999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

5′肌醇磷酸酶影響骨骼肌纖維發育的研究進展

2016-01-12 20:21:07熊琪李曉鋒索效軍張年陶虎劉洋陳明新
湖北農業科學 2015年24期

熊琪 李曉鋒 索效軍 張年 陶虎 劉洋 陳明新

摘要:5′肌醇磷酸酶(Skeletal muscle and kidney enriched inositol polyphosphate phosphatase,SKIP)基因多物種的QTL定位表明,SKIP是影響骨骼肌發育的候選基因,其在骨骼肌里面的表達由成肌轉錄因子MyoD所調控。SKIP在成肌分化過程中發揮著重要的負調控作用,其作用機制主要依賴于水解磷脂酰肌醇三磷酸PI(3,4,5)P3的酶活性及對PI3K-AKT信號通路的負調控。因此,對SKIP影響骨髓肌纖維發育進行了簡要綜述。

關鍵詞:SKIP;QTL;PI3K-AKT;肌纖維發育

中圖分類號:Q445 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2015)24-6127-03

DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2015.24.005

Abstract: The QTL locations of SKIP gene in many species indicated that SKIP is a candidate gene of skeletal muscle development. The expression of SKIP in skeletal muscle is controlled by the transcription factor MyoD. SKIP plays a negative role in myoblast differentiating. The mechanism mainly dependents on its activity to hydrolyze PI(3,4,5)P3 and its negative role in the PI3K-Akt pathway.Therefore,SKIP on skeletal muscle development is reviewed.

Key words: SKIP;QTL;PI3K-AKT;muscle fiber development

1 SKIP的發現

2000年,Ijuin等[1]首先發現并分離了人的一個新肌醇磷酸酶(Skeletal muscle and kidney enriched inositol polyphosphate phosphatase,SKIP),存在3個可變性剪接體,剪接體2相比剪接體1多出230 bp的外顯子序列,剪接體3的C端非編碼區有937 bp序列缺失(圖1A),因而SKIP的分子質量有51 ku和43 ku兩種大小(圖1B)。SKIP具有肌醇多磷酸5-磷酸酶典型的2個保守結構域,C端SKICH結構域介導SKIP的轉移[2]。該肌醇磷酸酶在各組織中廣泛表達,在心臟、骨骼肌和腎臟中高表達,故SKIP也稱骨骼肌和腎臟高表達的肌醇磷酸酶。

2 SKIP的5′肌醇磷酸酶活性

Schmid等[3]發現SKIP能水解磷脂酰肌醇磷酸PI(3,4,5)P3、PI(4,5)P2以及肌醇磷酸I(1,4,5)P3、I(1,3,4,5)P4第5位的磷酸。PI(3,4,5)P3作為細胞內一種重要的第二信使,在PI3K-AKT信號通路中的作用十分關鍵。在多種類型的細胞中,SKIP通過水解PI3K的下游信號分子PI(3,4,5)P3的5位磷酸,負調控PI3K-Akt信號,如在CHO、L6、C2C12等胰島素敏感細胞內,細胞內源SKIP表達的抑制可顯著提高胰島素介導的PI3K-Akt活性,促進葡萄糖載體GLUT4的轉移和葡萄糖的吸收效率[4]。在靜息細胞中,SKIP分布于核周內質網;在胰島素、IGFs等細胞因子作用轉移至細胞膜外;在腳手架蛋白Pak1支撐下,與磷脂酰肌醇PI(3,4,5)P3的效應物(Akt2、PDK1及Rac1)結合形成蛋白復合物,水解PI(3,4,5)P3并使效應物失活[2,5]。

PI(4,5)P2是調節肌動蛋白聚合的信號分子[6]。研究表明,SKIP水解細胞中PI(4,5)P2的能力與水解胰島素介導的PI(3,4,5)P3的能力相同[4],相比水解PI(1,4,5)P3的能力提高6倍。肌動蛋白應力纖維在SKIP聚集處消失的研究證實SKIP通過水解PI(4,5)P2參與細胞骨架的重排[1]。

