油橄欖查爾酮合酶與查爾酮異構酶基因全長的克隆及序列分析

陳文拴，黃乾明，*，陳華萍，楊澤身，王安逸，蘇光燦

（1.四川農業大學理學院，四川 雅安 625014；2.涼山州中澤新技術開發有限責任公司，四川 西昌 615000）

油橄欖查爾酮合酶與查爾酮異構酶基因全長的克隆及序列分析

陳文拴1，黃乾明1，*，陳華萍1，楊澤身2，王安逸2，蘇光燦2

（1.四川農業大學理學院，四川 雅安 625014；2.涼山州中澤新技術開發有限責任公司，四川 西昌 615000）

查爾酮合酶（chalcone synthase，Chs）與查爾酮異構酶（chalcone isomerase，Chi）是植物類黃酮合成代謝途徑中的兩個關鍵酶。采用同源克隆、反轉 錄聚合酶鏈式反 應（reverse transcription polymerase chain reaction，RT-PCR）、融合引物嵌套PCR（fusion primer and nested integrated PCR，FPNI-PCR）與3’-cDNA末端快速擴增技術（rapid amplification of cDNA end，RACE）相結合，分別 克隆出油橄欖chs與chi基因全長。序列分析表明，油橄欖chs基因全長DNA（GenBank登錄號：KF935223.1）和cDNA（GenBank登錄號：KF935224.1）序列分別為2 085 bp和1 173 bp，該基因的開放閱讀框（open read ing frame，ORF）編碼390 個氨基酸，其氨基酸序列與葡萄和番茄全長Chs氨基酸序列的相似度在90%左右。生物信息學分析表明，該基因編碼的蛋白屬于Chs蛋白家族。油橄欖chi基因全長DNA（GenBank登錄號：KF886190）和cDNA（GenBank登錄號：KF886191）序列分別為1 373 bp和750 bp，其ORF編碼249 個氨基酸，該氨基酸序列與已報道的其他植物Chi氨基酸序列的相似度最高在65%左右，序列中包含一段由198 個氨基酸殘基組成的具有分子內裂解酶活性的功能域，符合 Chi蛋白家族特征。

油橄欖；查爾酮合酶；查爾酮異構酶；基因克隆；序列分析

油橄欖（Olea europaea）屬于木犀科，木樨欖屬，常綠闊葉喬木，其果實主要用來壓榨生產有“液體黃金”之稱的橄欖油[1-2]。在油橄欖中除脂肪酸外關注較多的是具有抗氧化活性的物質，其中以黃酮類化合物最具代表性[3-4]。研究發現，黃酮在植物遭受輻射損傷、病蟲害與病原菌侵染等逆境脅迫過程中發揮著重要的抗逆作用，同時也與植物花朵和果實顏色的形成有著密切的關系[5-6]，此外還可以作為藥物具有抗氧化、抗癌和改善心血管系統等多種藥理作用[7-9]，很具開發潛力和研究價值。

查爾酮合酶（chalcone synthase，Chs）與查爾酮異構酶（c halcone isomerase，Chi）是植物類黃酮合成代謝途徑中的兩個關鍵酶。1分子黃酮類化合物共同生物合成前體的4-香豆酰CoA（4-coumaroyl CoA）與3分子的丙二酰CoA（malonyl CoA）在Chs的催化下生成黃酮類物質15碳骨架結構的查爾酮，查爾酮在Chi的作用下轉變為柚皮素[5，10-12]，查爾酮與柚皮素均可以作為底物進入其他不同黃酮類物質的合成代謝支路[5]。目前對植物chs與chi基因的研究多集中在糧食、蔬菜和花卉等草本植物，而在木本植物中則相對較少，雖然有關于油橄欖中這兩個基因片段的報道，如國家生物技術信息中心（National Center for Biotechnology Information，NCBI）中已收錄了油橄欖chs基因 571 bp的cDNA片段（GenBank登錄號：AF384049.1）與chi基因500 bp的cDNA片段（GenBank登錄號：GU646679.1），但缺乏對這兩個關鍵酶 基因完整序列以及結構分析等方面的研究。本研究在油橄欖chs與chi基因片段的基礎上，采用同源克隆、反轉錄聚合酶鏈式反應（reverse transcription polymerase chain reaction，RT-PCR）、融合引物嵌套PCR（fusion primer and nested integrated PCR，FPNI-PCR）與3’-cDNA末端快速擴增技術（rapid amplification of cDNA end，RACE）相結合，分別克隆出油橄欖chs與chi基因的全長DNA與cDNA，并分析了基因以及編碼蛋白的分子特征與功能屬性，以期為今后從分子水平揭示油橄欖黃酮的合成代謝調控機制、抗逆作用機理以及改良種質資源等研究提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

