cè)定各組的隨意皮瓣存活面積,以此確定后期實(shí)驗(yàn)每只大鼠模型注射5×106個(gè)細(xì)胞是合適的細(xì)胞劑量。

為了比較來(lái)源于等質(zhì)等量骨髓的BM-MNCs和BNSCs的治療效果,抽取4只Wistar雄性大鼠的骨髓并平均分成兩份,一份用于直接密度梯度離心分離BM-MNCs,一份用上述的全骨髓貼壁培養(yǎng)方法獲得第4代的BMSCs。第一步:計(jì)數(shù)收集到的BMMNCs個(gè)數(shù),按照(BM-MNCs數(shù))/(5×106)計(jì)算出可注射大鼠的數(shù)量。第二步:計(jì)數(shù)培養(yǎng)到第4代的BMSCs個(gè)數(shù),按照(BMSCs數(shù)/第一步計(jì)算出的可注射大鼠數(shù)量)計(jì)算出每一只大鼠接受的細(xì)胞劑量。第三步:5×106的BM-MNCs和相對(duì)應(yīng)數(shù)量的BMSCs重懸于700μL的PBS中,注射到大鼠模型的皮下,每只鼠注射7個(gè)點(diǎn),每個(gè)點(diǎn)注射100μL細(xì)胞懸液,每組6只鼠,對(duì)照組注射等量的PBS(n=6)。

1.6 隨意皮瓣成活率的檢測(cè)

皮瓣手術(shù)后第7天,麻醉大鼠模型,數(shù)碼相機(jī)拍攝皮瓣成活的大體情況,觀察其外觀、顏色、質(zhì)地,以Image-Pro Plus 6.0軟件分析隨意皮瓣的成活面積,結(jié)果計(jì)算(成活面積/皮瓣面積×100%)。

1.7 組織學(xué)檢測(cè)

術(shù)后第7天,過(guò)量麻醉法處死大鼠,在隨意皮瓣長(zhǎng)軸的中部取樣,4%多聚甲醛固定24 h,石蠟包埋,切取6μm厚石蠟切片,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)的免疫組化過(guò)程,4℃孵育小鼠抗大鼠CD31抗體過(guò)夜,第二天37℃孵育攜過(guò)氧化氫酶的羊抗小鼠二抗30 min,隨后在光鏡下DAB顯色液顯色。分別在200倍光鏡下對(duì)每張石蠟切片隨機(jī)選取5個(gè)視野拍照,計(jì)數(shù)每張照片中的微血管數(shù)量,取平均值為樣本的微血管數(shù)量。

1.8 數(shù)據(jù)分析

2 結(jié)果

2.1 BM-MNCs和BMSCs的鑒定

培養(yǎng)到第4代的BMSCs呈現(xiàn)出典型的成纖維細(xì)胞樣形態(tài),在體外有很強(qiáng)的增殖能力,能夠在特定條件下被誘導(dǎo)成脂、成骨、成軟骨等。流式細(xì)胞術(shù)分析顯示,與BM-MNCs相比,BMSCs高表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞標(biāo)志物CD29和CD90,低表達(dá)內(nèi)皮細(xì)胞的標(biāo)志物CD31和造血細(xì)胞標(biāo)志物CD45(圖1、表1)。

圖1 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)骨髓單個(gè)核細(xì)胞和骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的表面標(biāo)志物表達(dá)Fig.1 The cell surfacem arker expression p rofile of BMM NCs and BMSCs by flow cytom etry

表1 BM-MNCs和BMSCs各表面標(biāo)志物的表達(dá)情況Table 1 The cell surfacemarker expression profile of BM-MNCsand BMSCs

2.2 確定有效的細(xì)胞移植劑量

為了確定有效的細(xì)胞移植劑量,分別向隨意皮瓣模型中注射1×106或5×106新鮮分離的BMMNCs。制作皮瓣模型術(shù)后7 d,皮瓣上出現(xiàn)了明顯的成活和壞死分界(圖2A)。1×106細(xì)胞治療組的平均皮瓣存活率是(64.0±6.1)%,5×106細(xì)胞治療組的平均皮瓣存活率是(70.8±5.3)%,均顯著高于PBS對(duì)照組的存活率(54.3±2.5)%,P<0.05;細(xì)胞治療組間沒(méi)有明顯的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05)(圖2B)。由此確定每只大鼠注射5×106,作為后續(xù)實(shí)驗(yàn)移植劑量。

