微生物培養基中U(Ⅵ)和U(Ⅳ)測定方法的建立及穩定性研究

劉小玲，陳曉明,b，阮　晨，許　燕，王　超，廖祥兵，宋　收,羅學剛

(西南科技大學a.生命科學與工程學院，b.核廢物與環境安全國防重點學科實驗室，中國 綿陽　621010)

微生物培養基中U(Ⅵ)和U(Ⅳ)測定方法的建立及穩定性研究

劉小玲a，陳曉明a,b*，阮晨a，許燕a，王超a，廖祥兵a，宋收a,羅學剛a

(西南科技大學a.生命科學與工程學院，b.核廢物與環境安全國防重點學科實驗室，中國 綿陽621010)

摘要為了消除微生物培養基對U(Ⅵ)和U(Ⅳ)質量濃度測定的影響，建立微生物培養基中測定U(Ⅵ)和U(Ⅳ)質量濃度ρ的方法，優化了在稀鹽酸體系中利用U(Ⅵ)制備U(Ⅳ)的條件：10 mg/L U(Ⅵ)，鋅粒用量12 g/L，反應時間180 min.通過測定ρ總U減去ρU(Ⅵ)，計算出ρU(Ⅳ)，建立了同時測量微生物培養基中ρU(Ⅵ)和ρU(Ⅳ)的分光光度法.微生物培養基對U(Ⅵ)和U(Ⅳ)有明顯影響:LB和NA培養基對U(Ⅵ)的影響率分別為37.3%和47.9%；單組分中蛋白胨和牛肉膏對U(Ⅵ)的影響率較大，分別達到33.5%和19.7%；而U(Ⅵ)和U(Ⅳ)在TGY培養基中較穩定．采用該方法測量微生物培養基中ρU(Ⅵ)和ρU(Ⅳ)，能消除微生物培養基對U的影響，且具有精密度高、操作簡單等優點，能實現生物樣品中ρU(Ⅵ)和ρU(Ⅳ)的快速測量．

關鍵詞U(Ⅳ)的制備；分光光度法；微生物培養基；U穩定性

Establishment of Determination Method and Stability of

U(Ⅵ) and U(Ⅳ) in Microbial Medium

LIUXiao-linga,CHENXiao-minga,b*,RUANChena,XUYana,WANGChaoa,

LIAOXiang-bina,SONGShoua,LUOXue-ganga

(a. School of Life Science and Engineering, b. School of National Defense Science and Technology,

Southwest University of Science and Technology, Mianyang 621010, China)

AbstractIn order to eliminate the influence of microbial culture medium to the measurement of U(Ⅵ) and U(Ⅳ) mass concentration and establish detection method of U(Ⅵ) and U(Ⅳ) in microbial medium, the optimal preparation conditions of U(Ⅳ) in dilute hydrochloric acid system were discussed in this study. The optimal preparation conditions of U(Ⅳ) include U(Ⅵ) at a final concentration of 10 mg/L, zinc dosage of 12 g/L, the reaction time of 180 min. U(Ⅳ) by U(Ⅵ) and total U is determined. Spectrophotometry is established to measure the concentration of U(Ⅵ) and U(Ⅳ) in microbial medium. Microbial culture medium has significant effect on the measurement of U(Ⅵ) and U(Ⅳ). The influence rates of LB, NA medium to U(Ⅵ) are 37.3% and 47.9%, respectively. The influence rates of peptone and beef extract in single component to U(Ⅵ) are 33.5% and 19.7%, respectively. U(Ⅵ) and U(Ⅳ) in TGY medium are relatively stable. The proposed spectrophotometry method has high recovery rate, accuracy and precision, simple operation and so on, which could be used to measure the concentrations of U(Ⅵ) and U(Ⅳ) rapidly.

Key wordspreparation of U(Ⅳ); spectrophotometric method; microbial medium; U stability

隨著核工業的發展，含U放射性廢物不斷進入環境中，對人類健康和生態環境造成威脅．地殼表層平均鈾含量為3 μg/g[1]．鈾礦冶、核電站、核武器實驗等含鈾廢水中，鈾的質量濃度約為5 mg/L，遠高于國家排放標準(0.05 mg/L)，也遠高于世界衛生組織(WHO)規定飲用水標準最高鈾質量濃度50 μg/L[2-3]．高濃度鈾的放射性和化學毒性影響動物和人體腎臟和骨骼的正常功能[4]，因此，U污染的環境修復問題已成為當前的研究熱點．據報道微生物修復U污染比物理化學修復更具有顯著優勢[5]．自然環境中，U有Ⅲ，Ⅳ，Ⅴ和Ⅵ 4種價態，U(Ⅲ)和U(V)不穩定，極易歧化，因此U(Ⅵ)和 U(Ⅳ)是兩種最主要的價態[6]．