實驗材料取自西昌涼山州中澤新技術開發有限責任公司北河油橄欖種植基地配多靈品種的幼嫩葉片。

植物RNA提取試劑盒 天恩澤基 因科技有限公司；通用型DNA純化回收試劑盒、質粒DNA小量提取試劑盒、大腸桿菌DH5α感受態細胞 天根生化科技（北京）有限公司；Premix Taq、PrimeSTAR?Max DNA Polymerase、pMDTM19-T Vector Cloning Kit、PrimeScriptTMRT Reagent Kit 日本TaKaRa公司；實驗中所合成的引物 美國Invitrogen公司；其他 化學試劑均為國產或進口分析純。

1.2 儀器與設備

A100/A200型基因擴增儀 郎基科學儀器有限公司；DYY-6B型穩壓穩流電泳儀 北京市六一儀器廠；UV-3000型紫外分析儀 上海嘉鵬科技有限公司；HG303-4電熱恒溫培養箱 南京電器三廠；HYA恒溫搖床 中國科學院武漢科學儀器廠。

1.3 方法

1.3.1 油橄欖總DNA與總RNA的提取及cDNA第一鏈的制備

采用改良的C T A B法提取油橄欖葉片中的總DNA[13]；抽提葉片總RNA后，用PrimeScriptTMRT Reagent Kit和自備引物3’CDS Primer A[14]（實驗中所用引物見表1）合成油橄欖cDNA第一鏈。

表1 實驗所用引物Table 1 Primers used in this study

1.3.2 基因的克隆與測序

根據同源序列比對結果與NCBI中收錄的油橄欖chs基因的cDNA片段序列分別設計擴增油橄欖chs基因片段的上下游引物SU與SD，根據NCBI中收錄的油橄欖chi基因的cDNA片段序列設計一對上下游引物IU與ID，以總DNA為模板分別擴增油橄欖chs與chi基因的DNA片段，擴增產物經膠回收后與T載體進行連接，再經轉化大腸桿菌DH5α感受態細胞，挑選陽性轉化子擴大培養后提質粒測序。

根據測序結果設計擴增油橄欖chs基因5’端未知序列的3 條巢式特異引物AS1、AS2、AS3。以總DNA為模板，用特異引物AS1與 另設計的融合有特異引物接頭的隨機引物FAD1、FAD2、FAD3、FAD4分別進行第一輪PCR反應，反應參數：94 ℃ 1 min，98 ℃ 1 min；94 ℃ 30 s，55 ℃ 1 min，72 ℃ 2 min，5 個循環；94 ℃ 30 s，25 ℃ 3 min，72 ℃ 2 min；（94 ℃ 30 s，55 ℃ 1 min，72 ℃ 2 min，2 個循環；94 ℃ 30 s，44 ℃ 1 min，72 ℃ 2 min）15 個循環；72 ℃ 10 min，4 ℃結束[15]。以第一輪PCR產物為模板，用特異引物AS2與FSP1進行第 二輪PCR反應，反應參數：94 ℃ 1 min；94 ℃ 30 s，55 ℃ 15 s，72 ℃ 2 min，30 個循環；72 ℃ 10 min，4 ℃結束[15]。以第二輪PCR產物 為模板，用特異引物AS3與FSP2進行第三輪PCR反應，反應參數：94 ℃ 1 min；94 ℃ 30 s，56 ℃ 15 s，72 ℃ 2 min，30 個循環；72 ℃ 10 min，4 ℃結束[15]。對第三輪有明顯條帶的PCR產物回收連接克隆后進行測序。根據chi基因的測序結果設計擴增其5’端未知序列的3 條巢式特異引物AI1、AI2、AI3，而后操作程序同上，特異引物的Tm見表1。

