孫德旭,李向陽,王林,秦蘇萍
(1徐州醫學院人體解剖學教研室,江蘇徐州 221004;2 徐州醫學院病原生物學與免疫學教研室)
?
加巴噴丁對糖尿病神經病理痛大鼠背根神經節FGF-2表達的影響
孫德旭1,李向陽2,王林2,秦蘇萍2
(1徐州醫學院人體解剖學教研室,江蘇徐州 221004;2 徐州醫學院病原生物學與免疫學教研室)
摘要:目的觀察加巴噴丁(GBP)對鏈脲佐菌素(STZ)誘導糖尿病神經病理性痛(DNP)大鼠背根神經節成纖維細胞生長因子2(FGF-2)蛋白表達的影響,以探討其鎮痛機制。方法將80只SD大鼠隨機分為C組、DNP組、SC+DNP組和GBP+DNP組,各20只。除C組外,其他各組采用腹腔注射STZ建立DNP模型。SC+DNP組和GBP+DNP組在造模15天開始分別腹腔注射生理鹽水、GBP(50 mg/kg),每天1次,連續7 d。在造模前1天及造模后3、7、10、14、21、28天測定各組大鼠的縮足反射機械刺激閾值(PWMT)和縮足反射熱輻射潛伏期(PWTL);免疫組織化學法和Western blotting法檢測大鼠背根神經節中的FGF-2。結果與C組相比,DNP組、SC+DNP組、GBP+DNP組造模后3、7、10、14、21、28天PWMT和PWTL低(P均<0.05)。與DNP組及SC+DNP組相比,GBP+DNP組造模后21天PWMT和PWTL高(P均<0.05)。造模后21天,DNP組、SC+DNP組和GBP+DNP組背根神經節內FGF-2蛋白含量較C組高,GBP+DNP組較DNP組、SC+DNP組低(P均<0.05)。結論 GBP可通過抑制DNP大鼠背根神經節內FGF-2的表達,從而減輕大鼠神經病理性痛。
關鍵詞:加巴噴丁;糖尿病神經病理性痛;背根神經節;成纖維細胞生長因子2
糖尿病神經病理性痛(DNP)是糖尿病患者常見的并發癥[1]。患者可出現自發痛、痛覺過敏、誘發觸痛和其他不典型感覺異常,嚴重影響患者的生活質量,至今尚缺乏有效的治療手段。研究[2,3]表明,活化的星形膠質細胞在神經病理性痛的發生過程中起重要作用,是維持慢性疼痛的重要因素。成纖維細胞生長因子2(FGF-2)最初在背根神經節內被發現,由初級感覺神經細胞和星形膠質細胞產生,能夠激活星形膠質細胞,從而參與疼痛信號的轉導過程,可見FGF-2與疼痛的關系非常密切。加巴噴丁(GBP)是一種常用的鎮痛藥物,是臨床上用于治療神經病理性痛的一線藥物,鎮痛療效明確[4],但其鎮痛機制尚不明確。本實驗旨在觀察GBP對DNP大鼠痛覺行為及背根神經節FGF-2表達的影響,探討其鎮痛機理,為藥物的應用提供理論依據。
1材料與方法
1.1試劑與儀器鏈脲佐菌素(STZ,Sigma公司,美國),GBP(Sigma公司,美國),多聚賴氨酸(武漢博士德),FGF-2兔多克隆抗體(一抗,武漢博士德),二步法(非生物素)免疫組化試劑盒(PV-9001,北京中杉生物有限公司),BCA蛋白分析試劑盒(南通碧云天生物技術公司),血糖儀(中國歐姆龍公司),von Frey Hairs(美國Stoeling公司),IITC series 8型熱痛刺激儀(美國ITC公司)。
1.2實驗動物及分組成年健康雄性SD大鼠80只,體質量200~220 g,由徐州醫學院實驗動物中心提供,采用隨機數字表法,將其分為C組、DNP組、SC+DNP組和GBP+DNP組,各20只。
1.3DNP模型的制備及行為學指標檢測參照文獻[5]制備DNP模型,測定基礎痛閾后皮下注射STZ 70 mg/kg,給藥后第7天尾靜脈血糖穩定且>16.7 mmol/L為糖尿病模型制備成功,給藥后第14天痛閾降低幅度>基礎痛閾15%為DNP模型制備成功。STZ使用時溶于0.1 mol/L新鮮配制的枸櫞酸/枸櫞酸鈉緩沖液中(冰浴,pH4.5),C組注射相同劑量的枸櫞酸/枸櫞酸鈉緩沖液。SC+DNP組和GBP+DNP組于STZ注射第15天起分別腹腔注射生理鹽水、GBP 50 mg/kg,每天1次,連續7 d,腹腔注射給予GBP方法參照文獻[6]。在造模前1天、造模后3、7、10、14、21、28天,觀察各組大鼠行為學指標,即縮足反射機械刺激閾值(PWMT)和縮足反射熱輻射潛伏期(PWTL)。PWMT、PWTL檢測參照文獻[7,8]。
