人乳腺癌斑馬魚移植瘤模型建立

陳錫強，韓利文，王希敏，王榮春，侯海榮，劉可春，彭維兵，孫　晨，韓　建

(山東省科學院生物研究所，山東省科學院斑馬魚藥物篩選平臺，山東濟南　250014)

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人乳腺癌斑馬魚移植瘤模型建立

陳錫強，韓利文，王希敏，王榮春，侯海榮，劉可春，彭維兵，孫晨，韓建

(山東省科學院生物研究所，山東省科學院斑馬魚藥物篩選平臺，山東濟南250014)

中國圖書分類號: R965．1; R737; R73-35

摘要:目的研究人乳腺癌斑馬魚移植瘤模型的建立方法及其相關的蛋白表達。方法分別選用MCF-7、T-47D、MDA-MB-231細胞系顯微注射至斑馬魚幼魚體內，考察不同乳腺癌細胞系在斑馬魚體內的定植遷移、細胞數量變化、細胞分布以及對斑馬魚腸下靜脈叢( subintestinal veins，SIVs)的影響，建立乳腺癌斑馬魚移植瘤模型;并考察JAK抑制劑對斑馬魚移植腫瘤的影響，并對相關蛋白表達的情況進行蛋白印跡分析。結果在接種細胞數大于每只200時，斑馬魚的腫瘤模型成功率大于比例0. 90; MB-231移植瘤在斑馬魚體內具有明顯的遷移特征，這種特征可被JAK抑制劑tofacitinib抑制( P＜0. 01) ;同時tofacitinib可明顯減少移植瘤模型體內MB-231的數量( P＜0. 01) ;移植瘤可促進SIVs增生，酪氨酸抑制劑PTK787可明顯地抑制移植瘤引起的SIVs的生長( P＜0. 01) ;蛋白印跡結果顯示，4 d斑馬魚胚胎自身HER2有表達，T-47D斑馬魚模型組組織中HER2表達增加; MB-231斑馬魚模型組組織中VEGFa高表達; tofacitinib處理后的移植瘤其p53表達增強。結論人源腫瘤通過微量顯微注射方法可成功建立斑馬魚乳腺癌移植瘤模型，該模型可用于抗腫瘤藥物的初步篩選研究。

關鍵詞:斑馬魚;移植瘤模型;乳腺癌;血管生成;抑制劑; tofacitinib

劉可春( 1964－)，男，博士，研究員，通訊作者，Tel: 86-0531-82605352，E-mail: hliukch@ sdas．org

乳腺癌是發生在乳腺腺上皮組織的惡性腫瘤。全球乳腺癌發病率自20世紀70年代末開始一直呈上升趨勢。據《2012中國腫瘤登記年報》公布的乳腺癌發病數據顯示:全國腫瘤登記地區乳腺癌發病率位居女性惡性腫瘤的第1位，女性乳腺癌發病率(粗率)全國合計為42. 55/10萬。經過30多年的研究，斑馬魚已經成為一種公認的模式動物，由于其繁殖周期短、胚胎早期透明、并在系統的發育、功能及疾病模型方面取到了豐富的研究結果［1－2］，近幾年斑馬魚的移植瘤動物模型在國際上剛剛興起，尤其是移植瘤在腫瘤遷移機制的研究方面成為了廣泛接受的模型。利用微量注射的方法，將人/鼠腫瘤移植入斑馬魚的腹腔中［3－4］，這種新模型在腫瘤增殖機制、腫瘤遷移基因研究、藥物活性評價等方面都有報道，這些探索性的研究對高通量篩選提供了新的工具和新的研究思路，對新藥的發掘具有重大的意義。本文研究建立以斑馬魚為動物載體，建立斑馬魚乳腺癌移植瘤模型，并對模型的生長特性、促血管生成、相關蛋白表達及抑制劑的作用進行初步的研究。

1　材料與方法

1．1實驗動物及瘤株實驗瘤株:乳腺癌MCF-7由自中國海洋大學惠贈，乳腺癌T-47D與MDA-MB-231均為聊城大學惠贈，凍存細胞復蘇后，傳代，常規培養于細胞培養箱37℃備用。實驗動物:選用野生型AB型斑馬魚與血管熒光轉基因斑馬魚Tg( VEGFR2: GFP)，系山東省科學院斑馬魚藥物篩選平臺提供。