圖2 確定細(xì)胞移植的有效劑量Fig.2 The identification of optim al cell dose for therapy

2.3 移植BM-MNCs和BMSCs促進(jìn)皮瓣成活

BM-MNCs治療組和BMSCs治療組的皮瓣成活率分別為(71.6±8.4)%和(66.2±3.1)%,都顯著高于PBS對(duì)照組的皮瓣成活率(55.9±3.4)%,P<0.05;骨髓單個(gè)核細(xì)胞治療組和骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞組之間沒(méi)有明顯的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05)(圖3)。

圖3 BM-MNCs和BM SCs治療效果的比較Fig.3 The com parison of the theraputic effective of BM-MNCs and BMSCs

圖4 皮瓣微血管密度(*:P<0.05;標(biāo)尺:100μm)Fig.4 Capillary density in skin flapsmeasured (*:P<0.05;Scale bars:100μm)

2.4 隨意皮瓣的微血管密度

為計(jì)數(shù)細(xì)胞移植后皮瓣的微血管密度,對(duì)取下的標(biāo)本行CD31染色。結(jié)果顯示,BM-MNCs組和BMSCs組的微血管數(shù)量分別是(58.2±6.8)和(42.7±5.1),顯著高于PBS對(duì)照組(22.8±3.1),P<0.05。另外,BMMNCs組也顯著高于BMSCs組(P<0.05)(圖4)。

3 討論

BM-MNCs和BMSCs的成血管潛能在前期的皮瓣模型和其他缺血性疾病中都有報(bào)道[6-7,10-14]。然而,哪一種細(xì)胞更適合臨床應(yīng)用還不明確。體外培養(yǎng)擴(kuò)增骨髓細(xì)胞可以減少初始抽吸骨髓的量,但會(huì)隨著培養(yǎng)代次的增加喪失一些細(xì)胞的功能,并且長(zhǎng)期培養(yǎng)可能會(huì)帶來(lái)一些安全問(wèn)題。因此,有必要明確體外培養(yǎng)骨髓是否能夠給臨床治療帶來(lái)更多的好處。本研究發(fā)現(xiàn),BM-MNCs和BMSCs都可以促進(jìn)大鼠隨意皮瓣的成活率。更重要的是,注射了劑量相當(dāng)?shù)膩?lái)源于等質(zhì)等量骨髓的BM-MNCs和BMSCs,兩組皮瓣的成活率沒(méi)有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。這表明目前的骨髓細(xì)胞培養(yǎng)系統(tǒng)沒(méi)有給治療帶來(lái)幫助。

新生血管對(duì)于皮瓣缺血損傷后的存活具有重要作用。BMSCs已被用于治療許多缺血性疾病[15-18],其機(jī)制主要是通過(guò)旁分泌一些生長(zhǎng)因子來(lái)保護(hù)存留的細(xì)胞,促進(jìn)細(xì)胞的增殖和血管的新生,并調(diào)控炎癥反應(yīng)[19-22]。研究表明,BMSCs有可能直接參與新血管的形成[23-24]。與BM-MNCs相比,BMSCs是相對(duì)純化的細(xì)胞,可能有益于減少細(xì)胞相關(guān)的副作用。然而,其他的成血管成分(比如內(nèi)皮祖細(xì)胞和造血細(xì)胞)[25]在培養(yǎng)的過(guò)程中會(huì)逐漸丟失(圖2)。這可能是純化后的BMSCs與BM-MNCs相比,不具有治療上的優(yōu)勢(shì)的原因。

干細(xì)胞培養(yǎng)中的一個(gè)挑戰(zhàn)就是在培養(yǎng)過(guò)程中維持其“干性”。目前標(biāo)準(zhǔn)的BMSCs的培養(yǎng)過(guò)程被廣泛應(yīng)用,但并不完美[25-26]。有報(bào)道認(rèn)為,細(xì)胞在后續(xù)的培養(yǎng)過(guò)程中丟失了其多向分化潛能[25]。在本研究中,培養(yǎng)到第4代的BMSCs仍然具有多向分化潛能。與其他類似的研究相比,本研究采用的細(xì)胞注射劑量高于其他研究[7,27-30],但實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,BMSCs組并不優(yōu)于BM-MNCs組。

綜上所述,我們認(rèn)為,BM-MNCs和BMSCs都可以促進(jìn)大鼠隨意皮瓣的成活率。但是,相比之下,BM-MNCs具為方便、快捷,效果更優(yōu),更符合臨床應(yīng)用的要求。或許,隨著B(niǎo)MSCs培養(yǎng)體系的進(jìn)一步優(yōu)化,經(jīng)過(guò)培養(yǎng)擴(kuò)增的BMSCs能更好地維持其“干性”,能在今后的應(yīng)用中獲得優(yōu)勢(shì)地位,從而取代BM-MNCs。

[1]Finseth F,Adelberg MG.Prevention of skin flap necrosis by a course of treatment with vasodilator drugs[J].Plast Reconstr Surg,1978,61(5)∶738-743.