1.4 FGF-2檢測方法各組大鼠在第14、21、28天分別選取6、8、6只,在4%水合氯醛40 mg/kg深度麻醉下,迅速將其斷頭處死,冰上操作取L3~L5背根神經節。①采用免疫組織化學法。取大鼠背根神經節置于4%的多聚甲醛中固定1 d,石蠟包埋,修塊后連續切片,片厚4 μm,60 ℃烘干備用。切片常規入水,經微波修復后,0.01 mol/L的PBS漂洗2 min×3次,3%的去離子水孵育10 min,PBS漂洗2 min×3次,滴加一抗FGF-2(1∶100)4 ℃過夜,PBS漂洗2 min×3次,滴加聚合物輔助劑37 ℃孵育20 min,PBS沖洗2 min×3次,滴加辣根酶標記抗兔IgG聚合物,37 ℃孵育20 min,PBS沖洗2 min×3次,應用DAB溶液顯色,自來水充分沖洗、復染、脫水、透明、封片。陰性對照用PBS代替一抗。顯微鏡觀察見棕黃色為陽性,采用Olympus顯微鏡采集圖像。②采用Western blotting法。用玻璃研磨器10倍于組織的冰裂解液將組織機械地搗碎,充分勻漿。冰上裂解30 min后用移液器將裂解液轉移至1.5 mL離心管中。提取總蛋白并根據BCA法測定樣本蛋白濃度后備用。取等量樣本加至10% SDS-PAGE凝膠恒壓電泳,縮膠電壓70 V,分離膠電壓140 V。濕轉法將蛋白轉移至PVDF膜,5%脫脂牛奶封閉1 h后加兔抗FGF-2多克隆抗體(1∶200)4 ℃孵育過夜;TBST沖洗,3×15 min,加入堿性磷酸酶標記的羊抗兔二抗(1∶1 000),室溫搖床孵育1.5 h,用PBS洗滌后進行增強化學熒光反應,加入NBT/BCIP顯色液,待反應達到要求后,流水洗滌終止反應。所得條帶用Image J軟件進行光密度分析,獲得數據后統計分析。

2結果
各組大鼠不同時間PWMT、PWTL比較見表1、2。光學顯微鏡下,大鼠背根神經節內見散在分布的FGF-2陽性細胞,其胞質及核內見有呈棕黃色顆粒的免疫反應產物。觀察可見DNP組較C組陽性細胞數量多,陽性標記強度深;DNP組與SC+DNP組相比無明顯差異;GBP+DNP組與DNP組比較,陽性細胞數量少,陽性標記強度弱。C組、DNP組造模后14天背根神經節FGF-2蛋白相對表達量分別為0.42±0.03、1.34±0.10,兩組比較,P<0.05。C組、DNP組、SC+DNP組和GBP+DNP組造模后21天FGF-2蛋白相對表達量分別為0.45±0.32、1.41±0.63、1.23±0.36、0.78±0.41,C組與其他三組比較,GBP+DNP組與DNP組和SC+DNP組比較,P均<0.05;造模后28天四組FGF-2蛋白相對表達量分別為0.43±0.15、1.41±0.12、1.38±0.16、1.29±0.18,C組與其他三組比較,P均<0.05。

表1 各組大鼠不同時間PWMT比較

注:與C組相比,aP<0.05;與DNP組和SC+DNP組相比,bP<0.05;與同組造模前相比,cP<0.05。
注:與C組相比,aP<0.05;與DNP組和SC+DNP組相比,bP<0.05;與同組造模前相比,cP<0.05。
3討論
由STZ誘導的糖尿病動物模型中,糖尿病導致外周神經損傷,引起初級傳入傷害性感受器過度興奮,包括背根神經節產生自發性脈沖,參與疼痛的形成[9]。背根神經節內的大量衛星細胞被激活,增生肥大,最終形成膠質疤,其標志物膠質原纖維酸性蛋白明顯增多,并釋放TNF-α等致炎因子,而TNF-α能夠通過IL-1、Nav1.3、Nav1.8[10]等信號通路增強背根神經節內感覺神經元的興奮性,并誘導背根神經節內的膠質細胞和神經元合成FGF-2[11]。本實驗結果表明,正常大鼠背根神經節中FGF-2的表達較低,STZ誘導后14天背根神經節內FGF-2表達開始上調,第21天最高,此時大鼠的痛覺過敏、痛覺異常表現最為顯著,提示FGF-2的生成與痛覺過敏呈現相同的趨勢,提示FGF-2參與了神經病理痛的產生與維持。
FGF-2在周圍和中樞神經系統內均有分布。在神經病理痛發生時,脊髓內的星形膠質細胞和神經節內衛星細胞FGF-2的表達含量增加,FGF-2是具有神經營養性的多效性細胞因子,能夠激活星形膠質細胞,并影響神經元的興奮性,共同參與疼痛的形成過程。脊神經結扎模型中FGF-2表達的上調參與了機械痛覺過敏,而Madiai等[12]研究亦證實,在坐骨神經結扎大鼠神經痛模型中,通過鞘內注射抗FGF-2抗體,可以減輕大鼠的機械痛敏。本研究中GBP+DNP組大鼠腹腔注射GBP 7 d后,PWMT和PWTL均得到有效改善,且FGF-2的表達也同步下降,說明GBP可通過抑制FGF-2的表達起到鎮痛效果。