1．2實驗儀器與耗材L-15、DMEM培養基與新鮮牛血清購自( GIBCO，批號分別為1300045、1122050; 0．25%胰酶-EDTA購自GIBCO(批號為1535318)，青霉素鈉與鏈霉素購自上海生工，酪氨酸酶抑制劑PTK787( Vatalanib)及麻醉劑三卡因( A5040)購自SIGMA- ALDRICH; JAK抑制劑tofacitinib( S500105)購自Selleck，脫膜劑pronase E購自Solarbio，CM-DiL活細胞染色劑( C7000，Invitrogen) ;微量注射儀ZGENEBIO PCO-1500購自力鈞生物科技有限公司，激光掃描共聚焦顯微鏡FV-1000來自OLYMPUS，伯樂Chemiodc XPS化學發光凝膠成像系統，無菌操作臺SW-CJ-2來自蘇州AIRTECH，5804R離心機由Eeppendorf提供，體視顯微鏡選用重慶光學儀器公司ZSA302。

2　方法

2．1斑馬魚胚胎的獲取選用成熟♀♂斑馬魚分開喂養，照明14 h/黑暗10 h交替進行，定時飼喂混合餌料;采胚胎時，取性成熟斑馬魚，按照♀∶♂=1∶1～3放入交配缸中，于次日10時獲得受精卵。對受精卵進行消毒和清洗后，加入斑馬魚胚胎培養用水中，置于28℃光照培養箱待用。

2．2乳腺癌細胞系微量注射前準備在受精卵發育24 h時，使用1 g·L－1Pronase E溶液脫去卵膜。在體視顯微鏡下挑選正常的斑馬魚胚胎，備用。無菌條件下將培養瓶中乳腺癌細胞除去培養基，PBS清洗2次后，加入胰酶消化，加入培養基終止消化，離心后換新的培養基，每毫升細胞懸液加入活細胞染色劑CM-DiL 7. 5 μL，37℃孵育5 min，然后在冰箱4℃孵育15 min，離心除去上清液，PBS清洗2次后，加入無血清培養基復懸，鏡下調整細胞密度達到3×108·L－1。

2．3微量注射條件參照Yong-Teng的實驗方法［5］，選用新配制0. 03%苯硫脲(抑制色素形成)孵育48 h pf的斑馬魚胚胎準備微量注射，加入適量三卡因輕度麻醉，放置在體視顯微鏡下，將不同濃度CM-dil染色后的乳腺癌細胞注射于胚胎卵黃囊后部，約0. 05～0. 2 μL，注射后斑馬魚用無菌水清洗，放入28℃培養箱。6 h后將死亡斑馬魚吸出，隨機分為模型組( micro-injection，micro-IJ)與用藥組，用藥組分別加入血管生成抑制劑PTK787或者JAK抑制劑tofacitinib，藥物處理48 h后，將幼魚麻醉后在共聚焦鏡下拍照，并用FV-10軟件分析紅色腫瘤細胞光密度( optical density，OD)。

2．4統計學方法腸下靜脈分析方法:參照文獻方法改進［4］，對腫瘤引起的對腸下靜脈進行拍照，并用FV-10軟件測量腸下靜脈面積。移植瘤遷移評價方法:參照Ghotra等［6］的試驗方法進行了改進，以斑馬魚卵黃囊后1/3處注射點為原點，按照周邊移植瘤劃出直線距離，利用軟件Image J 1. 43測量各個遷移細胞的遷移距離，計算總距離，數據用Graphpad prism 5. 0處理。各組幼魚逐條檢測剔除失敗樣本。

2．5Western blot分析在熒光鏡下計數結束后，取出斑馬魚，魚體粉碎勻漿，加入組織蛋白提取液，勻漿后冰浴靜置20 min，然后4℃離心10 min，得上清液為蛋白提取液。分光光度計測定蛋白量，取30 μg蛋白提取液，按照體積1∶1加入上樣緩沖液，進行SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳。然后把分離后的蛋白質轉移到PVDF膜上，5%的脫脂奶粉室溫封閉1 h。與兔抗鼠HER2抗體( 1∶1 000) 4℃過夜孵育。TBST洗滌后，加入羊抗兔IgG二抗( 1∶8 000)室溫孵育1 h。TBST充分洗滌2次后，ECL顯色，在化學發光成像系統拍照。利用Image J軟件測條帶灰度值，計算目的蛋白HER2的灰度比值。p53、VEGFa和β-actin的檢測方法過程與HER2相同。

