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mRNA降解與血痕遺留時間相關性探索

2015-11-28 00:57:28皮建華
四川警察學院學報 2015年5期
關鍵詞:研究

龍 兵,羅 楊,皮建華,周 豪

(1.四川警察學院 四川瀘州 646000;2.瀘州市公安局 四川瀘州 646000)

案發時間的判斷對于案件的偵破具有十分重要的意義。血痕是現場非常常見的生物物證,通常能夠比較準確地反映案發時間。血痕遺留時間的推斷一直是刑事科學技術領域研究的熱點和難點[1-4]。

RNA是分子生物學領域的研究熱點,同時受到法醫學研究者的關注。許多研究報道機體組織RNA會隨著死亡時間的延長而發生降解,降解與死亡時間具有一定的相關性[5-7]。這些研究大多以組織器官為研究對象,關于血痕RNA降解的研究相對較少。本次研究以管家基因β-actin和血液中特異性表達的HBB為目的基因,18s rRNA為內參基因,探討血痕在離體72小時時間內mRNA的降解情況。

一、材料與方法

(一)樣本。

采集6名個體靜脈血(3名男性,3名女性),各1mL,EDTA抗凝。取20μL血液滴于吸水濾紙上,共制作42份樣本,室溫保存,分別于0.5h、2h、6h、12h、24h、48h、72h后提取RNA。

(二)儀器與試劑。

采用TRIzol試劑(美國Invitrogen公司)提取RNA。采用Bioneer逆轉錄試劑盒進行逆轉錄。實時定量PCR擴增采用的試劑盒為Roche公司FastStart Universal SYBR Green Master(ROX)熒光定量試劑盒,擴增儀器為AB-7500實時定量PCR儀。

(三)方法。

1.RNA抽提。剪取制作的血痕于1.5mL離心管,加入0.5mLTRIzol試劑,室溫下震蕩混勻5min,加0.1mL氯仿,混勻,放置3min; 12000g離心15min;取上清,加入250μL異丙醇,混勻,12000g離心10min;棄上清,加入75%乙醇1mL,7500g離心5min。棄上清,短暫室溫干燥,加入DEPC水溶解,-80保存。實驗操作均在冰上進行,離心均為-4℃低溫離心。

2.RNA逆轉錄。反應體系為5μL模板RNA,基因特異性逆轉錄引物濃度為20pmol,總反應體系為20μL。 反應條件為50℃保溫1h,95℃變性5min。

表1 逆轉錄基因特異性引物

3.實時定量PCR。HBB、β-actin和18s rRNA的擴增引物見表2。實時熒光定量PCR擴增反應體系:5μL SYBR Green,前后引物終濃度均為0.5μM,總反應體系為10μL。

表2 HBB、β-actin和18s rRNA擴增引物

擴增條件為:

?

(四)數據分析。

以實時定量PCR的CT值進行統計學處理,分析軟件為Excel2007、GraphPad Prism5。

二、結果

(一)聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測。

聚丙烯酰胺凝膠電泳銀染檢測PCR擴增片段,片段大小與預期大小相符合,見圖1。

圖1 PCR產物電泳圖

從左至右分別為Marker、18s rRNA、β-actin、HBB。

(二)RNA降解與血痕遺留時間的相關性。

獲得各樣本實時定量PCR擴增CT值,HBB、18s rRNA、β-actin實時定量PCR擴增曲線見圖2。

圖2 實時定量PCR擴增曲線

從左至右分別為HBB、18s rRNA、β-actin。

以18s rRNA為內參計算ΔCT值,即ΔCT=CT(target mRNA)-CT(reference DNA)[8],建立ΔCT值與血痕遺留時間的相關性。結果顯示在72小時時間內,血痕β-actin、HBB基因mRNA具有較強的穩定性,mRNA降解與血痕遺留時間沒有相關性(p>0.05)。HBB、β-actin基因mRNA降解與血痕遺留時間的相關性見圖3、圖4。

圖3 HBB基因mRNA降解與血痕遺留時間相關性(r=0.4325,p=0.3324)

圖4 β-actin基因mRNA降解與血痕遺留時間相關性(r=0.3985,p=0.3759)

三、討論

RNA在細胞內以多種形式存在,主要包括mRNA、tRNA、rRNA等。18s rRNA與核糖體蛋白緊密結合,受到核糖體蛋白的保護,穩定性強,不易發生降解[9]。許炎等[10],在研究中發現血痕18s rRNA在8-15天都沒有發生明顯降解。研究中,我們以18s rRNA為內參對HBB和β-actin兩個目的基因CT值進行標準化處理,能夠更加準確的觀察血痕mRNA的降解情況,更好的反映mRNA降解與血痕遺留時間的相關性。

許多研究報道機體死亡后細胞mRNA在數天甚至數小時內發生快速降解[7,11]。我們在研究中發現血痕HBB和β-actin基因mRNA在72小時時間內都保持了很強的穩定性,這與機體在死亡后細胞mRNA降解有很大差異。我們認為導致血痕mRNA降解速度慢的原因,一方面可能與血痕在濾紙上迅速干燥,RNA酶以及相關因子的活性降低有關;另一方面,可能與實驗環境相對理想化,受到外界的污染相對較小有關。該研究涉及的血痕遺留時間相對較短,在以后的研究中,我們將進一步延長血痕遺留時間,同時探討溫度、濕度等因素對血痕RNA降解的影響。

[1]Bremmer RH,De Bruin KG,Van Gemert MJ,et al.Forensic quest for age determination of bloodstains[J].Forensic science international,2012,216(1-3):1-11.

[2]Anderson SE,Hobbs GR,Bishop CP.MμLtivariate analysis for estimating the age of a bloodstain[J].Journal of forensic sciences,2011,56(1):186-193.

[3]Anderson S,Howard B,Hobbs GR,et al.A method for determining the age of a bloodstain[J].Forensic science international,2005,148(1):37-45.

[4]Bauer M,Polzin S,Patzelt D.Quantification of RNA degradation by semi-quantitative duplex and competitive RTPCR:a possible indicator of the age of bloodstains?[J].Forensic science international,2003,138(1-3):94-103.

[5]朱 怡,董迎春,梁偉波,等.2011-小鼠死后腦RNA降解與死亡時間的相關性[J].法醫學雜志,2011,26(3):161-163.

[6]Young ST,Wells JD,Hobbs GR,et al.Estimating postmortem interval using RNA degradation and morphological changes in tooth pμLp[J].Forensic science international,2013,229(1-3):e161-166.

[7]Sampaio-Silva F,Magalhaes T,Carvalho F,et al.Profiling of RNA degradation for estimation of post morterm interval[J].PloS one,2013,8(2):e56507.

[8]Livak KJ,Schmittgen TD.Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔCT Method[J].Methods,2001,25(4):402-408.

[9]Houseley J,Tollervey D.The many pathways of RNA degradation[J].Cell,2009,136(4):763-776.

[10]許 炎,蔣 巍,平 原,等.應用RNA分析技術推斷現場血痕形成時間[J].法醫學雜志,2010,26(5):340-342.

[11]Deng W,Lv M,Wang L,et al.mRNA degradation pattern analysis in post-mortem normalized using the DNA[J].Forensic Science International:Genetics Supplement Series,2013,4(1):e266-e267.

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