紅豆越橘離體培養關鍵技術研究

紅豆越橘離體培養關鍵技術研究

田新華，邢亞娟，張建瑛，郭樹平*

(黑龍江省林業科學研究所，哈爾濱，150081)

摘要：以紅豆越橘優樹為材料，研究影響紅豆越橘離體培養的因素，篩選適合的外植體滅菌方法及培養基配方，攻克試管苗生根難題，建立完整的組織培養體系。試驗結果表明：以WPM(改良)+6-BA1.0mg/L+ZT0.5mg/L培養基培養30 d的試管苗增殖倍數達3.8；以苔蘚培養的試管苗瓶外生根效果較好，平均生根3.8條，平均根長1.32 cm；并且試管苗在9月份移栽較易成活。

關鍵詞：紅豆越橘；組織培養；瓶外生根

中圖分類號：S 663.9

文獻標識碼：A

文章編號：1001-005X(2015)02-0057-04

Abstract：The impact factors for the in vitro culture of Vaccinnium vitis-idaea L.were studied，and the propoer sterilization method of explants and culture medium were selected，and a complete tissue culture system was established.The results showed that the medium formula was WPM+6-BA1.0 mg/L+ZT0.5 mg/L(improved)，the proliferation was 3.8 times for 30 d；ex vitro rooting effect was good in moss cultured plantlets with average number of roots of 3.8 and average root length of 1.32 cm；and the plantlets transplanting was easy to survive in September.

Keywords：Vaccinnium vitis-idaea L.；tissue culture；rooting outside test tube

收稿日期：2014-11-05

基金項目：森工總局科技成果轉化項目(sgzjT2013005)；省林業廳資助項目(201004068-6)

作者簡介：第一田新華，碩士，副研究員。研究方向：森林培育、遺傳育種。

通訊作者：*郭樹平，碩士，研究員。研究方向：森林培育。

Study on Key Techniques of In VitroCulture fromVaccinniumvitis-idaeaL.

Tian Xinhua，Xing Yajuan，Zhang Jianying，Guo Shuping*

(Heilongjiang Forest Research Institute，Harbin 150081)

E-mal：hljgsp@163.com

引文格式：田新華，邢亞娟，張建瑛，等.紅豆越橘離體培養關鍵技術研究[J].森林工程，2015，31(2)：57-60.

紅豆越橘(Vacciniumuitis-idaea)，又名紅豆、牙疙瘩[1]，屬杜鵑花科越橘屬植物。紅豆越橘作為一種新興的第三代保健水果，已被國際糧農組織列為人類五大保健食品之一[2-4]。

但是近年來由于人類對森林漿果植物資源進行無計劃掠奪式的采摘，致使野生資源遭到嚴重破壞，自然修復能力降低，蘊藏量和可采量銳減，野生資源瀕危枯竭，供需矛盾日趨加劇，價格猛漲，產地出現瘋狂采摘，造成了野生資源瀕臨滅絕的邊緣[5-6]。本試驗擬采用組培技術對大興安嶺北部林區的紅豆越橘優樹展開研究，旨在建立紅豆越橘的組培微繁技術，攻克生根難題，建立紅豆越橘組織培養體系，為今后優良種質資源的繁育，規范化、規模化大生產奠定基礎；為種質創新及種質資源保存構建技術平臺。

1試驗材料與方法

1.1　試驗材料與預處理

以我國大興安嶺北部林區的紅豆越橘優良單株(YJ-1)的休眠健壯枝條為供試材料。用清水浸泡催芽，每天換水一次，水溫控制在18～20℃，大約5 d左右休眠腋芽開始萌動。

1.2　外植體消毒滅菌處理

待腋芽萌發后，剪取長約1.0 cm左右的單芽莖段，用流水反復清洗。在超凈工作臺上進行滅菌處理：

(1)75%酒精浸泡30 s，0.1%HgCI2浸泡2 min，然后用無菌水沖洗3次。

(2)75%酒精浸泡30 s，0.1% HgCI2浸泡3 min，用無菌水沖洗3次。

(3)0.1% HgCI2浸泡3 min，之后無菌水沖洗3次。

(4)0.1% HgCI2浸泡4 min，用無菌水沖洗3次。

以上材料滅菌后取出，用無菌濾紙吸干材料表面多余水分。每組處理10個莖段，2次重復，7 d后觀察效果。

2試驗方法

2.1　誘導側芽生長

以改良的WPM培養基(用Ca(NO3)2·4H2O，KNO3代替原WPM培養基中的CaCl2、K2SO4)為基本培養基，利用超凈工作臺的無菌環境，將帶有一個芽的莖段接種于WPM(改良)+ZT0.5 mg/L+20 g/L蔗糖+瓊脂粉6 g/L培養基上(PH值調到5.8)，誘導芽苗生長，因素水平見表1。