3 SKIP基因的QTL定位

人類SKIP基因定位于17號染色體短臂p13.3上。SKIP與相鄰基因綜合癥有關,如米-迪綜合征(無腦回畸形)是由17p13.3上400 kb區域內8個基因(PRP8,RILP, SREC, PITPNa, SKIP, MYO1C, CRK,and 14-3-3ζ)的雜合缺失引起[7];17p13.3區域等位基因的丟失會導致乳房、卵巢和神經的惡性腫瘤[8-10]。豬、牛、羊等經濟動物基因組內SKIP基因則多影響生產性狀的QTL,如豬SKIP基因定位在12號染色體長臂q1.3上,其所在位置存在影響第10肋骨背膘厚、胴體長[11]。肌纖維數目[12]和大腿重[13]的QTL區域。相關研究也表明SKIP基因的多態位點可顯著影響大白豬×梅山豬F2代群體的背最長肌高度、皮率、骨率、至第一頸椎胴體長、至第一肋胸胴體長、內脂率等多項胴體性狀[14]。牛的SKIP同源基因定位于19號染色體長臂q1.3上,其所在位置存在影響犢牛出生重[15]的QTL區域。綿羊SKIP基因定位于11號染色體長臂q1.5-1.6,這段區域存在影響體重、胴體重以及體內脂肪量[16]的QTL區域。

4 SKIP在骨骼肌細胞中的表達調控

Xiong等[17]研究發現SKIP啟動子區域存在多物種保守的MyoD結合位點。該位點的缺失或定點突變都導致肌源細胞中SKIP轉錄水平下降,MyoD干擾試驗也證明SKIP在肌源細胞中的表達活性依賴于MyoD的轉錄調控。該結果得到了日本神戶醫學研究所Tadaomi Takenawa團隊的證實,研究還發現SKIP從24 h開始表達上調,48 h達到峰值,且SKIP以MyoD依賴的方式表達上調[5]。這也解釋了SKIP在骨骼肌中高表達的原因,即肌肉組織中高表達的轉錄因子MyoD可能通過結合在SKIP 5′調控區的MyoD結合元件上增強其在骨骼肌中的轉錄。endprint

5 SKIP影響肌纖維發育的可能機制

研究表明肌肉特異性基因SKIP與肌纖維發育密切相關。SKIP基因雜合突變小鼠的比目魚肌和股四頭肌的重量顯著提高[18]。豬、牛、羊等經濟動物基因組內該基因的分布影響肌纖維發育的QTL,如豬肌纖維數目和大腿重、背最長肌高度以及犢牛出生重、綿羊胴體重等。盡管SKIP作為影響肌纖維發育的候選基因其作用機制仍有待闡明,SKIP可能通過以下機制調控肌纖維發育。

1)SKIP通過介導肌管中PI3K-Akt-mTOR的蛋白質合成信號,參與調控肌纖維的肥大過程。PI3K-Akt-mTOR信號可以通過增加特異性mRNA的翻譯控制蛋白質合成,是調控骨骼肌纖維肥大的重要信號通路。研究發現SKIP可抑制CHO細胞中的PI3K-Akt信號以及蛋白合成信號關鍵蛋白mTOR的下游靶蛋白p70S6活性[4]。在肌管細胞中,SKIP同樣也表現出了對PI3K-Akt信號的負調節作用[19],需要進一步證實的是在肌纖維形成過程中SKIP對mTOR及下游靶蛋白p70S6活性的影響。

2)SKIP通過介導成肌細胞的骨架重排,參與肌纖維的形成。當肌細胞開始分化,經歷細胞遷移、細胞融合和肌動蛋白細胞骨架重排等細胞形態學和動力學上的改變。作為PI3激酶的下游信號分子,PI(3,4,5)P3能促進肌動蛋白絲的結構組裝[20]。借助分子伴侶SODD[21],SKIP水解底物PI(3,4,5)P3來調控肌動蛋白絲結構組裝,調節細胞骨架的重排[20];或SKIP通過PI(4,5)P2影響肌動蛋白應力纖維的聚集[1],調控成肌細胞的融合。

3)SKIP通過抑制IGF2的表達負調控成肌分化,影響肌纖維數目,由骨骼肌源細胞的成肌分化所控制[22]。饑餓時,小鼠成肌細胞內的SKIP通過抑制自分泌促分化因子IGF2的表達負調控PI3K-AKT信號介導的成肌分化[5]。IGF2的下游信號Akt在促進成肌分化的許多環節中起作用,可調節細胞周期中G1→S期的進展[23],控制著分化早期myogenin的表達,肌管的成熟[24]等。有研究表明抑制SKIP基因的表達使融入肌管的細胞核增多,肌管形成加速[5]。因此SKIP控制著成肌分化的進度,是影響肌纖維數目的關鍵基因。

6 展望

在成肌細胞分化過程中,SKIP從24 h開始才表達上調。相對于分化12 h內表達上調的肌肉特異性基因,SKIP屬于晚期上調基因。某些磷酸酶的晚期表達能重塑細胞信號網絡[25]。因此,SKIP基因上調表達很可能是MyoD對成肌分化進行自我控制的方式。而像這類成肌分化晚期表達基因的轉錄調控模式也需要進一步探究,這是控制骨骼肌細胞成肌分化的關鍵機制。

參考文獻:

[1] IJUIN T, MOCHIZUKI Y, FUKAMI K, et al. Identification and characterization of a novel inositol polyphosphate 5-phosphatase[J]. J Biol Chem,2000,275(15):10870-10875.