因U易受環境中pH值、有機物、氧化還原條件等的影響，其化學形態在實際環境體系中可互相轉化，增加了U價態分析的難度．

目前，微生物培養基中U(Ⅵ)和 U(Ⅳ)的測量方法為偶氮胂(Ⅲ)分光光度法[7-8]．其原理是U(Ⅵ)和 U(Ⅳ)在酸性條件下與偶氮胂(Ⅲ)形成1∶1絡合物，在特定波長處測其吸光度[9-10]．但偶氮胂(Ⅲ)分光光度法在U(Ⅵ)和U(Ⅳ)質量濃度的測量過程中，忽略了微生物培養基對U的影響及U(Ⅳ)的不穩定性，而不能同時準確測量其中U(Ⅳ)的質量濃度．因此，為了深入研究微生物對U的氧化還原作用，有必要在微生物培養基中建立一種能同時測量U(Ⅵ)和U(Ⅳ)質量濃度的方法．

通過將U的多形態分析轉為單一形態分析，即運用分光光度法，通過U的氧化還原，測量體系中U(Ⅵ)和總U的質量濃度ρ，ρ總U減去ρU(Ⅵ)得出ρU(Ⅳ)，可消除培養基中U(Ⅳ)不穩定性及微生物培養基對其影響問題．U(Ⅳ)作為U(Ⅵ)的還原產物，也是氧化還原過程中的反應試劑，其制備方法包括還原劑還原法(金屬還原劑、汞齊及合金還原劑、低價金屬化合物)、電化學法、光催化法等[11]．其中部分還原方法操作復雜、易受還原劑、催化劑及反應條件等的限制．因此需尋找一種操作過程簡單、不易引入干擾物質，避免在HCl、HF、稀H2SO4、低濃度HClO4中U(Ⅵ)還原產物U(Ⅳ)的再氧化作用的U(Ⅳ)制備方法；再運用U的氧化還原過程建立U(Ⅵ)和U(Ⅳ)的分光光度法；通過該方法研究U(Ⅵ)和U(Ⅳ)在微生物培養基中的穩定性，為微生物固定U(Ⅵ)選用適合的培養基提供理論依據．

1材料與方法

1.1　材料和試劑

TGY培養基(胰蛋白胨酵母葡萄糖培養基)：胰蛋白胨5 g，酵母粉3 g，葡萄糖1 g，定容至1 000 mL，pH 7.0~7.2．

LB培養基(溶菌肉湯培養基)：酵母粉5 g，蛋白胨10 g，氯化鈉10 g，定容至1 000 mL，pH 7.2~7.4．

NA培養基(牛肉膏蛋白胨培養基)：蛋白胨10 g，牛肉膏3 g，氯化鈉5 g，定容至1 000 mL，pH 7.0．

1 000 mg/L U(Ⅵ)標準儲備液：1.782 2 g醋酸雙氧U(UO2(CH3COO)2·H2O上海譜振生物科技有限公司)，溶解并定容至1 000 mL，搖勻，避光保存，其他各濃度U(Ⅵ)由此溶液稀釋獲得．

0.05%偶氮胂(Ⅲ)顯色液(上海阿拉丁)：偶氮胂(Ⅲ)0.05 g，定容至100 mL．

無砷鋅粒(成都市科龍化工試劑廠)．其他試劑均為國產分析純．

1.2　U(Ⅵ)標準曲線的制作

取1 000 mg/L U(Ⅵ) 2 mL，去離子水定容至50 mL，配制成40 mg/L U(Ⅵ)，8支10 mL比色管，分別加入40 mg/L U(Ⅵ)0，0.2，0.4,0.6,0.8,1.0,1.5,2 mL，0.05%偶氮胂Ⅲ1 mL，緩沖液定容至10 mL，充分搖勻，靜置30 min，于652 nm處測其吸光度．

1.3　U(Ⅳ)的制備方法優化

在6 mol/L HCl介質中，以鋅粒為還原劑，考察U(Ⅵ)初始濃度、鋅粒用量、反應時間等對U(Ⅳ)制備的影響，得出優化條件[12]．最后測量溶液殘留U(Ⅵ)，考察U(Ⅳ)的生成率．