[2]Waters LM,Pearl RM,Macaulay RM.A comparative analysis of the ability of five classes of pharmacological agents to augment skin flap survival in various models and species∶an attempt to standardize skin flap research[J].Ann Plast Surg,1989,23(2)∶117-122.

[3]Khan A,Ashrafpour H,Huang N,etal.Acute local subcutaneous VEGF165 injection foraugmentation ofskin flap viability∶efficacy and mechanism[J].Am J Physiol Regul Integr Comp Physilo, 2004,287(5)∶R1219-R1229.

[4]Ishiguro N,Yabe Y,Shimizu T,et al.Basic fibroblast growth factor has a beneficial effect on the viability of random skin flaps in rats[J].Ann Plast Surg,1994,32(4)∶356-360.

[5]Iwasawa M.Accelerated maturation in prefabricated flaps by transforming growth factor-beta∶an experimental study in the rabbit[J].Ann Plast Surg,1993,31(1)∶72-75.

[6]Uysal CA,Ogawa R,Lu F,et al.Effect of mesenchymal stem cells on skin graft to flap prefabrication∶an experimental study [J].Ann Plast Surg,2010,65(2)∶237-244.

[7]Yang M,Sheng L,Li H,et al.Improvement of the skin flap survival with the bonemarrow-derived mononuclear cells transplantation in a ratmodel[J].Microsurgery,2010,30(4)∶275-281.

[8]Mizuguchi T,Hui T,Palm K,et al.Enhanced proliferation and differentiation of rathepatocytes cultured with bonemarrow stromal cells[J].JCell Physiol,2001,189(1)∶106-119.

[9]Shalom A,Friedman T,Westreich M.Effect of aspirin and heparin on random skin flap survival in rats[J].Dermatol Surg,2008,34 (6)∶785-790.

[10]Jiang C,Wang J,Yu L,et al.Comparison of the therapeutic effects of bone marrow mononuclear cells and microglia for permanentcerebral ischemia[J].Behav Brain Res,2013,250∶222-229.

[11]Hao CN,Shintani S,Shimizu Y,et al.Therapeutic angiogenesis by autologous adipose-derived regenerative cells∶comparison with bonemarrow mononuclear cells[J].Am JPhysiol Heart Circ Physiol,2014,307(6)∶H869-H879.

[12]MazoM,Gavira JJ,AbizandaG,etal.Transplantation ofmesenchymal stem cells exerts a greater long-term effect than bone marrow mononuclear cells in a chronic myocardial infarction model in rat [J].Cell Transp lant,2010,19(3)∶313-328.

[13]Yang Z,Zhu L,Li F,et al.Bonemarrow stromal cells as a therapeutic treatment for ischemic stroke[J].Neurosci Bull,2014,30 (3)∶524-534.

[14]Olivares EL,Ribeiro VP,Werneck deCastro JP,etal.Bonemarrow stromal cells improve cardiac performance in healed infarcted rat hearts[J].Am JPhysiolHeartCirc Physiol,2004,287(2)∶H464-H470.

[15]Benzhi C,Limei Z,Ning W,et al.Bone marrow mesenchymal stem cells upregulate transient outward potassium currents in postnatal rat ventricularmyocytes[J].JMol Cell Cardiol,2009,47 (1)∶41-48.

[16]Orlic D,Kajstura J,Chimenti S,et al.Bone marrow stem cells regenerate infarcted myocardium[J].Pediatr Transp lant,2003,7 Suppl 3∶86-88.

[17]Prochazka V,Gumulec J,Chmelova J,etal.Autologousbonemarrow stem cell transplantation in patients with end-stage chronicalcritical limb ischemia and diabetic foot[J].Vnitr Lek,2009,55(3)∶173-178.