[2] GURUNG R, TAN A, OOMS L M, et al. Identification of a novel domain in two mammalian inositol-polyphosphate 5-phosphatases that mediates membrane ruffle localization. The inositol 5-phosphatase skip localizes to the endoplasmic reticulum and translocates to membrane ruffles following epidermal growth factor stimulation[J]. J Biol Chem,2003,278(13):11376-11385.

[3] SCHMID A C,WISE H M,MITCHELL C A,et al. Type II phosphoinositide 5-phosphatases have unique sensitivities towards fatty acid composition and head group phosphorylation[J]. FEBS Lett,2004,576(1-2):9-13.

[4] IJUIN T, TAKENAWA T. SKIP negatively regulates insulin-induced GLUT4 translocation and membrane ruffle formation[J]. Mol Cell Biol,2003,23(4):1209-1220.

[5] IJUIN T, TAKENAWA T. Role of phosphatidylinositol 3,4,5-trisphosphate (PIP3) 5-phosphatase skeletal muscle- and kidney-enriched inositol polyphosphate phosphatase (SKIP) in myoblast differentiation[J]. J Biol Chem,2012,287(37):31330-31341.

[6] PARKER M H, PERRY R L, FAUTEUX M C, et al. MyoD synergizes with the E-protein HEB beta to induce myogenic differentiation[J]. Mol Cell Biol,2006,26(15):5771-5783.endprint

[7] CARDOSO C, LEVENTER R J, WARD H L, et al. Refinement of a 400-kb critical region allows genotypic differentiation between isolated lissencephaly, Miller-Dieker syndrome, and other phenotypes secondary to deletions of 17p13.3[J]. Am J Hum Genet,2003,72(4):918-930.

[8] SCHULTZ D C, VANDERVEER L, BERMAN D B, et al. Identification of two candidate tumor suppressor genes on chromosome 17p13.3[J]. Cancer Res,1996,56(9):1997-2002.

[9] CVEKL A J R, ZAVADIL J, BIRSHTEIN B K, et al. Analysis of transcripts from 17p13.3 in medulloblastoma suggests ROX/MNT as a potential tumour suppressor gene[J]. Eur J Cancer,2004,40(16):2525-2532.

[10] RONCUZZI L, BROGNARA I, BAIOCCHI D, et al. Loss of heterozygosity at 17p13.3-ter, distal to TP53, correlates with negative hormonal phenotype in sporadic breast cancer[J]. Oncol Rep,2005,14(2):471-474.

[11] THOMSEN H, LEE H K, ROTHSCHILD M F, et al. Characterization of quantitative trait loci for growth and meat quality in a cross between commercial breeds of swine[J]. Journal of Animal Science,2004,82(8):2213-2228.

[12] WIMMERS K, FIEDLER I, HARDGE T, et al. QTL for microstructural and biophysical muscle properties and body composition in pigs[J]. Bmc Genetics,2006,7:1-15.

[13] MILAN D, BIDANEL J P, IANNUCCELLI N, et al. Detection of quantitative trait loci for carcass composition traits in pigs[J]. Genetics Selection Evolution,2002,34(6):705-728.

[14] XIONG Q, CHAI J, DENG C, et al. Characterization of porcine SKIP gene in skeletal muscle development: Polymorphisms, association analysis, expression and regulation of cell growth in C2C12 cells[J]. Meat Sci,2012,92(4):490-497.

[15] THOMASEN J R, GULDBRANDTSEN B, SORENSEN P, et al. Quantitative trait loci affecting calving traits in Danish Holstein cattle[J]. J Dairy Sci,2008,91(5):2098-2105.

[16] CAVANAGH C R, JONAS E, HOBBS M, et al. Mapping Quantitative Trait Loci (QTL) in sheep. III. QTL for carcass composition traits derived from CT scans and aligned with a meta-assembly for sheep and cattle carcass QTL[J]. Genet Sel Evol,2010,42:36-50.

