三種不同的養殖模式對日本鰻鱺生長性能及養殖水質的影響

陳 紅 劉邦輝 方彰勝 廖國禮

（1．興寧市寧中鎮農業經濟發展服務中心，廣東 梅州市 514500；2．廣東省海洋工程職業技術學校，廣州 510320；3．中國水產科學研究院珠江水產研究所 農業部熱帶亞熱帶水產資源利用與養殖重點實驗室，廣東 廣州 510380）

日本鰻鱺（Anguilla japonica）俗稱白鱔、河鰻、鰻魚、青鰻，為溯河洄游性魚類，隸屬鰻鱺目、鰻鱺科、鰻鱺屬，是我國鰻鱺養殖的主要品種。20世紀80年代后，伴隨著養鰻業迅速發展，我國已成為世界上鰻鱺養殖產業化程度最高的國家之一［1］。其中養殖模式的發展和完善對鰻鱺養殖發展中起著積極的促進作用。目前日本鰻鱺的養殖模式主要有池塘混養、網箱養殖、高密度集約化池塘養殖等模式［2－4］。在養殖產量、經濟效益逐漸提高的同時，因而無整體規劃和養殖品種結構單一，水源交叉感染，水質惡化、密度較高致過度使用魚藥等使日本鰻鱺養殖水質、環境、魚病以及品質等方面陷入瓶頸［5］。王武、雷衍等研究表明水體水質單因子變化對養殖動物有顯著影響［6－7］，水質參數變化較大，且對養殖動物影響較大的主要是氮、磷等有機污染指標［8－10］。為此，我國水產科技工作者通過運用光合細菌、生物浮島和混養等多種方法對南美白對蝦、中國對蝦、鯽魚等生物的養殖水體的水質改善、促生長、抗病等方面做了部分研究［11－18］，并取得了一定的成效，但有不同養殖模式對精準養殖水體水質及魚類生長性能的影響仍需進一步研究。

文章以日本鰻鱺為研究對象，通過采用投放光合細菌、安裝生物浮床單養和日本鰻鱺、鯽魚與鳙魚混養等三種不同模式對日本鰻鱺精準養殖水體水質和生長等方面進行了研究，旨在探索日本鰻鱺生態高效健康養殖模式，以期為推動我國日本鰻鱺養殖模式由資源高耗費型向資源節約與環境友好型轉變提供新的途徑和思路。

1 材料與方法

1．1 試驗材料

1．1．1 試驗用飼料 試驗所用飼料由中國水產科學研究院珠江水產飼料廠提供的粉料，其飼料配方百分比為：魚粉65%，活性小麥面筋粉3%，啤酒酵母4．1%，α－馬鈴薯淀粉22%，多維添加劑1．3%，氯化膽堿0．3%，礦物鹽添加劑2．3%。每次投喂后密封保存。

1．1．2 試驗用魚及相關材料 試驗用日本鰻鱺購自廣州粵洋水產養殖場，規格為21±1．2g，體質健壯，外觀無明顯癥狀。光合細菌購自中國水產科學研究院珠江水產研究所藥物實驗廠，試驗開始前7d開始培養，濃度為1－2g/m3。生物浮床為由PVC管框架國定的聚乙烯網，其上放空心菜，且長寬為50cm×6cm的生態基垂于聚乙烯網下方。

1．1．3 試驗時間及地點 試驗于2014年6月5日至8月15日在中國水產科學研究院（廣州）農業部熱帶亞熱帶水產資源利用與養殖重點實驗室試驗基地水泥池內進行，水泥池規格長寬高為5m×4m×1．5m，水深1．2m。

1．2 試驗方法

1．2．1 試驗分組 試驗分光合細菌組（定義為組1）、生物浮床組（定義為組2）、日本鰻鱺、鯽魚與鳙魚混養組（定義為組3）和空白對照組，日本鰻鱺每組各50尾，混養組的鯽魚和鳙魚各10尾，每組3個重復。

1．2．2 管理方法與計算公式 試驗用水為經過2級砂慮養殖池塘水，采用3KW的鼓風機通過微孔曝氣盤（氣盤直徑為1m）24h不間斷向魚池充氧，溫度為自然水溫，pH值6．8-7．3之間，溶解氧在5．0mg/L以上；每天上午9點和下午5點投料投喂一次，投喂量為魚質量的3%。根據以下公式記錄并計算相應的數據：

