李昌靜 , 王冬冬 , 王建琳, 王守春, 郭妍妍 , 尹燕博,3
(1.青島農業大學動物科技學院, 山東青島266109; 2.青島澳蘭百特生物工程有限公司,山東青島266101; 3.中國鴕鳥養殖開發協會鴕鳥疫病防制中心, 山東青島266109)
鴕鳥Ⅰ群禽腺病毒的分離鑒定、血清型鑒定以及Hexon蛋白基因序列分析
李昌靜1, 王冬冬1, 王建琳1, 王守春2, 郭妍妍2, 尹燕博1,3
(1.青島農業大學動物科技學院, 山東青島266109; 2.青島澳蘭百特生物工程有限公司,山東青島266101; 3.中國鴕鳥養殖開發協會鴕鳥疫病防制中心, 山東青島266109)
對3份來自不同地方的病死鴕鳥進行病理剖檢、病原分離鑒定,確診為Ⅰ群禽腺病毒感染,并成功分離到3株鴕鳥FAV-Ⅰ。采用PCR方法成功擴增2株臨床分離株的Hexon基因,分別克隆于pMD20-T載體,對其進行了核苷酸序列測定、同源性比較及遺傳進化分析。并運用Ⅰ群禽腺病毒12個標準毒陽性血清對其中2株毒進行了血清型鑒定。結果顯示,分離株2014.07.10-HBHD-TN、2014.07.19-HBHS-TN與12個標準株之間的同源性在72.5%~98.0%之間,其中與FAV-4的同源性最高是98.0%。在系統進化樹中,這兩個分離株均位于FAV-I的大分支中,且與FAV-4位于同一小分支。這2個分離株經血清學鑒定均為血清4型的毒株。
鴕鳥; FAV-Ⅰ; 分離鑒定; 序列分析; 血清學鑒定
禽腺病毒(Fowladenovirus, FAV)屬于禽腺病毒科禽腺病毒屬,根據其抗原性的不同可分為3個群,Ⅰ群禽腺病毒包括從雞、火雞、鵝和其他禽類分離的共12個血清型,它們都含有相同的群抗原。從雞體內分離到Ⅰ群禽腺病毒的情況已有很多報道,但從鴕鳥體內分離到Ⅰ群禽腺病毒的報道不多。在鴕鳥養殖場,鴕鳥的發病、死亡以及不良的孵化率都與腺病毒有關[1]。本實驗室分別在2014年7月10日、7月19日以及9月4日接診了來自河北不同地方的3批疑似Ⅰ群禽腺病毒感染的鴕鳥病例,并對其進行病理剖檢,病毒的分離鑒定,血清型鑒定以及基因系統進化樹分析。
毒株、試劑及血清 病料樣品來自我國河北省幾個鴕鳥養殖場;SPF種胚,購自山東省無特定病原雞實驗種雞場,由本實驗室孵化;克?、袢呵菹俨《綡exon蛋白全基因所用菌株為感受態細胞DH5α和pMD20-T載體,購自寶生物工程(大連)有限公司產品;Ⅰ群禽腺病毒12個血清型標準毒的陽性血清(由本實驗室制備并保存)。
2.1 引物設計與合成 根據GenBank中Ⅰ群禽腺病毒CELO株(AAU46933)的Hexon基因序列,應用Premier 5.0設計了Ⅰ群禽腺病毒的檢測引物和Hexon全基因的測序引物[由生工生物工程(上海)股份有限公司合成]如下[2-3]:

表1 本研究中應用的引物
2.2 樣品處理 對來自我國河北省幾個鴕鳥養殖場的疑似Ⅰ群禽腺病毒感染的鴕鳥進行剖檢、病理變化觀察,并取肝組織和腎組織按1:5的比例加入生理鹽水進行研磨,研磨后放-20℃冰箱反復凍融后備用。
2.3 病毒的雞胚分離 將處理后樣品經5 000 r/min離心10 min,取上清液經0.22 μm微孔濾膜過濾除菌后,通過卵黃囊途徑接種10日齡SPF雞胚,0.2 ml/L胚,同時設陰性對照。置37 ℃溫箱孵育24 h剔除死胚,收獲48 h以后死亡胚及19日齡活胚,并記錄雞胚死亡時間,觀察雞胚各組織器官的病變。按上述方法連傳3代后,收取胚肝和胚腎組織進行PCR鑒定。
2.4 雞胚分離物的PCR鑒定 胚肝和胚腎組織經處理后,離心取上清液,按常規方法提取核酸[3],再按以下PCR程序進行擴增:采用30 μL的PCR反應體系:DNA 模板2 μL,10×PCR Buffer(Mg2+free)3 μL,MgCl2(25 mmol/L)4 μL, dNTP(2.5 mmol/L)2.5 μL,Taq酶(5 U/μL)0.5 μL,檢測引物FAV-1、FAV-2各0.5 μL(25 nmol/L),加滅菌超純水17 μL,經94 ℃ 5 min預變性,然后94 ℃ 1 min、55 ℃ 1 min、72 ℃ 90 s,30個循環擴增,72 ℃終延伸10 min。4 ℃保存。反應結束后取PCR產物8 μL,以DL-2 000為Marker,1%瓊脂糖凝膠電泳,觀察擴增片段大小。
2.5 2個分離株的血清型鑒定 將經雞胚傳3代且PCR檢測為陽性的雞胚分離物作為病毒抗原,用未接毒的SPF雞胚胚肝和胚腎的混合樣作為陰性對照抗原,用Ⅰ群禽腺病毒12個血清型標準毒的陽性血清作為抗體,運用雙向免疫瓊脂擴散試驗對病毒進行血清學分型。
