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丙泊酚對心肌肥厚大鼠離體心臟功能的保護作用

2016-02-21 09:32:17劉飛君任俊杰王慧峰
中西醫結合心腦血管病雜志 2016年4期
關鍵詞:心功能功能實驗

劉飛君,任俊杰,劉 赟,王慧峰

丙泊酚對心肌肥厚大鼠離體心臟功能的保護作用

劉飛君1,任俊杰2,劉 赟2,王慧峰1

目的 觀察丙泊酚(propofol)對心肌肥厚大鼠離體心臟功能的影響,并探討其作用機制。方法 采用Langendorff心臟灌流實驗方法,觀察Propofol對心肌肥厚大鼠離體心臟功能的影響。觀察不同阻斷劑對Propofol作用的影響。結果 Propofol可增強心肌肥厚大鼠離體心臟心功能,心率減慢,主動脈收縮壓(LVSP-LVDP)升高,左室壓最大上升速率(+dp/dtmax)升高,左室壓最大下降速率(-dp/dtmax)降低,吲哚美辛預處理后,Propofol對心臟功能的影響減弱。結論 Propofol可以明顯改善心肌肥厚大鼠離體心臟功能,其作用可能與前列環素(PGI2)的合成有關。

心肌肥厚;丙泊酚;心功能;主動脈收縮壓;左室壓最大上升速率;左室壓最大下降速率

充血性心力衰竭(congestive heart failure,CHF)是各種病因所致心臟疾病的最終結局。雖然目前對CHF的防治取得了不少進展,但CHF仍然保持了很高的患病率和死亡率。其中心肌肥厚是引起CHF的重要原因之一,心肌肥厚可增加心肌耗氧量,降低冠脈血流儲備,甚至導致收縮舒張功能障礙。在心臟手術中,丙泊酚(propofol)是常用的靜脈麻醉藥,多用于麻醉誘導和術中維持。本實驗采用離體心臟灌流的實驗研究方法,探討丙泊酚對心肌肥厚大鼠離體心臟有無保護作用,為臨床用藥提供實驗依據。

1 材料與方法

1.1 試劑與儀器

1.1.1 試劑 丙泊酚注射液(AstraZeneca UK,規格為10 mg/mL),左旋硝基精氨酸甲酯(L-NAME,Sigma公司),吲哚美辛(Indo,Sigma公司),亞甲藍(MB,Sigma公司)。

1.1.2 儀器 Langendorff心臟灌流裝置,Powerlab生物信號采集分析系統購自澳大利亞ADInstruments公司,恒流泵購自蘭格恒流泵有限公司,超級恒溫器購自上海儀典儀表電子有限公司。

1.2 實驗動物 健康雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠,購自山西醫科大學實驗動物中心,體重(BW)為180 g~220 g。飼料由山西醫科大學實驗動物中心提供,每籠飼養大鼠4只,室溫保持在20 ℃~25 ℃,相對濕度50%左右,大鼠在購回1周后開始實驗。

1.3 制備大鼠心肌肥厚動物模型

1.3.1 模型制作 將42只雄性SD大鼠,標號后隨機分為兩組,其中模型組36只,空白組6只,分別稱取體重后記錄。模型組36只大鼠制作心肌肥厚模型:將L-甲狀腺素與0.5%的羧甲基纖維素鈉制成1 g/L混懸液,按照L-甲狀腺素0.5 mg/(kg·d)皮下注射,連續28 d則可制成大鼠心肌肥厚模型。空白組每日給予等體積的0.5%羧甲基纖維素鈉液。

1.3.2 模型鑒定 每次離體心臟灌流實驗結束后,從臺式液中取出心臟(空白組直接取),用濾紙將水分吸干,在電子天平上準確稱量心臟濕重(HW),將心房及瓣膜組織去除后,準確稱量心室濕重(VW)。兩者和大鼠體重由公式分別計算全心重量指數(HW/BW)和心室重量指數(VW/BW)。分別比較模型組和空白組的HW/BW和VW/BW。采用兩獨立樣本t檢驗:空白組HW/BW(3.07±0.30)mg/g,VW/BW 2.58±0.27;模型組HW/BW(4.61±0.47)mg/g,VW/BW 3.72±0.57。模型組與空白組相比差異有統計學意義(P<0.01)。實驗表明,模型組心室重量增加,心肌肥厚模型制作成功。