平均體重（g）＝總體重/日本鰻鱺尾數

增加的均體重（g）＝試驗后均體重－試驗前均體重

成活率（%）＝最后存活尾數/初始養殖尾數×100%

增重率（%）＝（試驗后均體重－試驗前均體重）/初始均體重×100%

1．2．3 水質檢測 每隔10d采一次水養，每次取同一水泥池不同的3個重復點，分別檢測氨氮、活性磷酸鹽、硝酸鹽氮、亞硝酸鹽氮等4個指標。其中，活性磷酸鹽測定采用磷鉬藍分光光度法（HJ593－2010），氨氮測定采用納氏試劑分光光度法（HJ 535－2009），NO2－用分光光度法（GB 7493－87），NO3－用紫外分光光度法（HJ/T 346－2007）。

1．2．4 數據處理 采用Excel和SPASS 17．0進行統計分析，數據以平均值±標準差（Mean±S．D）表示，在單因子方差分析（ANOVA）基礎上采用 T 檢驗分析比較，取 95%置信度（P＜0．05）或 99%置信度（P＜0．05）。

2 結果

表1 三種不同養殖模式下日本鰻鱺生長特性

2．1 三種不同養殖模式下日本鰻鱺生長特性

從表1可以看出，光合細菌組、生物浮床組、混養組合和對照組的平均增重率分別為2．21、1．48、1．18 和 0．87 倍，光合細菌組平均增長率最大，生物浮床組次之，對照組最低。除混養組合和對照組間的平均增重率無顯著差異外（P＞0．05），其余組間均有顯著差異（P＜0．05）。成活率除光合細菌組和生物浮床組間無顯著差異外（P＞0．05），其余組間均存在顯著差異（P＜0．05）。可見，光合細菌和生物浮床對日本鰻鱺的生長和成活率有顯著提高（P＜0．05）。

2．2 三種不同養殖模式對精養水體水質的影響

2．2．1 對精養水體中活性磷酸鹽濃度的影響由圖1可知，三種養殖模式對試驗周期內日本鰻鱺精養水體中磷酸鹽濃度均具有不同程度的降低作用。除前期10d內的變化無顯著差異外（P＞0．05），10d 之后光合細菌組的作用尤其顯著（P＜0．05），其后依次是生物浮床組、混養組和對照組。30d和40d的生物浮床組和混養組相比其他組對磷酸鹽濃度的降解作用分別呈現最弱現象。

2．2．2 對水體中亞硝酸鹽濃度的影響 三種不同養殖模式下水體中亞硝酸鹽濃度的變化情況見圖2。由圖2可以看出，試驗進行20d周期內，三種養殖模式對水體中的亞硝酸鹽濃度的變化無顯著差異影響（P＞0．05），隨著試驗的進行，20－50d試驗周期內，光合細菌組對水體中亞硝酸鹽的去除效果最為顯著（P＜0．05），其次依次是生物浮床、混養模式和對照組。50d之后，生物浮床組對水體中的亞硝酸鹽濃度的去除效果較為顯著（P＜0．05）。

圖1 水體中活性磷酸鹽變化折線圖

圖2 水體中亞硝酸鹽濃度變化折線圖

圖3 水體中硝酸鹽濃度變化折線圖

2．2．3 對水體中硝酸鹽的影響 如圖3所示，三種不同養殖模式對硝酸鹽的濃度含量影響無顯著差異（P＞0．05）。隨著養殖周期的延長，硝酸鹽的濃度均呈急劇上升的趨勢。50d之后的養殖周期內，光合細菌組的硝酸鹽的濃度增加較為顯著（P＜0．05），混養組的硝酸鹽的濃度相對較低，生物浮床組與對照組居中。

2．2．4 對水體中氨氮濃度的影響 由圖4所示的三種不同養殖模式對日本鰻鱺精養水體中氨氮濃度的影響變化趨勢可知，三組水體中的氨氮含量在養殖周期內均呈現先升高后降低的規律。其中，光合細菌組合生物浮床組水體中的氨氮含量大致在50d之后呈下降趨勢，而混養組水體中的氨氮含量在養殖周期40d后呈現快速降低，整個養殖周期內，光合細菌組水體中的氨氮含量均顯著低于其他組（P＜0．05），對照組水體中的氨氮含量始終高于其他組（P＜0．05）。