2.6 2個分離株Hexon蛋白基因序列測定及系統進化樹分析 按常規方法提取核酸,并用測序引物A1A2、B1B2、C1C2對目的基因進行PCR擴增。再將擴增的目的基因與pMD19-T載體進行連接,然后將連接產物轉化到感受態細胞DH5α中,涂平板進行藍白斑篩選,將白色菌落接種到LB液體培養基中,置37 ℃劇烈震蕩培養12~16 h后,進行PCR鑒定后[4],將陽性菌液送生工生物工程(上海)有限公司進行測序。測序結果經DNAStar軟件剪切拼接,得到完整的目的基因序列。
應用MEGA 4.1軟件,通過Clustal W方法,以Hexon基因編碼區核苷酸序列為基礎,對本研究2個分離株Hexon全基因與Ⅰ群禽腺病毒12個標準血清型代表株Hexon全基因(本實驗室測定-序列待提交)以及GenBank已注冊的禽腺病毒FAV-Ⅰ的代表株AAU46933(CELO株),參考株AY849321、AF074946 (同屬FAV-Ⅱ),Y09598 (屬FAV-Ⅲ)Hexon全基因進行核苷酸同源性鄰近排組分析,構建Hexon全基因系統發育進化樹。
3.1 臨床病理學觀察 發病鴕鳥不能站立,以肘關節著地,食欲減退,逐漸消瘦,肘關節腫大。剖檢可見,肝臟腫大,邊緣鈍圓,色淺呈土黃色,有條索狀出血;心臟畸形,心內膜有出血點;肺臟出血、淤血,有的可見豌豆大小增生物,呈乳白色;氣管出血;腎臟胰腺出血。
3.2 雞胚的病變觀察 接種雞胚后第5天出現死胚,第7天到第8天為死亡高峰,收集死胚及19日齡的未死胚。剖檢,觀察發現絨毛尿囊膜有不同程度增厚,呈云霧狀。胚體發育不良,瘦小,羽毛稀少,有的體表潮紅。肝臟腫大、出血,質脆呈灰黃色,有的表面及邊緣可見灰白色壞死點,邊緣有時呈灰白色彌漫性壞死。腎臟有不同程度腫大、出血。對照組正常無病變。
3.3 雞胚分離物的PCR鑒定 腺病毒的特異性引物對雞胚分離物和陰性對照進行PCR擴增后,擴增產物經1%瓊脂糖凝膠電泳,可以在508 bp處看見明顯的擴增條帶,而陰性樣品未擴增出條帶(如圖1所示)。結果說明,本次試驗成功分離到3株Ⅰ群禽腺病毒的雞胚分離物。

圖1 雞胚分離物PCR檢測結果
3.4 2個分離株的血清型鑒定結果 利用Ⅰ群禽腺病毒12個血清型標準毒的陽性血清,運用雙向免疫瓊脂擴散試驗對病毒進行血清學分型結果顯示,在2株分離株與血清4型的陽性血清之間均可見一條清晰的白色沉淀線,但與其他幾個陽性血清之間沒有沉淀線出現,說明本實驗室從鴕鳥體內分離到的2株Ⅰ群禽腺病毒是屬于血清4型。
3.5 2個臨床分離株Hexon全基因遺傳進化分析 同源性分析發現,2個分離株、12個標準株與FAV-Ⅰ的代表株AAU46933(CELO株)之間的同源性在74.8%~99.9%,與參考株AY849321、AF074946 (同屬FAV-Ⅱ),Y09598 (屬FAV-Ⅲ)的同源性分別是48.9%~52.5%、51.2%~57.5%。除此之外,分離株2014.07.10-HBHD-TN、2014.07.19-HBHS-TN之間的同源性為100%,且與12個標準株之間的同源性在72.5%~98.0%之間,其中與FAV-4的同源性最高是98.0%(如圖2所示)。

圖2 2個臨床分離株與禽腺病毒Ⅰ群、Ⅱ群、Ⅲ群代表株基因序列之間的同源性比較
如中插彩版圖3所示,12個血清型代表株和2個臨床分離株與Ⅰ群禽腺病毒(FAV-Ⅰ)代表株AAU46933(CELO株)位于同一個大的分支,親緣關系較近,表明12個血清型代表株和2個臨床分離株同屬于Ⅰ群禽腺病毒。并且這2個分離株均位于FAV-4所在的分支。參考株AY849321、AF074946 (同屬FAV-Ⅱ),Y09598 (屬FAV-Ⅲ)位于另外兩個分支,與 FAV-Ⅰ群親緣關系則較遠。
Ⅰ群禽腺病毒可以通過接種雞胚和細胞進行分離鑒定,常用的雞胚接種途徑有3種:卵黃囊接種,絨毛尿囊膜接種,尿囊腔接種。絨膜尿囊膜途徑接種較尿囊腔接種更易分離到病毒[5],但有報道已指出11個血清型的毒株經卵黃囊接種,可以在胚體中繁殖,而絨毛尿囊膜接種稍差[6]。血清學方法是I群禽腺病毒分型的常規方法[7-8]。分子生物學方法,如PCR、測序等,是通過比較分析基因序列對毒株進行基因分型。所以,本試驗采用了卵黃囊接種途徑,通過接種SPF雞胚成功從鴕鳥樣品中分離到3株Ⅰ群禽腺病毒。并運用血清學方法成功鑒定了其中2個分離株2014.07.10-HBHD-TN、2014.07.19-HBHS-TN的血清型,且這2個分離株均為血清4型。對這2個分離株進行同源性以及系統進化樹分析發現,兩分離株之間的同源性為100%,且都與FAV-4的同源性高達98.0%。除此之外,這兩個分離株在系統進化樹上與FAV-4是位于同一分支。