1.4 離體心臟的制備 猛擊大鼠枕部致昏,開胸解剖取出心臟,置入4 ℃臺氏液中,去除其余組織后置于Landendorff灌流裝置上,用充以95%氧氣和5%二氧化碳的臺氏液灌流(臺氏液成分:NaCl 140 mmol/L,MgCl21.0 mmol/L,KCl 5.4 mmol/L,Glu 10 mmol/L,NaH2PO40.33 mmol/L,CaCl21.8 mmol/L,HEPES 5.0 mmol/L),用NaOH調節pH值至7.36。起搏電極位于右室,刺激強度設定為二倍閾強度,刺激頻率為每分鐘200次。將一直徑3 mm~5 mm、充有一定臺式液的乳膠水囊經由左心房插入至左心室內,水囊導管的一端與壓力換能器連接,將灌流速度調整為10 mL/min,對室內壓進行測定。

測定指標:心率(HR)、左室收縮壓(LVSP)、左室舒張壓(LVDP)、左室壓最大上升速率(+dp/dtmax)、左室壓最大下降速率(-dp/dtmax)、主動脈收縮壓(LVSP-LVDP)。以主動脈收縮壓≥8 kPa為灌流成功標志,穩定約60 min,待所觀察的各心功能指標維持穩定后開始干預。

1.5 實驗方法

1.5.1 Propofol對心肌肥厚心臟的作用 抽取心肌肥厚大鼠12只,隨機分為對照組和Propofol組各6只。對照組持續灌流臺式液至實驗結束,Propofol組往灌流液中加入Propofol,使灌流液中Propofol的終濃度為50 μmol/L[1]。觀察兩組大鼠離體心臟的HR、LVSP、LVDP、+dp/dtmax、-dp/dtmax等心臟功能指標的變化情況。

1.5.2 不同阻斷藥對Propofol作用的影響 將24只心肌肥厚大鼠隨機分為4組,每組6只,Propofol組和Propofol+阻斷藥組,3種阻斷藥分別為NO合酶(eNOS)抑制劑L-NAME(1×10-4mol/L)、環氧合酶(COX)抑制劑Indo(1×10-5mol/L)、鳥苷酸環化酶(sGC)抑制劑MB(1×10-6mol/L)。待離體心臟灌流穩定后,Propofol組加入Propofol終濃度為50 μmol/L的臺式液,阻斷藥組則加入阻斷劑孵浴10 min后,再加入Propofol終濃度為50 μmol/L的臺式液,觀察Propofol對離體心肌肥厚心臟的作用。

2 結 果

2.1 Propofol對心肌肥厚大鼠離體心臟功能的影響 與對照組相比,Propofol可增強心肌肥厚大鼠離體心臟心功能,心率減慢(P<0.01),LVSP-LVDP升高(P<0.05),-dp/dtmax降低(P<0.01),+dp/dtmax升高(P<0.01),差異有統計學意義。詳見表1。

表1 兩組心肌肥厚大鼠離體心功能指標比較(±s)

2.2 不同阻斷藥對Propofol改善心功能作用的影響 Indo孵浴后,Propofol對離體心臟功能增強作用減弱,與Propofol組比較,差異有統計學意義(P<0.05或 P<0.01);L-NAME和MB孵浴后,Propofol對離體心臟功能增強作用與Propofol組比較,差異無統計學意義。詳見表2。

表2 各組心肌肥厚大鼠離體心功能指標比較(±s)