根據油橄欖chs基因的cDNA片段序列設計用于擴增其3’端未知cDNA的兩條巢式特異引物ZS1與ZS2。以反轉錄cDNA第一鏈為模板，用特異引物ZS1與通用引物UPML和UPMS（兩者物質的量之比為1∶5）一起進行第一輪PCR反應，反應參數：94 ℃ 2 min；94 ℃ 30 s，72 ℃ 2 min，5 個循環；94 ℃ 30 s，66 ℃ 30 s，72 ℃ 2 min，5 個循環；94 ℃ 30 s，61 ℃ 30 s，72 ℃ 2 min，20 個循環；72 ℃ 10 min，4 ℃結束[14]。以第一輪PCR產物為模板，用特異引物ZS2與通用引物NUP進行第二輪PCR反應，反應參數：94 ℃ 1 min；94 ℃ 30 s，57 ℃ 15 s，72 ℃ 2 min，30 個循環；72 ℃ 10 min，4 ℃結束[14]。對第二輪有明顯條帶的PCR產物回收連接克隆后進行測序。用巢式特異引物ZI1與ZI2擴增油橄欖chi基因3’端未知cDNA，特異引物的Tm見表1，操作程序同上。

確定基因兩端的非翻譯區（untranslated regions，UTR）后，在基因兩端分別設計擴增油橄欖chs基因全長的上下游引物HSU和HSD與擴增油橄欖chi基因全長的上下游引物HIU和HID，分別以油橄欖總DNA與cDNA第一鏈為模板擴增基因的全長DNA與cDNA。

1.3.3 序列的生物信息學分析

序列比對分析確定基因的外顯子、內含子、開放閱讀框（open reading frame，ORF）以及所編碼的氨基酸序列，并進行相似度分析；采用SignalP-4.1進行信號肽預測；利用SOPMA與SWISS-MODEL進行蛋白質空間結構的預測分析；用SMART進行結構域分析；利用MEGA 5構建系統進化樹。

2 結果與分析

2.1 基因克隆

用引物SU與SD擴增油橄欖chs基因片段，電泳檢測到一條1 700 bp左右的條帶（圖1a），用引物IU與ID擴增油橄欖chi基因片段，電泳檢測到一條800 bp左右的條帶（圖1b），經序列分析確定為油橄欖chs與chi基因的DNA片段。

圖1 1 chschs（a）與achichi（b）基因片段的擴增結果Fig.1 PCR amplified products of chs (a) and chi (b) gene fragments

擴增油橄欖chs基因的5’端未知序列時，用引物FAD1～FAD4進行的巢式PCR均擴增出了明亮的條帶（圖2a），但FAD4的終產物分子質量最大，有700 bp左右，最終選取該條帶測序。擴增油橄欖chi基因的5’端未知序列時，只有用引物FAD3進行的巢式PCR擴增出一條約500 bp的明亮條帶（圖2b）。測序結果經序列比對分析表明，均獲得了包括油橄欖chs與chi基因起始密碼子ATG在內的5’端未知序列。擴增油橄欖chs與chi基因的3’端未知序列，最終均獲得一條550 bp左右的明亮條帶（圖3），測序結果顯示已擴增到以上兩個基因包括Poly A在內的3’端cDNA序列。

圖2 擴增chs（a）與chi（b）基因的5端未知序列Fig.2 Amplification of the 5’-unknown sequences of chs (a) and chi (b) genes

圖3 3 chschs（a）與achichi（b）基因的33’-RACE擴增ACEFig.3 3’-RACE products of chs (a) and chi (b) genes

圖4 4 chschs（a）與achichi（b）基因全長的擴增Fig.4 Amplification of the full-length chs (a) and chi (b) genes

用引物HSU與HSD擴增油橄欖chs基因的全長DNA與cDNA，分別得到一條2 200 bp左右與一條1 300 bp左右的條帶（圖4a），測序結果為2 219 bp與1 307 bp。用引物HIU與HID擴增油橄欖chi基因的全長DNA與cDNA，分別得到一條1 400 bp左右與一條800 bp左右的條帶（圖4b），測序結果為1 397 bp與774 bp。

2.2 基因的核苷酸序列分析

克隆獲得的油橄欖chs基因全長DNA（GenBank登錄號：KF935223.1）包含有3 個外顯子（65～242、884 ～1 576、1 848～2 149 bp），兩個內含子核苷酸序列均符合典型的gt-ag剪切方式，全長cDNA（GenBank登錄號：KF935224.1）包含一個1 173 bp的完整ORF，編碼一條390 個氨基酸的多肽鏈（圖5a）。序列比對發現，油橄欖與NCBI中已收錄的金魚草chs基因相似度最高，兩者完整ORF的相似度為78.35%，其次與牽牛花、葡萄和洋地黃的相似度在76%～78%之間。