[17] XIONG Q, CHAI J, ZHANG P P, et al. MyoD control of SKIP expression during pig skeletal muscle development[J]. Mol Biol Rep,2011,38(1):267-274.

[18] IJUIN T, YU Y E, MIZUTANI K, et al. Increased insulin action in SKIP heterozygous knockout mice[J]. Mol Cell Biol,2008,28(17):5184-5195.

[19] XIONG Q, DENG C Y, CHAI J, et al. Knockdown of endogenous SKIP gene enhanced insulin-induced glycogen synthesis signaling in differentiating C2C12 myoblasts[J]. Bmb Reports,2009,42(2):119-124.endprint

[20] HILPELA P, VARTIAINEN M K, LAPPALAINEN P. Regulation of the actin cytoskeleton by PI(4,5)P2 and PI(3,4,5)P3[J]. Curr Top Microbiol Immunol,2004,282:117-163.

[21] RAHMAN P, HUYSMANS R D, WIRADJAJA F, et al. Silencer of death domains (SODD) inhibits skeletal muscle and kidney enriched inositol 5-phosphatase (SKIP) and regulates phosphoinositide 3-kinase(PI3K)/Akt signaling to the actin cytoskeleton[J]. J Biol Chem,2011,286(34):29758-29770.

[22] DAVOLI R, BRAGLIA S, RUSSO V, et al. Expression profiling of functional genes in prenatal skeletal muscle tissue in Duroc and Pietrain pigs[J]. J Anim Breed Genet,2011,128(1): 15-27.

[23] BOONSTRA J. Identification of a restriction point at the M/G1 transition during the ongoing cell cycle[J]. Adv Enzyme Regul,2007,47:208-221.

[24] ROTWEIN P, WILSON E M. Distinct actions of Akt1 and Akt2 in skeletal muscle differentiation[J]. J Cell Physiol, 2009,219(2):503-511.

[25] GUASCONI V, PURI P L. Chromatin: The interface between extrinsic cues and the epigenetic regulation of muscle regeneration[J]. Trends Cell Biol,2009,19(6):286-294.endprint

主站蜘蛛池模板: 日本一区二区三区精品国产| 亚洲欧美另类视频| 中文字幕色站| 亚洲精品免费网站| 国产又大又粗又猛又爽的视频| 91成人在线免费观看| 99热在线只有精品| 欧美三级视频网站| 国产精品青青| 97在线碰| 最新国产高清在线| 草草线在成年免费视频2| 91精品国产综合久久香蕉922| 成人午夜免费视频| 成年人视频一区二区| 99精品伊人久久久大香线蕉| 精品超清无码视频在线观看| 婷婷综合亚洲| 91在线一9|永久视频在线| 日韩欧美国产中文| 亚洲欧洲综合| 成人福利一区二区视频在线| 人妻无码一区二区视频| 在线观看亚洲国产| 一区二区日韩国产精久久| 国产精品一区二区不卡的视频| 久久99国产精品成人欧美| 成人在线观看一区| 亚洲高清无码久久久| 久久a毛片| 啪啪啪亚洲无码| 91久久国产综合精品| 国产午夜无码片在线观看网站| 亚洲黄网视频| 国产va免费精品| 99热国产在线精品99| 日韩无码视频播放| 日本午夜影院| 国产青青草视频| 五月天在线网站| 亚洲一级色| 精品五夜婷香蕉国产线看观看| 亚洲一区二区约美女探花| 久久一本精品久久久ー99| 国产亚洲高清在线精品99| 欧美精品成人一区二区视频一| 国产精品极品美女自在线网站| 日韩a在线观看免费观看| 在线看片中文字幕| 97国产在线视频| 大陆精大陆国产国语精品1024| 欧美在线免费| 97一区二区在线播放| 91精品亚洲| www.99在线观看| 精品视频一区在线观看| 国产三级a| 色婷婷亚洲综合五月| 国产精品一区二区国产主播| 九色国产在线| 67194亚洲无码| 久久人体视频| 日本高清免费一本在线观看| 欧美区一区二区三| 国产小视频网站| 成人在线不卡视频| 日本午夜影院| 伊人久久婷婷五月综合97色 | 国产国语一级毛片| 国产精品99一区不卡| 国产精品大白天新婚身材| 国产真实乱了在线播放| 欧美在线一二区| 亚洲一级毛片| 日韩毛片视频| 美女潮喷出白浆在线观看视频| 国产成人禁片在线观看| 亚洲高清中文字幕| 天堂av综合网| 精品無碼一區在線觀看 | 一级做a爰片久久免费| 91最新精品视频发布页|