2.2　試管苗增殖培養

待莖段腋芽伸長后，轉接于以WPM(改良)為基本培養基，分別添加不同濃度6-BA(0、0.5、1.0 mg/L)、ZT(0.5、1.0、2.0 mg/L)的培養基進行培養，篩選適宜紅豆越橘試管苗分化增殖的培養基配方。采用L9(34)正交試驗設計表進行芽苗增殖培養基篩選。每個處理接種10瓶，重復二次，無菌條件下培養30 d后調查苗木的苗高、分化數。

培養基中添加蔗糖20 g/L，日產瓊脂粉6 g/L，pH值調至5.8，溫度控制在22～25℃，光照強度2 000 Lux，光照時長12 h/d。

表1　因素水平表 Tab.1 Factors and levels

2.3　試管苗瓶外生根培養

2.3.1不同基質對紅豆越橘苗瓶外生根的影響

將供試的基質用飽和KMnO4溶液消毒，滅菌30 min后大量清水沖洗，然后用塑料薄膜覆蓋陽光暴曬24 h以上，通風備用。供試基質如下：

Ⅰ草炭+稻殼=1∶1Ⅱ苔蘚Ⅲ草炭Ⅳ草炭：蛭石=1∶1

將經過分化培養的芽苗斜插于四種基質中，每個處理扦插20株，重復3次，30 d后統計不同基質中紅豆越橘試管苗生根率，篩選出適宜紅豆越橘生根的移栽基質。

2.3.2不同移栽時間對紅豆越橘試管苗瓶外生根的影響

選用第Ⅱ號基質為栽培基質，將組培苗分別蘸取ABT 500、1 000 ppm，速蘸30 s，分別在5月、7月、9月進行移栽試驗研究，30 d后統計生根率，分析最適宜紅豆越橘試管苗移栽的時間。

2.4　統計分析方法

本試驗采用Microsoft Excel 2003的統計工具進行計算并作圖，dps7.05統計軟件對試驗數據進行方差分析和多重比較[7]。

3結果與分析

3.1　不同滅菌方法的滅菌效果

獲取初始材料的一個重要制約因素就是初代培養的高污染率，所以選用適宜的滅菌方法至關重要。由表2可以看出，處理1滅菌不充分，污染率較高35%；處理4滅菌過度，盡管沒有污染，但苗木已經大量褐化，嚴重影響外植體的生長，甚至導致外植體死亡；處理3即用0.1%升汞浸泡3 min的滅菌方法，污染率為10 %，褐化率15%，其余外植體表現正常，是較適宜的滅菌方法。

表2　不同滅菌時間的滅菌效果 Tab.2 The sterilization effect under different sterilization time

3.2　誘導側芽生長

觀察結果表明，越橘腋芽在改良后WPM+ZT0.5 mg/L培養基上培養8 d左右開始萌動，經培養12 d后節間伸長、葉片展開，培養30 d后繁殖系數較高(平均新生芽苗數3.1個)，葉片較多(平均葉片數12.0枚)，芽苗生長速度較快(平均新生芽苗高1.12 cm)。

3.3　試管苗增殖培養基的篩選

將經初代培養的試管苗切成1.0 cm左右的莖段轉接入不同激素組合的增殖培養基中培養。通過觀察各處理培養30 d后的試管苗可知，因激素的種類、濃度的不同，不定芽的生長狀況表現出明顯的不同。紅豆越橘莖段或莖尖的離體增殖率受到培養基中細胞分裂素的調控，伸長生長除受細胞分裂素調控外，還受生長素的調控。從表3中可以看出不同性狀的極差分析結果，極差大的因素對性狀的影響較大。結果顯示，玉米素對紅豆越橘試管苗的苗高、分化都起著重要的作用。添加6-BA時，外植體也增殖，但增殖效果遠不如ZT。經方差分析(見表4)表明，無論對于控制紅豆越橘試管苗的苗高還是分化增殖數，A、B兩因素不同水平間差異均極顯著(p<0.01)。按F值分析，F值大的因素對結果影響較大，結果與上述分析一致。經過對苗木生長情況的SSR多重比較表明(見表5)，處理7培養基上生長的試管苗縱向生長最快，分化增殖倍數最多。因此，選擇培養基(即處理7)WPM(改良)+6-BA1.0 mg/L+ZT0.5 mg/L為紅豆越橘的分化增殖培養基，分化芽苗數較多，苗木高度適中。

表3　不同激素對植株上部各性狀極差的影響 Tab.3 Effects of different hormones on the trait range of the upper part of the plant