所克隆的油橄欖chi基因全長DNA（GenBank登錄號：KF886190）包含4 個外顯子（23～128、221～379、785～1 008、1 135～1 395 bp），3 個內含子均符合gt-ag剪切方式，全長cDNA （GenBank登錄號：KF886191）中有一個編碼249 個氨基酸多肽鏈的完整ORF（圖5b）。同源比對顯示油橄欖與薔薇科的梨和櫻桃相似度較高，完整ORF的相似度分別為68.84%與67.81%，與山茶科的茶樹、忍冬科的金銀花的相似度分別為66.8%和64.59%。

2.3 編碼的氨基酸序列分析

氨基酸序列同源比對發現，油橄欖Chs多肽鏈中有3 段較長的保守序列（第174～198、254～273、367～386位），其完整多肽鏈序列與葡萄的相似度最高，相似度為90.26%，與番茄和馬鈴薯的相似度分別為90.00%和89.49%。經ProtParam在線分析，油橄欖Chs多肽鏈的分子質量為43.044 5 kD，等電點為6.24，含有44 個帶正電荷的氨基酸殘基，48 個帶負電荷的氨基酸殘基，分子式為C1915H3053N519O568S19，不穩定系數為42.98，屬于不穩定性蛋白。采用SignalP-4.1預測油橄欖Chs蛋白定位于細胞質。

油橄欖Chi與梨、櫻桃、茶樹、金銀花以及唇形科的黃芩和藿香的相似度相對較高，完整多肽鏈序列的相似度分別為63.86%、64.66%、64.54%、65.87%、65.06%、 61.78%。該蛋白的分子質量為26.64 kD，等電點為6.01，含有25 個帶正電荷的氨基酸殘基，27 個帶負電荷的氨基酸殘基，分子式為C1202H1890N306O368S4，不穩定系數為45.58，屬于不穩定性蛋白。蛋白質亞細胞定位預測油橄欖Chi蛋白存在于細胞質。

2.4 油橄欖Chs與Chi蛋白的結構分析

用S O P M A與S W I S S-M O D E L在線進行蛋白質結構分析顯示，油橄欖Chs蛋白中有44.36%的α-螺旋區、6.92%的β-轉角和33.08%的無規卷曲（圖6）。用SMART在線進行結構域分析顯示，油橄欖C h s的 N端包含一段具有酰基轉移酶活性的結構域，C端包含一段具有氨基酰基轉移酶活性的結構域，序列內部包含一段3-氧酰基-[酰基載體蛋白（acyl carrier protein，ACP）]合酶Ⅲ結構域，多肽鏈中最長的氨基酸保守序列（AKDLAENNKGARVLVVCSEITAVTF）就位于該結構域內，屬于Chs蛋白家族中的一員。

圖5 油橄欖chschs（a）與achichi（b）基因的核苷酸序列和編碼的氨 基酸序列Fig.5 The nucleotide sequences and deduced amino acid sequences of chs (a) and chi (b) gen es from O. eu ropaea

圖6 油橄欖Chs蛋白的二級（a）和三級（b）結構分析Fig.6 Protein structure analysis of Chs from O. europaea

蛋白質二級結構分析顯示，油橄欖Chi蛋白中有9 處α-螺旋，合計占序列全長的42.57%；有10 處β-轉角，占序列全長的8.03%；無規卷曲有19 處，占序列全長的32.53%（圖7a）；其中6處較大的α-螺旋在同源建模生成的三維條帶圖中清晰可見（圖7b）。結構域分析顯示油橄欖Chi蛋白包含一段有198 個氨基酸殘基組成的具有分子內裂解酶活性的功能域，該功能域中有一段Bet v 1結構域，符合Chi蛋白家族特征。帶有Bet v 1結構域的蛋白質廣泛存在于雙子葉植物的細胞質中，與植物的發病機理有著密切的聯系，其大量表達與病原體感染、創傷或其他外界脅迫因素密切相關[16-17]，這也就從分子水平上解釋了植物在遭受逆境脅迫時其組織細胞中黃酮含量升高的原因。