圖4 水體中氨氮濃度變化折線圖

3 討論

3．1 三種不同養殖模式均可不同程度的提高日本鰻鱺生長速度和成活率

氨氮與亞硝酸鹽濃度的高低是制約水產養殖水質好壞的重要因素［20］，而水質又進一步制約著水生生物的生長特性［21］。光合細菌是一種以光為能源的微生物，通過吸收水域中的有機物、二氧化碳、硫化氫等有害物質，能達到改善水質、增強水生生物免疫以促進其生長的作用，其作用已在陸家昌［15］開展的光合細菌能顯著加快提高凡納冰對蝦生長速度和抗病能力研究中得以證實。生態基作為載體材料可分為有機和無機部分，都可以應用于改善養殖水質［22］，并能顯著促進羅氏沼蝦的生長［23］。本試驗中，相對于對照組，光合細菌組和下方掛有生態基的生物浮床組對日本鰻鱺平均增長率最大和成活率具有顯著促進作用（P＜0．05）（見表1），此結果與陸家昌［15］、Haque［23］等對蝦研究結果基本一致。混養組無顯著變化，推測此結果可能與環境容納量有關，其具體原因有待進一步研究，但在不增加飼料投喂量的情況下可額外獲得魚產量。可見，三種養殖模式均可不同程度的提高日本鰻鱺的生長與成活率。

3．2 三種不同養殖模式可有效改善日本鰻鱺精準養殖水體水質

由圖1、2、3、4可知，前10d的養殖周期內，因生物個體小，投餌少及投餌帶來的殘餌、糞便相對較少，三種養殖模式對水體的磷酸鹽、硝酸鹽、亞硝酸鹽和氨氮的影響無顯著差異（P＞0．05），此結果與沈錦玉［11］的研究結果基本一致。Green［24］究發現日本鰻鱺精養池塘對投入物質的氮、磷利用率分別僅為18%－21%和16%－18%，楊世平等究發現，投餌輸入池塘的氮大部分（62%－68%），隨著養殖時間的延長，精養池塘中亞硝酸鹽氮、氨態氮和總磷含量會逐漸增加［25］。

試驗結果表明（見圖1）、養殖周期30d時，隨著投餌量的增加，光合細菌和混養對水中活性磷酸鹽含量的降解作用顯著優于其余兩組（P＜0．05），其可能原因為混養組和光合細菌組的水中活性磷酸鹽產生與分解速率達到平衡，混養組的鯽魚和鳙魚吸食有機碎屑，減緩了水體中磷酸鹽濃度升高的速度，而生物浮床的水生植物吸收相對速率較慢，同時附著在生態基上的生物群落生產繁殖速率低于水體活性磷酸鹽的富集速率。圖2表明，20－50d試驗周期內，光合細菌組對水體中亞硝酸鹽的去除效果最為顯著（P＜0．05），其次依次是生物浮床、混養模式和對照組。生物50d之后，生物浮床組對水體中的亞硝酸鹽濃度的去除效果較為顯著（P＜0．05）。可見，在養殖前期，光合細菌因其穩定的增殖和亞硝酸鹽的分解作用優勢顯著，這與沈錦玉［11］關于光合細菌水產養殖水質的改良結論基本一致。Azim［26］研究表明，微生物和浮游生物在生物膜上的形成受水質環境因子的影響較大，相對穩定的水體其形成時間約在30d左右，該研究與本試驗50d后生物浮床對亞硝酸鹽去除效果顯著的結論相符。

在池塘養殖過程中，氮的消失通常是通過氨的散發和反硝化作用［27］，而反硝化作用過程常伴隨著氧化的氮化合物的擴散。伴隨著水體亞硝酸鹽的分解轉化為硝酸鹽和水體內硝酸鹽的積累，致使光合細菌組硝酸鹽的濃度顯著高于其他組（見圖3）。通常，水體中的氨氮在細菌作用下，轉化為亞硝酸鹽和硝酸鹽，并最終轉化為硝酸鹽，因此，光合細菌組與生物浮床組對水體氨氮的分解轉化效果較為顯著（見圖4），此結論與沈錦玉［11］、陸家昌［15］關于光合細菌對養殖水質氨氮的影響研究基本相同。

水泥池或池塘養殖因其封閉性導致池塘水體生態因子之間的相互轉化率較流水有顯著降低［28］，養殖水體維持一定的C/N（碳氮比例）比可顯著提高池塘的穩定性［29］，光合細菌、生物浮床和混養養殖模式因轉化分解水體的氨氮、亞硝酸鹽和硝酸鹽等途徑不同程度的降低了水體總氮含量，間接的提高了C/N比值和物質轉化，提高了養殖水體的生態平衡和水體的穩態，進而降低日本鰻鱺應激發生率，降低發病率，促進日本鰻鱺快速生長，可見，光合細菌、生物浮床和混養養殖模式均不失為日本鰻鱺精準水體健康高效養殖模式。