[18]Wang L,Lin Z,Shao B,et al.Therapeutic applications of bone marrow-derived stem cells in ischemic stroke[J].Neurol Res, 2013,35(5)∶470-478.

[19]Gnecchi M,He H,Liang OD,etal.Paracrine action accounts for marked protection of ischemic heartby Akt-modifiedmesenchymal stem cells[J].Nat Med,2005,11(4)∶367-368.

[20]Li Y,Chen J,Chen XG,et al.Human marrow stromal cell therapy for stroke in rat∶neurotrophins and functional recovery[J]. Neurology,2002,59(4)∶514-523.

[21]Togel F,Hu Z,Weiss K,et al.Administered mesenchymal stem cells protect against ischemic acute renal failure through differentiation-independentmechanisms[J].Am JPhysiol-Renal, 2005,289(1)∶F31-F42.

[22]Ortiz LA,Dutreil M,Fattman C,et al.Interleukin 1 receptor antagonistmediates the antiinflammatory and antifibrotic effect of mesenchymal stem cells during lung injury[J].Proc Natl Acad SciU SA,2007,104(26)∶11002-11007.

[23]Jackson KA,Majka SM,Wang H,et al.Regeneration of ischemic cardiacmuscle and vascular endothelium by adult stem cells[J]. JClin Invest,2001,107(11)∶1395-1402.

[24]Ferrari G,Cusella-De Angelis G,Coletta M,et al.Muscle regeneration by bone marrow-derived myogenic progenitors[J]. Science,1998,279(5356)∶1528-1530.

[25]Zhang W,Zhang F,Shi H,et al.Comparisons of rabbit bone marrow mesenchymal stem cell isolation and culturemethods in vitro[J].PLoSOne,2014,9(2)∶e88794.

[26]Li X,Zhang Y,Qi G.Evaluation of isolation methods and culture conditions for rat bone marrow mesenchymal stem cells[J]. Cytotechnology,2013,65(3)∶323-334.

[27]LiH,Zan T,Li Y,etal.Transplantation of adipose-derived stem cells promotes formation of prefabricated flap in a ratmodel[J]. Tohoku JExp Med,2010,222(2)∶131-140.

[28]Reichenberger MA,Heimer S,Schaefer A,et al.Adipose derived stem cells protect skin flaps against ischemia-reperfusion injury [J].Stem Cell Rev,2012,8(3)∶854-862.

[29]Karathanasis V,Petrakis S,Topouridou K,et al.Intradermal injection of GFP-producing adipose stromal cells promotes survival of random-pattern skin flaps in rats[J].Eur JPlast Surg, 2013,36(5)∶281-288.

[30]Reichenberger MA,MuellerW,Schafer A,et al.Fibrin-embedded adipose derived stem cells enhance skin flap survival[J].Stem Cell Rev,2012,8(3)∶844-853.

Com parison between Bone M arrow-derived Mononuclear Cells and M esenchymal Stem Cells in Promoting Survival Rates of Random-pattern Skin Flap in Rats

XU Peng,TANG Zhengya,LU Yang,ZHOU Guangdong,LIU Wei,CAO Yilin,ZHANGWenjie.Departmentof Plastic and Reconstructive Surgery,ShanghaiNinth People's Hospital,Shanghai Jiaotong University School of Medicine,Shanghai Key Laboratory of Tissue Engineering,Shanghai 200011,China;National Tissue Engineering CenterofChina,Shanghai200241,China.Correspondingauthor:ZHANGWenjie(E-mail:wenjieboshi@aliyun.com).

Objective To compare the non-cultured bone marrow mononuclear cells(BM-MNCs)and cultured bone marrow mesenchymal stem cells(BMSCs)in the promotion of random-pattern skin flap survival of rats.M ethods BMMNCs and BMSCs derived from two identical rat bonemarrow aspirateswere injected in a random-pattern skin flap model of rat(n=6).The survival areawas determined by its appearance,color and texture.Capillary density of flapswasmeasured by histology.Results The flap survival rates were(71.6±8.4)%in the BM-MNC-treated group and(66.2±3.1)%in the BMSC-treated group,both ofwhich were significantly higher than the control group(55.9±3.4)%.However,no significant difference was observed between the cell transplanted groups.According to vessel density assay,capillary density in the BM-MNC-treated group(58.2±6.8)was higher than in the BMSC-treated group(42.7±5.1),both ofwhich were significantly higher than the control group(22.8±3.1).Conclusion Pre-culture of BMSCs does not bring therapeutic benefits.