3 討 論

Langendorff離體心臟灌流裝置是研究心血管疾病的常用裝置。離體實驗的優勢在于它排除了神經、體液因素以及心臟前后負荷對心功能的影響。心率是反映心臟收縮舒張功能的一個重要指標,心率減慢,心輸出量減少可使血壓降低,心率減慢,從而使冠脈灌流時間增多,最終使心肌得到更多的血液供應,對心臟起保護作用。反映心臟收縮功能的指標主要為LVSP和+dp/dtmax,+dp/dtmax是評估心肌收縮力的常用指標,可間接反映心肌在收縮過程中的縮短速度,其數值與心肌收縮力呈正相關。反映心臟舒張功能的指標主要為LVDP和-dp/dtmax,-dp/dtmax可反映左心室的充盈程度、舒張功能及心室順應性,常作為心肌舒張參數和評估心肌早期舒張功能改變的敏感指標[2]。文獻表明,50 μmol/L Propofol對離體大鼠心臟具有保護作用[3-4]。本實驗研究表明,Propofol可以使心肌肥厚心臟的心率減慢,LVSP-LVDP、+dp/dtmax升高,-dp/dtmax降低,表明Propofol可以顯著增強心肌肥厚大鼠離體心臟的心功能。丙泊酚可減慢心率,部分是由于心臟傳導系統被抑制所致[5]。

許多信號物質在調節心臟收縮與舒張過程中起著至關重要的作用,例如,一氧化氮(NO)、前列環素(PGI2)等。NO可通過NO-sGC-cGMP 途徑,使sGC激活促使cGMP 生成,后者則進一步作用于cGMP依賴性蛋白激酶使Ca2+內流減少,增加Ca2+-ATP酶對Ca2+的攝取,或直接使收縮蛋白去磷酸化而影響心功能[6]。本實驗加入eNOS抑制劑L-NAME、sGC抑制劑亞甲藍MB后,Propofol對心臟收縮與舒張功能沒有變化,提示NO-sGC途徑沒有參與Propofol的改善心功能作用。PGI2是由COX催化花生四烯酸產生,Indo為COX的特異性抑制劑。在本實驗中應用Indo預孵離體心臟,再孵浴Propofol后,和單純孵浴Propofol的離體心臟相比,心率加快,LVSP-LVDP降低,+dp/dtmax降低,-dp/dtmax升高,提示PGI2可能參與Propofol的改善心功能作用。

綜上所述,Propofol可以明顯改善心肌肥厚大鼠離體心臟功能,其作用可能與PGI2的合成有關。

[1] 劉柳,龐勇,何東偉,等.丙泊酚對離體大鼠缺血再灌注心臟PI3K/Akt信號通路及內質網應激凋亡途徑的影響[J].中華醫學雜志,2012,92(37):2611-2614.

[2] Ji DB,Zhang LY,Li CL,et al.Effect of Hydroxysafflor yellow A on human umbilical vein endothelial cells under hypoxia[J].Vascul Pharmacol,2009,50(3-4):137-145.

[3] He W,Zhang FJ,Wang SP,et al.Postconditioning of sevoflurane and propofol is associated with mitochondnal permeability transition pore[J].J Zhejiang Univ Sci B,2008,9:100-108.

[4] Shao H,Li J,Zhou Y,et al.Dose-dependent protective effect of propofol against mitoehondrial dysfunction in ischaemic reperfused rat heart:role of cardiolipin[J].Br J Pharmacol,2008,153:1641-1649.

[5] 方開云,何祥,史靜,等.丙泊酚對家兔離體心臟電生理及心肌β1受體表達的影響[J].臨床麻醉學雜志,2011,27(8):818-819.

[6] Vaandrager AB,de Jonge HR. Signalling by cGMP-dependent protein kinases[J].Mol Cell Biochem,1996,157(1-2):23-30.

(本文編輯郭懷印)

1.太原鋼鐵(集團)有限公司總醫院(太原 030008);2.山西醫科大學第一醫院

王慧峰,E-mail:whf17701@163.com

R542.2 R256.2

A

10.3969/j.issn.1672-1349.2016.04.012

1672-1349(2016)04-0373-02

2015-10-19)

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