2．6數據統計應用SPSS13. 0對實驗所得數據進行組間t檢驗。

3　結果

3．1乳腺癌細胞斑馬魚移植瘤成瘤性的生長特點斑馬魚微量注射乳腺癌細胞48 h后，各組死亡率介于5%～15. 7%，低于文獻報道0. 3～0. 4［7］;不同細胞系每個胚胎50 ～200個腫瘤細胞注射完畢后，移植成功率隨數量增加而增加，在200/只時造模成功比例超過0. 90。各模型呈現出不同的遷移規律: MCF-7呈現全身分布，在卵黃尾部與主動脈區域有分布; T-47D的分布較為局限，主要在卵黃區域及心臟分布; MDA-MB-231在斑馬魚胚胎全身均有分布，主要在循環系統附近分布。

3．2tofacitinib對斑馬魚移植瘤的影響模型組在微注射48 h后，模型組鏡下可見MB-231紅色腫瘤細胞在胚胎各個器官均有分布，較集中于卵黃部、卵黃延伸部，少量分布于頭部;用藥組紅色腫瘤細胞全身分布的情況消失，紅色細胞量減少且分布區域局限，或者僅局限于卵黃延伸部( Fig 2C、D) ; OD值顯示micro-IJ組與0. 04/0. 06 mmol·L－1tofacitinib組比較在細胞數量及分布距離差異均具有顯著性( P＜0. 01)。

3．3腫瘤細胞對斑馬魚腸下靜脈增殖的影響共聚焦鏡下觀察顯示:正常對照組腸下靜脈呈弓形，柵欄狀，連續無分支，有少量出芽;微量注射模型組顯示腸下靜脈有明顯增生，靜脈彎曲延長，出現側枝與分支，部分區域呈網狀結構，同時可見魚體內紅色腫瘤細胞;與模型組比較，PTK787組腸下靜脈叢OD明顯減少，出芽及側枝數量減少，用藥組模型組與空白對照組、用藥組比較差異有顯著性( Fig 3D)。

Fig 1 Modeling of human breast cancer in zebrafish

3．4蛋白印跡分析結果Western blot結果顯示，HER2高表達乳腺癌細胞T-47D細胞移植進入斑馬魚胚胎后，雖然AB胚胎在4 d自身有HER2表達，在T-47D細胞移植進入后，HER2表達量增加; MB-231細胞系移植后，VEGFa的量增加;在tofacitinib處理后的移植瘤胚胎，其p53表達量明顯增加。

4　討論

目前采用的乳腺癌的小鼠/大鼠模型是最經典的動物疾病模型，但是其成本高，周期長，需要輔助雌激素緩釋刺激成瘤，操作繁瑣［8－9］;乳腺癌的體外實驗雖然操作簡便，成本低，但與腫瘤體內增殖，遷移的規律差異較大，作為在體實驗的有益補充。斑馬魚移植瘤模型是近年來移植瘤模型研究熱點，在藥物研究中已經得到了廣泛的應用［10－12］，斑馬魚移植腫瘤模型具有成本較低、實驗周期短( 4～7 d)，受精后1周內無明顯免疫系統排異反應［13］，移植癌細胞清晰可見等優點;目前斑馬魚腫瘤移植主要采用胚胎期的幼魚，并多見于腫瘤細胞遷移相關基因功能研究與抗腫瘤的藥物篩選研究［14］;該模型兼顧了在體模型與體外實驗的優勢，減少了時間和成本，并滿足了腫瘤在體微環境的要求。

Fig 2 Xenografts in zebrafish larva after treatment with different concentrations of tofacitinib(±s)

在本研究發現不同類型的乳腺癌細胞在斑馬魚體內均能生長良好，但在遷移特性方面差異較大: MDA-231、MCF-7腫瘤細胞具有較強的遷移性，注射后48 h在胚胎多個部位有出現，與文獻實驗結果相似［15］;而T-47D腫瘤細胞遷移則不明顯，從本實驗結果驗證了移植瘤癌模型建立的成功率與細胞數量有關系，與較早的報道相同［16］，細胞系自身特性對斑馬魚體內腫瘤細胞的的遷移有直接影響。

Fig 3 Lateral view of xenograft TG zebrafish showing SIVs after treatment with PTK787 pass micro-IJ 48 h