以上數據表明,本次試驗分離到的2個毒株是同一毒株在不同地方的感染,且該毒株可能是由于當地的家禽所攜帶的毒感染了野鳥,由野鳥帶到鴕鳥養殖場感染了鴕鳥,這只是一種推測,具體的情況還需要進一步考證。
從鴕鳥中分離到血清4型的Ⅰ群禽腺病毒,在我國還沒有報道。雖然在國外有從鴕鳥體內分離到Ⅰ群禽腺病毒的先例,但在我國并沒有得到足夠多的重視。本試驗表明,Ⅰ群禽腺病毒已經開始對我國鴕鳥養殖業產生影響了,這提示我們廣大鴕鳥養殖戶應該從現在開始做好Ⅰ群禽腺病毒的預防。
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Gene sequence analysis of hexon protein and separation identification and serotype identification of fowl adenovirus group Ⅰin ostrich
LI Chang-jing1, WANG Dong-dong1, WANG Jian-lin1, WANG Shou-chun2, GUO Yan-yan2, YIN Yan-bo1,3
(1.College of Animal Science and Technology, Qingdao Agricultural University, Qingdao 266109, China; 2.Qingdao Oland-Better Biological Engineering company, Qingdao 266001, China; 3.China association of ostrich farming development and epidemic prevention center, Qingdao 266109, China)
Three cases of ostriches came from different parts were diagnosed with fowl adenovirus of groupⅠ infections and 3 strains of FAV-Ⅰ were successfully isolated in ostriches. The nucleotide sequences of DNA of hexon gene of 2 isolates were amplified by PCR, and cloned into pMD20-T carrier, The cloned genes were then sequenced and analyzed. Serotypes of 2 isolates were identified by comparing with 12 serotype standard strains of fowl adenovirus group Ⅰ. The results showed that the homology between isolates of 2014.07.10 HBHD-TN, 2014.07.19 HBHS-TN and 12 standard strains is 72.5%-98.0%. Of them , it has the highest homology with FAV-4, which is up to 98.0%. In system evolutionary tree, both the two isolates were located in the same big branch of FAV-Ⅰ, and in the same small branches with FAV-4. The two isolates were identified as strains of serotype 4 by serological identification.
Ostrich; FAV-Ⅰ;isolation and identification; sequence analysis; serological identification
YIN Yan-bo
2015-11-16
畜禽重大疫病防控與高效安全養殖綜合技術研發重點專項(2016YFD0500806);山東省自然科學基金(ZR2010CM 014);山東省現代農業產業技術體系家禽產業創新團隊(SDAIT-13-011-03)
李昌靜(1987-),女,碩士,研究方向為獸醫病理學及相關分子生物學,E-mail:lichangjing2007_@126.com
尹燕博,E-mail:yanboyin2011@163.com
S852.65
A
0529-6005(2016)12-0014-03