(1)

式中ρ1為U(Ⅵ)起點質量濃度，mg/L；ρ2為U(Ⅵ)殘留質量濃度，mg/L．

1.3.1初始U(Ⅵ)質量濃度對U(Ⅳ)制備的影響分別取1 000 mg/L U(Ⅵ) 0.2,0.3,0.4,0.5,0.6,0.7,0.8,0.9,1.0 mL于50 mL容量瓶中，加入6 mol/L HCl 45 mL，加入鋅粒0.6 g，使其用量為12 g/L，定容．U(Ⅵ)最終分別為4,6,8,10,12,14,16,18,20 mg/L．

1.3.2鋅粒用量對U(Ⅳ)制備的影響取1 000 mg/L U(Ⅵ) 0.5 mL于50 mL容量瓶中，加入6 mol/L HCl 45 mL，加入鋅粒分別為0.2,0.4,0.6,0.8,1.0,1.2,1.4,1.6,1.8,2.0 g，定容．使鋅粒用量分別為4,8,12,16,20,24,28,32,36 g/L．

1.3.3反應時間對U(Ⅳ)制備的影響取1 000 mg/L U(Ⅵ) 0.5 mL于50 mL容量瓶中，加入6 mol/L HCl 45 mL，加入鋅粒使其用量為12 g/L，反應時間分別為90,120,150,180,210 min，定容．

1.4微生物培養基中ρU(Ⅵ)和ρU(Ⅳ)測試方法的建立

1.4.1微生物培養基中ρU(Ⅵ)和ρU(Ⅳ)分光光度法的建立微生物培養基中U(Ⅳ)由于易受溫度、空氣中氣體、體系中酸性介質等影響發生氧化，造成形態發生變化．在U(Ⅵ)和U(Ⅳ)的微生物培養基混合體系中，運用偶氮胂(Ⅲ)分光光度法先測量樣品中ρU(Ⅵ)，另取樣品將U(Ⅳ)氧化成總U，利用ρ總U減去ρU(Ⅵ)得出ρU(Ⅳ)，即整個研究過程中通過ρU(Ⅵ)和ρ總U定量ρU(Ⅳ)，使多組分分析轉換成單組分分析．該方法解決了微生物培養基對U的影響及U(Ⅳ)的不穩定性問題，能同時測量微生物培養基中ρU(Ⅵ)和ρU(Ⅳ)．

偶氮胂(Ⅲ)分光光度法測試ρU(Ⅵ):取2 mL樣品，1 mL 0.05%偶氮胂(Ⅲ)顯色液，0.4 mol/L氯乙酸-0.4 mol/L氯乙酸鈉緩沖液定容至10 mL，靜置30 min，波長652 nm處測量其吸光度；偶氮胂(Ⅲ)分光光度法測試ρU(Ⅳ)則先測試樣品中ρU(Ⅵ)，另取2 mL樣品采用1 mL濃硝酸加熱趕酸，保持微沸狀態，直到出現白色殘渣為止，溶解并定容至5 mL．用偶氮胂(Ⅲ)分光光度法測試ρU(Ⅵ)，此為ρ總U．含U混合體系中ρU(Ⅳ)由兩者的差值得出．ρU(Ⅳ)按式(2)計算：

ρU(Ⅳ)=ρ總U-ρU(Ⅵ).

(2)

式中ρU(Ⅳ)為U(Ⅳ)質量濃度，mg/L；ρ總U為總U質量濃度，mg/L；ρU(Ⅵ)為U(Ⅵ)質量濃度，mg/L．

1.4.2濃硝酸用量對U(Ⅳ)氧化率的影響取10 mg/L U(Ⅳ)25 mL于容量瓶中，TGY培養基定容至50 mL．分別加入0,0.5,1.0,1.5,2.0,2.5,3.0 mL濃硝酸對2 mL培養基中的U(Ⅳ)進行氧化，反應完成后偶氮胂(Ⅲ)分光光度法測量ρU(Ⅵ)，即ρ總U．考察濃硝酸用量對U(Ⅳ)氧化率的影響，U(Ⅳ)的氧化率按式(3)計算：

(3)