Random-pattern skin flap;Cell therapy;Bonemarrow mononuclear cells; Bonemarrow mesenchymal stem cells

Q813.1+1

A

1673-0364(2015)02-0090-05

2015年2月3日;

2015年3月1日)

國(guó)家重點(diǎn)基礎(chǔ)研究發(fā)展計(jì)劃(“973”項(xiàng)目)(2011CB964704);國(guó)家自然科學(xué)基金(81271714,31170944)。

200011上海市上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬第九人民醫(yī)院整復(fù)外科,上海市組織工程研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室;200241上海市組織工程國(guó)家工程中心。

張文杰(E-mail:wenjieboshi@aliyun.com)。

猜你喜歡
劑量
課堂內(nèi)外·初中版(科學(xué)少年)(2023年10期)2023-12-10 00:43:06
·更正·
中藥的劑量越大、療效就一定越好嗎?
近地層臭氧劑量減半 可使小麥增產(chǎn)兩成
不同濃度營(yíng)養(yǎng)液對(duì)生菜管道水培的影響
90Sr-90Y敷貼治療的EBT3膠片劑量驗(yàn)證方法
胎盤(pán)多肽超劑量應(yīng)用致嚴(yán)重不良事件1例
戊巴比妥鈉多種藥理效應(yīng)的閾劑量觀察
復(fù)合型種子源125I-103Pd劑量場(chǎng)分布的蒙特卡羅模擬與實(shí)驗(yàn)測(cè)定
同位素(2014年2期)2014-04-16 04:57:20
高劑量型流感疫苗IIV3-HD對(duì)老年人防護(hù)作用優(yōu)于標(biāo)準(zhǔn)劑量型
主站蜘蛛池模板: 波多野结衣中文字幕一区| 狠狠亚洲五月天| 欧美一级在线| 又爽又黄又无遮挡网站| 免费毛片全部不收费的| 秋霞午夜国产精品成人片| 久久国产高潮流白浆免费观看| 久久国产精品波多野结衣| 九九热精品在线视频| 国产亚洲视频中文字幕视频 | 国产日韩欧美一区二区三区在线| 亚洲首页在线观看| 国产极品美女在线| 亚洲人成色在线观看| 久久精品无码国产一区二区三区| 视频国产精品丝袜第一页| 亚洲精品桃花岛av在线| 国产午夜精品一区二区三区软件| 欧美黄色网站在线看| 日本欧美一二三区色视频| 亚洲精品成人福利在线电影| 女高中生自慰污污网站| 人妻丰满熟妇αv无码| 亚洲无码日韩一区| 久久综合九九亚洲一区| 国产精品无码作爱| 亚洲天堂成人| 无码综合天天久久综合网| 久久毛片基地| 久久精品亚洲专区| 97人妻精品专区久久久久| 亚洲码在线中文在线观看| AV老司机AV天堂| av在线无码浏览| 亚洲精品爱草草视频在线| 亚洲午夜国产片在线观看| 国产成人高清精品免费5388| 精品视频一区二区观看| 日韩国产综合精选| 色有码无码视频| 日本人又色又爽的视频| 成人一区在线| 亚洲日本一本dvd高清| 久久九九热视频| 国产第八页| 在线观看无码av免费不卡网站| 欧美成在线视频| AV无码无在线观看免费| 国产一二视频| 亚洲色图综合在线| a网站在线观看| 99久久精品视香蕉蕉| 久久国产乱子伦视频无卡顿| 不卡午夜视频| 国内精品小视频在线| 国产色伊人| 高潮毛片无遮挡高清视频播放 | 99热最新网址| 亚洲欧美日韩另类| 亚洲精品国产乱码不卡| 久久国产精品夜色| 亚洲视频色图| 亚洲高清无码久久久| 中文国产成人久久精品小说| 亚洲毛片一级带毛片基地| 国产在线观看精品| 18禁黄无遮挡网站| 日韩成人午夜| 亚洲视频免费在线看| 成·人免费午夜无码视频在线观看 | 精品国产三级在线观看| 成人伊人色一区二区三区| 亚洲婷婷六月| 中文字幕佐山爱一区二区免费| 欧洲日本亚洲中文字幕| 亚洲av无码成人专区| 久久综合色播五月男人的天堂| 中文字幕乱妇无码AV在线| 亚洲av无码成人专区| 九九热视频精品在线| 四虎成人精品| 国产天天色|