表4　不同處理對紅豆越橘試管苗各性狀的方差分析 Tab.4 The variance analysis of different treatments on plantlets of Vaccinium Vitis idaea

注：p<0.05為差異顯著，p<0.01為差異極顯著。

3.4　紅豆越橘試管苗生根試驗

3.4.1不同基質對紅豆越橘存活的影響

將經過分化增殖培養的試管苗成叢取出，用清水洗凈基部培養基。試管苗基部速蘸0.5%KMnO4消毒，然后浸蘸生根激素ABT 30S，栽到經KMO4消過毒的基質中誘導生根。利用霧化器加濕，相對濕度控制在80%～90%。

表5　不同處理植株上部性狀多重比較 Tab.5 Multiple comparisons of different processing plant shoots traits

注：要求芽苗高度≥0.3 cm

苗木移栽8 d左右出現不同程度的落葉現象，約在移栽的12 d苗木從靠近基質的部位開始返青，移栽后的25 d部分苗木有新腋芽萌出。就在萌出的新芽基部產生根或是沒有新芽萌出的植株基部產生根。萎蔫的苗木則全株枯萎、埋入基質部分已經腐爛，見表6。試驗結果表明：以基質Ⅱ號誘導效果最好，并且都以1 000 ppm處理效果好，生根率分別為62.7%。平均生根3.8條，平均根長1.32 cm。紅豆越橘的根系較細弱，根色偏紅，其上有多條纖細分支。

表6　不同基質中苗木生根情況 Tab.6 The seedling rooting status in different matrixs

3.4.2不同移栽時間對紅豆越橘試管苗生根率的影響

將未切除愈傷組織的組培苗進行移栽，結果表明，不同月份移栽的紅豆越橘試管苗存活率差異較大，見表7。5月份時陽光溫室中午溫度可達30℃，紅豆越橘組培苗生根率特別低；7月份氣溫達到一年中最高值，紅豆越橘組培苗移栽生根率為零；9月份氣溫開始下降，白天氣溫在20～26℃，但夜間溫度為8～12℃，氣溫轉涼后比較適于紅豆越橘這種喜陰涼植物的生長，生根率也大幅提升。

表7　不同移栽時間紅豆越橘的生根率的影響 Tab.7 Effect of different transplanting time on rooting rate forVaccinium Vitis idaea

將生根苗木連同基部基質一同移栽入細砂：草炭：蛭石為1∶3∶2的 松軟基質中(經飽和KMO4消毒30 min后大量清水沖洗，然后用塑料薄膜覆蓋陽光曝曬24 h以上)越冬培養，溫度控制在20～25℃，每天噴水一次。次年平均苗高可達8～10 cm，產生10～13個芽苗。

4結論

越橘外植體采用0.1%升汞浸泡3 min表現正常，污染率、褐化率均較低，是較適宜的滅菌方法。通過正交試驗設計篩選WPM(改良)+6-BA1.0 mg/L+ZT0.5 mg/L為越橘試管苗分化增殖培養基，平均增殖倍數達3.8；9月份用消過毒的苔蘚為基質誘導試管苗瓶外生根，平均生根率達62.7%，生根3.8條，根長1.32 cm。

5討論

(1)植物離體快繁培養根的發生都來自不定根。一般木本植物比草本植物生根難，喬木比灌木難，成年樹比幼年樹難[8]。本研究針對越橘屬這類在試管中難以生根或根系發育不良，吸收功能極弱，移栽后不易成活的特點，本試驗把生根和馴化相結合，采用了試管苗瓶外生根技術，有效地縮短了育苗周期，降低生產成本，節省空間，同時為了縮短育苗周期[9]，杜絕因煉苗移栽造成已生根苗木部分死亡的現象，提高了苗木的存活率。

(2)瓶外誘導生根必須嚴格管理，控制好溫濕度。試管苗由高濕、弱光的異養方式轉換為低濕、變溫的有菌環境，極易死亡[10]。因此瓶外生根應采取覆膜或噴霧等方法保證空氣相對濕度為80-90%，并逐漸增加光照，保證苗基部的正常呼吸，防止失水萎蔫。

(3)正常植物組織培養過程中，植物的莖段采取正插培養方式。但是因植物莖段不定根形成的過程中需要氧氣，本研究中生根試驗改正插為斜插培養，苗木生根量相對多而發達，有利于提高移栽成活率。經苔蘚培養已經生根的試管苗如圖1所示。

圖1　經苔蘚培養已經生根的試管苗 Fig.1 The moss cultured rooted plantlets

【參考文獻】

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[責任編輯：胡建偉]