圖7 油橄欖Chi蛋白的二級（a）和三級（b）結構分析Fig.7 Protein structure analysis of Chi from O. europaea

2.5 系統進化樹的構建

利用MEGA 5軟件通過鄰接法構建植物Chs氨基酸序列的系統進化樹顯示（圖8a），在植物分類學中同屬于菊亞綱的油橄欖、洋地黃、金魚草、藿香和紫蘇在進化樹中同處于一個大的分支，表明它們有著共同的起源或進化模式。基于Chi氨基酸序列構建的進化樹反映油橄欖與甘薯和花生的親緣關系要近于其他物種（圖8b），但它們在植物分類學中的親緣關系相差較遠，由此可見，依據Chi氨基酸序列構建的進化樹不能完全真實地反映不同物種間的自然演化進程，其結果對于明確判斷植物間的親緣關系僅能提供一定的參考。

圖8 不同來源的Chs（a）與Chi（b）氨基酸序列聚類結果Fig.8 Phylogenetic analysis of amino acid sequences of Chs (a) and Chi (b) from different plants

3 討 論

植物Chs是Ⅲ型聚酮合酶家族中的一員，分子遺傳學研究發現，在進化過程中該酶的功能可能有多次轉變[18]。植物chs基因為多基因家族，在不同組織器官中存在著不同的表達模式[19]，從而影響著植物組織中黃酮種類與含量的分布。由于植物的花朵發揮著特殊的生理功能，一般情況下植物花朵中chs基因的表達量最高[20]。鑒于chs基因在分化方向與表達模式等方面的多樣性，因此非常適合作為研究基因表達調控與調查基因家族起源的模式系統。對已報道的植物chs基因分析發現，除了金魚草、虎杖與苔蘚外[21-22]，絕大多數植物chs基因均由2 個外顯子和1 個內含子構成，但在本實驗中克隆到的油橄欖chs基因和金魚草中該基因一樣有3 個外顯子和2 個內含子，且兩者編碼序列的同源性在所有比對序列中最高，表明它們可能有著相似的演化進程。不過經序列分析發現，油橄欖chs基因的內含子1位于第60位半胱氨酸密碼子內部，在第一與第二個堿基之間，外顯子1編碼59 個氨基酸，其保守性低于外顯子2、3，油橄欖Chs蛋白富含可能參與同源二聚體形成的亮氨酸，活性中心由4 個高度保守的氨基酸殘基（C164、H303、N336、F215）構成，在多肽鏈的C端有典型的Chs多基因家族特異標簽序列WGVLFGFGPG，從這些高度一致的特征可以看出植物中chs基因的結構趨于保守[23]，推測該基因可能有著共同的起源。

Chi是類黃酮合成途徑中第一個被認識的酶，在該途徑中發揮著重要的 承接作用，由Chi參與的查爾酮異構化反應速率是自發異構化反應速率的107倍，且在酶促反應中有99.999%以上的產物可以直接作為下一步代謝反應的底物[24-25]，植物chi基因表達常發生在生命活動旺盛的部位推測與該酶高效的催化活性有關。Chi蛋白具有特殊的三維折疊結構，因此很適合作為植物特有的基因標記[26]。根據作用底物的不同可以把植物中的Chi分為兩類：Ⅰ型Chi只能催化6’-羥基查爾酮轉化為5’-羥基黃烷酮；Ⅱ型Chi則可以催化6’-羥基查爾酮和6’-脫氧查爾酮分別生成相應的5’-羥基黃烷酮和5’-脫氧黃烷酮[27]，此外在某些微生物中發現了與植物直系同源的Chi[28]。Ⅰ型Chi在絕大多數植物中均有存在，在豆科植物中發現的Chi則屬于Ⅱ型，僅在刺甘草與百脈根等豆科植物中發現有以上兩種類型Chi的存在[27，29]，據此推測油橄欖chi基因編碼的蛋白屬于Ⅰ型，催化底物為6’-羥基查爾酮。蛋白功能位點分析表明油橄欖Chi的氨基酸序列中存在著4 個重要的催化位點T50、Y108、N115、S192與7 個底物結合位點R38、G39、L40、F49、I52、K111、V112，研究發現在豆科植物中Ⅱ型Chi的第192位左右的氨基酸常由T替換了S[24]，由此更進一步確定油橄欖Chi屬于Ⅰ型。油橄欖chi基因和大多數植物chi基因一樣有典型的結構，由4 個外顯子和3 個內含子構成，有資料顯示大麥chi有3 個外顯子[30]，白菜的Brchi-2、甘藍的Bochi-2以及甘藍型油菜的Bnchi-2均有5 個內含子[31]，在豆科植物光葉百脈根5號染色體上串聯的4 個chi基因中，除了Ljchi-2含有3 個外顯子外，其他均與典型結構相符[27]，chi基因內含子表現出的這種多樣性有可能會為研究該基因的演化發展提供相關的模型。