［1］梁旭方．日本鰻鱺人工育苗及仔魚飼料研究［J］．水產科學，2005，24（4）：24－26．

［2］王志錚，付英杰，楊磊，等．三種養殖模式下日本鰻鱺（Anguilla japonica）［J］．海洋與湖沼，2013，44（4）：1042-1049．

［3］郭少忠．廣東鰻魚養殖模式及其演變［J］．海洋與漁業，2009，（11）：20－23．

［4］周鳳建，何玉明，王維善，等．生態型工廠化循環水養魚系統水處理工藝及效果的研究［J］．漁業現代化，2007，34（2）：5－7．

［5］樊海平．鰻鱺產業發展存在的問題及對策建議［J］．科學養魚，2008，（5）：3－5．

［6］王武．精養魚池耗氧和氧債的研究［J］．上海水產大學學報，1984，12（2）：99－102．

［7］雷衍之．無錫市河浮口高產魚塘水質的研究［J］．水產學報，1983，7（3）：185－198．

［8］李如忠．水質評價理論模式研究進展及趨勢分析［J］．合肥工業大學學報，2005，28（4）：369－373．

［9］黃海珠．池塘水產養殖污染因子成因初探：［D］．南昌：南昌大學，2008．

［10］劉煥亮，黃樟翰．中國水產養殖學［M］．北京：科學出版社，2008．

［11］沈錦玉，尹文林，劉問，等．光合細菌 HZPSB 對水產養殖水質的改良和對魚類促生長作用［J］．科技通報，2004，20（6）：481－484．

［12］張毅敏，高月香，吳小敏，等．復合立體生物浮床技術對微污染水體氮磷的去除效果［J］．生態與農村環境學報，2010，26（增刊 1）：24－29

［13］周小平，王建國，薛利紅，等．浮床植物系統對富營養化水體中氮、磷凈化特征的初步研究［J］．應用生態學報，2005，16（11）：2199－2203．

［14］全為民，沈新強，嚴力蛟．富營養化水體生物凈化效應的研究進展［J］．應用生態學報，2003，14（1）：2057－2061．

［15］陸家昌，黃翔鵠，李活，等．光合細菌對養殖水質及凡納濱對蝦抗病力的影響［J］．廣東海洋大學學報，2009，29（6）：87－91．

［16］王吉橋，李德尚，董雙林，等．鱸－中國對蝦－羅非魚混養的實驗研究［J］．中國水產科學，2001，7（4）：37－41．

［17］田相利，王吉橋，李德尚，等．海水池塘中國對蝦與尼羅羅非魚施肥混養的實驗研究［J］．應用生態學報，1997，8（6）：628－632．

［18］王吉橋，李德尚，董雙林，等．中國對蝦與海灣扇貝投餌混養的實驗研究（英）［J］．中國水產科學，1999，6（1）：97－102．

［20］劉艷紅，羅國芝，朱學寶．海水閉合循環系統生物濾器微生物特性研究［J］．農業環境科學學報，2004，23（3）：540－544．

［21］Pillay TVR．Waste production in aquaculture［J］．Aquacultureand theenvironment．BlackwellPublishing，Noida，2004：58－75．

［22］Weerasooriya AC，YiY．EffectsofaquaMatsTM on growth of le tilapia （Oreochromisniloticus）fry in earthen pondsatAIT，Thailand［J］Tropical AgriculturalResearch，2002，14：72－79．

［23］HaqueM R，Islam M A，Rahman MM，etal．EffectsofC/N ratio and periphyton substrateson pond ecology and production performance in giant freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii（De Man，1879）and tilapia Oreochromisniloticus （Linnaeus，1758）polyculture system［J］．Aquaculture Research，2013：1－17．

［24］Green BW，Boyd CE．Chemicalbudgets fororanically fertilized fish ponds in the drytropics［J］．Journalof theWorld Aquaculture Society，1995，26（3）：284－296．

［25］楊世平，邱德全．對蝦高密度養殖過程中水質的周期變化與分析［J］．水產科學，2006，25（9）：459－ 462．

［26］Azim M E，Wahab M A．Periphyton－based pond polyculture［M］∥Azim M E，Verdegem M C J，van Dam A A，Beveridge M CM ，ed．Periphyton：Ecology，Exploitation and Management．UK：CABIPublishing，2005：207－222．

［27］Schwartz SH．Are There UniversalAspects in the Structureand［J］．Journalofsocial issues，1994，50（4）：19－45．

［28］晏小霞，唐文浩．養殖水環境生物修復研究進展［J］．熱帶農業科學，2004，24（2）：69－72．

［29］Avnimelech Y，Carbon/nitrogen ratio asa controlelementin aquaculture systems［J］．Aquaculture，1999，176（3/4）：227－235．