式中ρU(Ⅵ)為U(Ⅵ)質量濃度，mg/L；ρ總U為總U質量濃度，mg/L．

1.5　U在培養基中的穩定性研究

1.5.1U(Ⅵ)在TGY，LB，NA培養基中的穩定性研究取過濾除菌1 000 mg/L U(Ⅵ) 1 mL，分別加入至已滅菌的99 mL NA，LB，TGY的液體培養基中，得到最終10 mg/L U(Ⅵ)．30 ℃，120 r/min，震蕩60 h,間隔12 h 取樣，測量微生物培養基對U(Ⅵ)的影響率．微生物培養基對U(Ⅵ)的影響率按式(4)計算：

(4)

式中ρ1為U(Ⅵ)起點質量濃度，mg/L；ρ2為U(Ⅵ)殘留質量濃度，mg/L．

1.5.2培養基單組分對U(Ⅵ)穩定性的影響按單組分在微生物培養基中的比例，即3 g/L酵母粉,10 g/L 蛋白胨,3 g/L牛肉膏,5 g/L胰蛋白胨,1 g/L葡萄糖,10 g/L氯化鈉的液體培養基中加入過濾除菌的1 000 mg/L U(Ⅵ) 1 mL，得到最終10 mg/L U(Ⅵ)．30 ℃，120 r/min，震蕩60 h，間隔12 h取樣，考察培養基單組分對U(Ⅵ)的影響．

1.5.3U(Ⅳ)在TGY培養基中的穩定性研究等體積混合過濾除菌的10 mg/L U(Ⅳ)與滅菌TGY培養基， 30 ℃，120 r/min，震蕩60 h，間隔12 h取樣．含U混合體系中，測量2 mL樣品中ρU(Ⅵ)，另取2 mL樣品加入1 mL濃硝酸將其中U(Ⅳ)硝化為總U，測ρ總U，ρU(Ⅵ)，計算出ρU(Ⅳ)，考察TGY培養基中U(Ⅳ)的穩定性．

2結果與討論

2.1　U(Ⅵ)標準曲線的制作

以U(Ⅵ)質量濃度為橫坐標，吸光度為縱坐標，擬合后得到U(Ⅵ)標準曲線，結果如圖1所示.可知標準曲線方程y=0.040x-0.007，R2=0.999，在ρU=0.0~20.0 mg/L范圍內，吸光度-ρU關系符合比爾定律．

2.2　U(Ⅳ)的制備方法優化

2.2.1ρU(Ⅵ)對U(Ⅳ)制備的影響保持反應體系中的ρU(Ⅵ)分別為4，6,8,10,12,14,16,18,20 mg/L，HCl濃度6 mol/L，鋅粒12 g/L，總反應體積為50 mL．U(Ⅳ)生成率隨U(Ⅵ)初始濃度的變化見圖2．由圖2可知，在4~10 mg/L U(Ⅵ)終濃度范圍內，U(Ⅳ)生成率隨著ρU(Ⅵ)的增大保持穩定狀態，達到95%左右．但ρU(Ⅵ)為10~20 mg/L時，U(Ⅳ)生成率隨著ρU(Ⅵ)的增加，生成率急劇下降．因此，選擇最適ρU(Ⅵ)為10 mg/L．

圖1　U(Ⅵ)標準曲線Fig.1　Standard curve of U (Ⅵ)

圖2　U(Ⅵ)質量濃度對U(Ⅳ)制備的影響Fig.2　Influence of U (Ⅵ) concentration on preparation of U (Ⅳ)

2.2.2鋅粒用量對U(Ⅳ)制備的影響保持反應體系中的ρU(Ⅵ)為10 mg/L，HCl濃度為6 mol/L,總反應體積為50 mL，反應體系中的鋅粒用量分別為4,8,12,16,20,24,28,32,36 g/L．U(Ⅳ)生成率隨鋅粒用量的變化見圖3．由圖3可知，鋅粒用量在4~12 g/L范圍內，U(Ⅳ)生成率隨著鋅粒濃度的增加而增大．當鋅粒用量為12 g/L時，生成率達到最大．但當鋅粒用量大于28 g/L時，生成率呈明顯減小趨勢，且有典型的黑色絮狀沉淀．推測鋅粒過量時，會對ρU(Ⅵ)的測量有較大影響．因此選擇最適宜鋅粒用量為12 g/L．

2.2.3反應時間對U(Ⅳ)制備的影響保持反應體系中的ρU(Ⅵ)為10 mg/L，HCl濃度為6 mol/L,總反應體積為50 mL，鋅粒12g/L，反應時間分別為90~210 min．U(Ⅳ)生成率隨反應時間的變化見圖4．

圖3　鋅粒用量對U(Ⅳ)制備的影響Fig.3　Influence of zinc dosage on preparation of U (Ⅳ)