綜上可見,DNP大鼠FGF-2表達升高,GBP通過抑制FGF-2的表達可以減輕DNP。但GBP如何調節FGF-2的表達,以及FGF-2通路的作用底物尚不明確,有待進一步的研究。
參考文獻:
[1] 李全波,鄭寶森.糖尿病周圍神經痛研究與治療進展——2008年第12屆世界疼痛大會綜述之五[J].實用疼痛學雜志,2009,5(1):69-72.
[2] 張敬軍.星形膠質細胞的研究[J].中國藥理學通報,2006,22(7):788-791.
[3] 黃文祥,鄭雪琴,李恒,等.鞘內注射氟代檸檬酸對糖尿病大鼠神經病理性疼痛的影響[J].中國藥理學通報,2009,25(9):1259-1260.
[4] 張繼國,張顏波,楊明峰,等.加巴噴丁對大鼠內臟炎癥痛的鎮痛作用及機制初步研究[J].中國藥理學通報,2001,27(1):1610-1614.
[5] Hong S, Morrow TJ, Paulson PE, et al. Early painful diabetic neuropathy is associated with differential changes in tetrodotoxin-sensitive and -resistant sodium channels in dorsal root ganglion neurons in the rat[J]. J Biol Chem, 2004,279(28):29341-29350.
[6] Sung B, Lim G, Mao J. Altered expression and uptake activity of spinal glutamate transporters after nerve injury contribute to the pathogenesis of neuropathic pain in rats[J]. J Neurosci, 2003,23(7):2899-2910.
[7] Hargreaves K, Dubner R, Brown F, et al. A new and sensitive method for measuring thermal nociception in cutaneous hyperalgesia[J]. Pain, 1988,32(1):77-88.
[8] Chaplan SR, Bach FW, Pogrel JW, et al. Quantitative assessment of tactile allodynia in the rat paw[J]. J Neurosci Methods, 1994,53(1):55-63.
[9] Baron R. Peripheral neuropathic pain: from mechanisms to symptoms[J]. Clin J Pain, 2000,16(2 Suppl):S12-20.
[10] 劉先國.外周神經損傷引起病理性疼痛的機制[J].中山大學學報(醫學科學版),2009,30(6):641-644.
[11] Duobles T, Lima Tde S, Levy Bde F, et al. S100beta and fibroblast growth factor-2 are present in cultured Schwann cells and may exert paracrine actions on the peripheral nerve injury[J]. Acta Cir Bras, 2008,23(6):555-560.
[12] Madiai F, Goettl VM, Hussain SR, et al. Anti-fibroblast growth factor-2 antibodies attenuate mechanical allodynia in a rat model of neuropathic pain[J]. J Mol Neurosci, 2005,27(3):315-324.
收稿日期:(2015-07-24)
通信作者:秦蘇萍
基金項目:徐州醫學院院級科研課題(2014KJ)。
中圖分類號:R322.8;R364.5;R441.1
文獻標志碼:A
文章編號:1002-266X(2015)47-0025-03
doi:10.3969/j.issn.1002-266X.2015.47.009