對植物球莖、花藥與花冠發育過程的研究發現，Chs與Chi的積累和消失受紫外光輻射誘導調控，并且存在協同效應[32]。分子水平上的研究發現植物Chs、Chi與二氫黃酮醇-4-還原酶是以多酶復合體的形式存在于內質網來行使催化功能的[33]，在這個多酶復合體中，chi基因的大量表達可受外界損傷、病原菌感染以及輻射等多種因素誘導，因此Chi是類黃酮合成途徑中一個重要的節點。科研人員[34]將水母雪蓮的chi基因轉入煙草，結果提高了煙草總黃酮的含量，將外源chs基因和黃酮醇合酶基因共同轉入番茄后提高了番茄中黃酮醇的含量[35]，將二氫黃酮醇-4-還原酶基因、chs和chi基因與共同轉化至馬鈴薯后提高了花色素苷的含量[36]，最終均改善了植株的抗氧化能力，但是僅將外源chs基因導 入矮牽牛與煙草則出現了共抑制現象，且在矮牽牛中還發現了雄性不育現象[37-38]。因此對基因功能的研究是一個復雜的探索過程，在利用基因工程方法對傳統的種質資源進行遺傳改良時，有必要對功能基因結構與功能的關系進行深入的探索，并且要充分考慮到它們的生理效應以及遺傳效應。

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Cloning and Characterization of Full-Length Chalcone Synthase and Chalcone Isomerase Genes from Olea europaea

CHEN Wenshuan1， HUANG Qianming1，*， CHEN Huaping1， YANG Zeshen2， WANG Anyi2， SU Guangcan2
(1. College of Science， Sichuan Agricultural University， Ya’an 625014， China; 2. Liang Shan Zhong Ze New Technology Development Co. Ltd.， Xichang 615000， China)

Chalcone synthase (Chs) and chalcone isomerase (Chi) are two key enzymes in the biosynthesis pathway of plant flavonoids. The complete genes of chs and chi were isolated from Olea europaea by homology cloning， RT-PCR， FPNI-PCR (fusion primer and nested integrated PCR) and 3’-RACE (rapid amplification of cDNA end). Sequence analysis showed that the full-length DNA (GenBank No: KF 935223.1) and cDNA (GenBank No: KF935224.1) of chs gene from O. europaea were 2 085 bp and 1 173 bp， resp ectively， and the ORF (open reading frame) of chs gene encoded 390 amino acid residues，which showed high similarity (about 90%) with the complete amino acid sequences of Chs from Vitis vinifera an d Solanum lycopersi cum. Bioinformatics analysis showed that the protein encoded by chs gene from O. europaea belonged to the Chs protein family. The full-length DNA (GenBank No: KF886190) and cDN A (GenBank No: KF886191) of chi gene from O. europaea were 1 373 bp and 750 bp， respectively， and the ORF of chi gene encoded 249 amino acids residues. With the highest similarity (about 65%) to the comple te amino acid sequences of Chi from the other plants ， the ful l-length amino acid sequence of Chi from O. europaea had an intramolecular lyase domain with 198 amino acids， which was consistent with the characteristics of the Chi protein family.

Olea europaea; chalcone synthase (Chs); chalcone isomerase (Chi); gene cloning; sequence analysis

Q943.2

A

1002-6630（2015）09-0117-08

10.7506/spkx1002-6630-201509022

2014-06-30

四川省科技廳科技支撐計劃項目（12ZC2220）

陳文拴（1988—），男，碩士研究生，研究方向為生物化學與分子生物學。E-mail：chenwenshuan@126.com

*通信作者：黃乾明（1964—），男，教授，博士，研究方向為生物化學與分子生物學。E-mail：huangqianming2014@126.com