圖4　反應時間對U(Ⅳ)制備的影響Fig.4　Influence of reaction time on preparation of U (Ⅳ)

由圖4可知，U(Ⅳ)生成率隨著反應時間的增加而緩慢增大，當反應時間達到180 min時，再增加反應時間，U(Ⅳ)生成率變化不明顯．因此，體系中最適宜反應時間為180 min．

從圖2~圖4得出，U(Ⅵ)初始質量濃度、鋅粒用量、反應時間是影響U(Ⅳ)制備的3個重要因素．ρU(Ⅵ)為10 mg/L，鋅粒為12 g/L,反應時間180 min是U(Ⅳ)制備的最優條件，此時U(Ⅳ)的生成率達到95%．這與李斌等[13]報道通過肼催化還原U(Ⅵ)制備U(Ⅳ)的生成率99%相比雖略低，但利用肼為還原劑制備U(Ⅳ)易受溫度、還原劑、催化劑及反應條件等的影響．研究過程中采用鋅粒還原U(Ⅵ)制備U(Ⅳ)與其他制備U(Ⅳ)的方法相比具有明顯的優勢，操作過程簡單、快速、避免了U(Ⅳ)的不穩定性問題及其他制備U(Ⅳ)過程中易受操作工藝和實驗條件限制的問題．

2.3　微生物培養基中ρU(Ⅵ)和ρU(Ⅳ)測試方法的建立

圖5　硝酸用量對U (Ⅳ)氧化率的影響　Fig.5　Influence of the amounts of nitric acid on oxidation rate of U (Ⅳ)

本研究與劉金巍等[15]指出地質樣品經HF-HNO3-HCl-HClO4硝化后，樣品中有機質對U的測量無干擾一致，說明濃HNO3氧化效率高，可消除培養基中氨基酸和有機質等大分子物質對ρU測量的影響．

2.3.2分光光度法精密度和準確度分析5 mg/L U(Ⅵ)和5 mg/L U(Ⅳ)的等體積混合TGY培養基中，運用偶氮胂(Ⅲ)分光光度法結合氧化還原過程平行測定5次，進行精密度和準確度分析，結果見表1．

表1　方法的精密度和準確度

由表1和2.1及文獻[9]可得，ρU(Ⅵ)測量的線性范圍為0.05~20.0 mg/L，回收率為96%，RSD=1.7%，誤差為-4%．因此，本方法能用于生物樣品中U(Ⅵ)和U(Ⅳ)的測定．

2.4　U在培養基中的穩定性研究

2.4.1U(Ⅵ)在TGY，LB，NA培養基中的穩定性研究采用分光光度法考察10 mg/L U(Ⅵ)在TGY,LB,NA微生物培養基中的穩定性，結果見圖6．由圖6可知，蛋白胨、牛肉膏、氯化鈉組成的NA培養基對ρU(Ⅵ)的影響最大，48 h影響率可達到47.9%；酵母粉、蛋白胨、氯化鈉組成的LB培養基作用48 h對ρU(Ⅵ)的影響率達到37.3%；60 h后，NA和LB培養基對U(Ⅵ)測量的影響率呈鋸齒狀的趨勢，可能是培養基對U(Ⅵ)的作用不穩定，具體原因還待探究．胰蛋白胨、酵母粉、葡萄糖組成的TGY培養基作用12 h對ρU(Ⅵ)的影響率僅為5.6%．Halbach等[16]通過研究花崗巖基巖中有機物與U結合實驗表明: 有機物官能團通過離子交換機制和等量鈾酰離子進行結合．NA和LB培養基中的主要成分蛋白胨、牛肉膏等有機質和氨基酸類物質，其官能團可能與U(Ⅵ)結合．