乳腺癌HER2高表達和乳腺癌低生存率間有顯著的關聯，HER2基因在乳腺癌細胞中的表達水平是乳腺癌的診斷指標和預后的一個重要標志物［17－18］。而從Western blot實驗結果發現，HER2在斑馬魚胚胎早期發育階段有表達，從受精后10h至成年均有表達，而且在魚鰭、神經系統及鰭再生中發揮重要作用［19］，本實驗結果提示HER2高表達的T-47D細胞移植后可增加斑馬魚HER2表達。同樣人源腫瘤細胞的進入魚體后促進SIVs的數量明顯性的增加，并且VEGF的表達增強;同時斑馬魚模型的標記VEGFR2熒光血管數量增加，從而反應出VEGFR2表達也增強，說明移植瘤對VEGF配體/受體具有同時增強的作用，其對血管生成的促進作用強于單個促血管生成因子的實驗作用，而且這種作用可被酪氨酸酶抑制劑PTK787抑制。研究發現JAK1或JAK2敲除的人源癌細胞在斑馬魚體內的遷移能力都會變弱［5］，在本實驗中發現JAK抑制劑確實能夠抑制細胞的遷移，同時它可減少魚體內移植腫瘤細胞數量，并增強p53表達，表明tofacitinib除了對JAK/stat3通路有抑制作用外，抑制在體腫瘤細胞的作用與p53通路有關。

Fig 4 Western blot assay of zebrafish xenografts 48 h after injection

斑馬魚移植瘤模型的制作方法簡便、重復性佳、周期短，其自身比例0. 80基因與人具有保守性［20］，在多種癌細胞的遷移研究和藥物活性評價方面有獨特優勢，雖然斑馬魚胚胎移植瘤無乳腺組織，無法做到組織器官發病，但腫瘤細胞在斑馬魚胚胎中的存活、促血管生成、遷移特征、及相關分子的表達都具有較高相似度;同時腫瘤標志物的相關因子如VEGF、HER2等重要靶點與人類有較高的保守性，對于靶點藥物的評價展示了良好的適用性，因而在抗腫瘤的應用研究中得到認可，從目前的研究來看，隨著該模型的不斷深入研究，作為移植瘤模型其具有廣闊的研究價值，并且在藥物篩選方面具有獨特的優勢。

(致謝:本文所有試驗均在山東省科學院生物研究所藥物篩選室及生物公共實驗平臺完成并感謝中國海洋大學醫藥學院和聊城大學生物研究中心提供細胞系。)

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Model establishment of xenotransplantation of human breast cancer in zebrafish embryos

CHEN Xi-qiang，HAN Li-wen，WANG Xi-min，WANG Rong-chun，
HOU Hai-rong，LIU Ke-chun，PENG Wei-bing，SUN Chen，HAN jian
( Shandong Provincial Key Laboratory of Biosensor，Biology Institute of Shandong Academy of Sciences，Ji’nan 250014，China)

Abstract:AimTo investigate the modeling of breast cancer in zebrafish embryos and its related protein expression．Methods 48hpf wild type AB/TG( Transgenic) zebrafishs were micro-injected with breast cancer cell line: MCF-7，T-47D，MDA-MB-231 respectively，the relationship between the number of tumor and model application was investigated，and the number of subintestinal veins( SIVs) was detected under confocal microscope，as well as the metastasis of tumor cells in embryos; then the zebrafish xenografts of MB-231 were co-cultured with tofacitinib/ ptk787 for 48 h，optical density( OD) of the cell survival and subintestinal veins( SIVs) were evaluated under confocal microscope，and Western blot( WB) analysis was used to test microcircumstances related protein．Results When the number of inoculated cells was more than 200 per embryo，xenograft model rate woule be more than 0. 90; MB-231 xenografts showed metastasis feature in zebrafish，which could be inhibited by tofacitinib ( P＜0. 01)，while the number of xenograft MB-231 cells was reduced significantly( P＜0. 01) ; in another zebrafish xenografts SIVs assay，the tumor could promote the proliferation of SIVs，and 4 mg·L－1PTK787 showed inhibiton effect( P＜0. 01)．Western blot showed 4d T-47D xenograft zebrafish got more HER2 expression than AB embryos; VEGFa expression in zebrafish MB-231 model group was higher，and model zebrafish P53 expressi was higher after treated by tofacitinib．Conclusion

A zebrafish xenograft model of human brest cancer can be established，which demonstrates applicability for screening compounds in drug discovery studies．

Key words:zebrafish; xenograft; breast cancer; angiogenesis; inhibitor; tofacitinib

作者簡介:陳錫強( 1972－)，男，博士，助理研究員，研究方向:腫瘤藥理學，E-mail: cxqq@ sina．com;

基金項目:國家自然科學基金資助項目( No 81202584，31400979) ;山東省自主創新及成果轉化專項( No 2014ZZCX02105) ;山東省科技攻關項目( No 2013GHY11516)

收稿日期:2015－09－02，修回日期: 2015－10－18

文獻標志碼:A

文章編號:1001－1978( 2016) 01－0128－05

doi:10．3969/j．issn．1001－1978．2016．01．027