2.4.2培養基單組分對U(Ⅵ)的穩定性的影響由2.4.1可知U(Ⅵ)在LB及NA培養基中不穩定，因此進一步考察了全組分中一定比例的酵母粉、蛋白胨、牛肉膏、胰蛋白胨、葡萄糖、氯化鈉對10 mg/L U(Ⅵ)的影響，結果見圖7．由圖7可知，各單組分對U(Ⅵ)的影響率分別為7.4%,33.5%,19.7%,2.8%,2.7%,5.2%．結果表明由蛋白胨、牛肉膏、氯化鈉組成的NA培養基全組分對U(Ⅵ)的影響相對TGY和LB培養基較大．Li等[17]研究了芽孢桿菌屬dwc-2對U的吸附機制，結果表明芽孢桿菌屬dwc-2對U(Ⅵ)的吸附是復雜的，至少涉及生物集聚、離子交換和復合體形成．也有文獻通過研究微生物對U(Ⅵ)的還原物機制表明：其還原機制較復雜，包括U(Ⅵ)和細胞表面發生了離子交換、成核、螯合、微沉淀、酶對U(Ⅵ)的還原等作用[18-19]．曾峰等[20]還指出一定濃度U脅迫會使植物羥基、羧基等發生明顯變化．微生物培養基主要成分為碳源、氮源和無機鹽，包括一些特殊官能團、陰離子、陽離子等，推測U(Ⅵ)可能與培養基中的有機質、氨基酸的某些基團發生了絡合、螯合等作用，與培養基中的陰陽離子發生了離子交換作用，從而影響了ρU(Ⅵ)的測量．其中蛋白胨、牛肉膏影響較大，可能是其多肽和氨基酸類物質中R基含有的苯環共軛雙鍵系統，與U(Ⅵ)發生絡合反應，說明培養基中有機物中某些基團能與金屬陽離子發生結合，這與郭麗艷等[21]研究不同物質對鉻價態測定結果的影響研究結果相似．

圖6　TGY，LB，NA培養基對U(Ⅵ)的影響Fig.6　Influence of TGY, LB, NA medium on U (Ⅵ)

圖7　微生物培養基單組分對U(Ⅵ)的影響Fig.7　Influence of microbial medium single-component on U(Ⅵ)

圖8　TGY培養基對U(Ⅳ)的影響Fig.8　Influence of TGY medium on U (Ⅳ)

2.4.3U(Ⅳ)在TGY培養基中的穩定性研究10 mg/L U(Ⅳ)加入等體積TGY培養基中，即為5 mg/L U(Ⅳ)．按1.5.3步驟考察了U(Ⅳ)在TGY培養基中的穩定性，結果見圖8．由圖8可知，TGY培養基對U(Ⅳ)的影響在12~60 h內基本保持穩定，影響率僅為8.6%，表明U(Ⅳ)在TGY培養基中保持穩定．由圖6可知，U(Ⅵ)在TGY培養基中保持穩定，即U(Ⅵ)和U(Ⅳ)在TGY培養基中均能保持相對穩定，該研究對U在微生物培養基中的價態分析提供了基礎．

3結論

在稀HCl 體系中，以鋅粒為還原劑，考察了U(Ⅵ)質量濃度、鋅粒用量、反應時間對U(Ⅳ)制備的影響．其優化條件是U(Ⅵ) 10 mg/L,鋅粒12 g/L,反應時間180 min．

以ρU(Ⅵ)和ρ總U定量ρU(Ⅳ)，建立了測量微生物培養基中ρU(Ⅵ)和ρU(Ⅳ)的分光光度法．考察了濃硝酸用量對U(Ⅳ)氧化率的影響.測量ρU(Ⅵ)的線性范圍為0.05~20.0 mg/L，回收率為96%，RSD=1.7%，誤差為-4%．因此，本方法能用于生物樣品中ρU(Ⅵ)和ρU(Ⅳ)的測試．該方法與ICP-MS測量方法相比，具有操作簡單、價格便宜、不易引入干擾物質的特點，且該方法在含U混合體系中能實現ρU(Ⅵ)和ρU(Ⅳ)的同時測定，對微生物修復U污染具有重要意義．

運用分光光度法考察了微生物培養基中U(Ⅵ)和U(Ⅳ)的穩定性．結果表明，相對于NA和LB培養基而言，U(Ⅵ)和U(Ⅳ)在TGY培養基中能夠保持穩定.進一步考察了組成培養基一定比例的單組分對U(Ⅵ)的影響，得出牛肉膏、蛋白胨因含有氨基酸、有機質等物質，對U(Ⅵ)影響較大．通過穩定性考察可為微生物固定U(Ⅵ)選用適合的培養基提供參考．

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(編輯王健)

*通訊作者,E-mail：xmhyx99@163.com

基金項目：國家973計劃資助項目(2014CB846003);國防科工局資助項目(14Zg6101)；四川省生物質資源利用與改性中心基金資助項目 (13zxsk02);核廢物與環境安全協同創新中心基金(15yyhk05)

收稿日期：2015-01-16

中圖分類號O614.62

文獻標識碼A

文章編號1000-2537(2015)03-0022-07

DOI:10.7612/j.issn.1000-2537.2015.03.005