地錦草提取物對體外α-葡萄糖苷酶抑制及抗氧化活性研究

鄭 巧， 楊二磊， 朱 影， 屠 潔

（江蘇科技大學生物技術學院，江蘇鎮江212018）

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地錦草提取物對體外α-葡萄糖苷酶抑制及抗氧化活性研究

鄭 巧， 楊二磊， 朱 影， 屠 潔*

（江蘇科技大學生物技術學院，江蘇鎮江212018）

摘要:目的 研究地錦草（EuPhorbia humifusa Wi11d.）提取物對α-葡萄糖苷酶的抑制活性及其體外抗氧化活性。方法從地錦草40％、70％、95％乙醇提取物對α-葡萄糖苷酶的體外抑制活性中選擇最適乙醇體積分數，再對該提取物用乙醚、氯仿、水飽和正丁醇和水相進行萃取分離，比較對α-葡萄糖苷酶的抑制活性、自由基清除能力、鐵離子還原能力、羥自由基清除能力、超氧陰離子清除能力。結果 地錦草95％乙醇提取物的抑制活性較優，再經乙醚萃取獲得萃取物對α-葡萄糖苷酶的抑制活性最強，IC50值為78.8 μg/mL，化學成分分析顯示其含有較多的酚性成分。乙醚萃取物具有較好的抗氧化能力，其自由基清除能力EC50值為132.9 μg/mL，鐵離子還原能力EC50值為76.9 μg/mL，羥自由基清除能力EC50值為182.7 μg/mL，超氧陰離子清除能力EC50值為31.3 μg/m L。結論 地錦草95％乙醇提取物的乙醚萃取物具有較強的α-葡萄糖苷酶抑制活性，同時具有一定的抗氧化活性。

關鍵詞:地錦草；乙醇提取物；α-葡萄糖苷酶抑制活性；抗氧化活性

dol:10.3969/j.issn.1001-1528.2016.02.005

KEY W 0RDS: EuPhorbia humifusa；ethano1extract；α-g1ucosidase inhibitory activity；antioxidant activity

地錦草（EuPhorbia humifusa Wi11d.）又名血見愁，是大戟科大戟屬植物地錦草的全草，為一年生匍匐小草本植物。廣泛分布于我國各地，具有清熱解毒、涼血止血、抗氧化、抗真菌和抗乙型肝炎病毒等作用［1-5］。董福輪等［6］研究表明，地錦草配合其他中西醫治療能有效控制糖尿病患者空腹血糖，表明地錦草具有潛在的治療糖尿病的作用。但是，地錦草降糖活性物質基礎以及作用機制尚未闡明。

α-葡萄糖苷酶（EC.3.2.1.20，α-g1ucosidase）是一類存在于人體小腸刷狀緣上的水解酶，能夠催化碳水化合物非還原末端的α-1，4糖苷鍵的水解，釋放葡萄糖，主要包括蔗糖酶、麥芽糖酶、異麥芽糖酶和海藻糖酶等。α-葡萄糖苷酶的酶活性可以影響人體對蔗糖、淀粉、糊精等碳水化合物的吸收利用［7］。有報道指出通過抑制α-葡萄糖苷酶活性來治療某些疾病已經成為一種有效的臨床治療手段，其中，α-葡萄糖苷酶抑制劑在糖尿病治療中的運用最為成熟。目前α-葡萄糖苷酶抑制劑已被第三次亞太地區糖尿病治療藥物指南推薦為降低餐后血糖的一線藥物［8］，如阿卡波糖（acarbose）、伏格列波糖（vog1ibose）、米格列醇（mig1ito1）等。α-葡萄糖苷酶抑制劑通過可逆性抑制或競爭性抑制小腸刷狀緣上的α-葡萄糖苷酶活性，從而阻抑酶活性的發揮，阻滯雙糖水解為單糖，后延葡萄糖或單糖的吸收時間，減緩餐后高血糖的發生［9］。本研究將以α-葡萄糖苷酶體外抑制活性為追蹤指標，測定地錦草乙醇提取物對α-葡糖糖苷酶的抑制活性，進一步采用不同極性溶劑系統分離，并對各分離部位進行初步的化學成分分析，最后測定α-葡萄糖苷酶的抑制活性部位的抗氧化活性。以期為高效、安全的地錦草α-葡萄糖苷酶抑制劑的開發運用提供實驗基礎。

1 實驗材料與儀器

1.1 實驗材料 地錦草，取材于江蘇科技大學西校區，經植物學講師褚衍亮鑒定為大戟屬植物地錦草。

實驗小鼠:昆明小鼠，雄性，清潔級，（25± 2）g，江蘇大學實驗動物中心，許可證號，SCXK2012-0011。

1.2 實驗儀器 UV-9600紫外可見分光光度計（北京瑞利分析儀器公司）；RE-52D旋轉蒸發儀（上海青浦滬西儀器廠）；601超級恒溫水浴鍋（金壇市國旺實驗儀器廠）；TGL-16G冷凍離心機（上海安亭科學儀器廠）；1，1-二苯基-2-三硝基苯肼（DPPH）（日本和光純藥工業株式會社）；葡萄糖測定試劑盒購自南京建成科技有限公司；4-硝基酚為國產化學純；三羥甲基氨基甲烷（Tris）為國產生化試劑；甲醇為國產色譜純；磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、鐵氰酸鉀、三氯乙酸、氯化鐵、氯化鈉、蔗糖、碳酸鈉、醋酸、鹽酸等均為國產分析純。

2 實驗方法

2.1 地錦草樣品的預處理 將新鮮的地錦草全草清洗干凈，自然晾曬，揮發水分至樣品恒重，放入粉碎機中粉碎至粉末狀過80目篩，干燥低溫（4℃）保存備用。

2.2 地錦草95％乙醇提取物的制備 取3份地錦草粉末，分別加入100 mL的95％、70％、40％乙醇，攪拌浸提12 h，取上清液，重復3次，合并提取液，50℃減壓濃縮干燥，即得地錦草醇提取物。將得到的提取物冷凍干燥，4℃保存備用。

2.3 蔗糖酶的抑制實驗

2.3.1 蔗糖酶的提取 蔗糖酶制備方法參照文獻［10-11］略加修改而來，取成年小鼠小腸，用生理鹽水沖洗干凈并剪碎，加入少許石英砂和聚乙烯吡咯烷酮，研磨至勻漿，在0～4℃下8 000 r/min離心15 min。取上清液，即為粗酶液。以蔗糖作為底物測定蔗糖酶的活性。

2.3.2 蔗糖酶的抑制活性測定 蔗糖酶抑制活性的測定參照Kim［12］的方法略加修改而來，反應體系如下: 10 μL 2 mo1/L蔗糖溶液，加入70 μL 0.05 mo1/L PH 6.8的磷酸緩沖液，再加入10 μL提取物，37℃預熱5 min后，加入10 μL酶液（約0.1 U，實驗條件下1 min內水解麥芽糖產生1 μmo1葡萄糖所需酶量，定義為一個酶活力單位）啟動反應。37℃反應30 min，加入100 μL 0.05 mo1/L PH 8.8 Tris-HC1緩沖液終止反應。以提取溶液代替抑制劑作為全酶管；以緩沖液代替酶液作為校正管。酶促反應產生的葡萄糖的測定采用葡萄糖測定試劑盒（葡萄糖氧化酶-過氧化物酶法）。在酶促反應體系中分別加入不同質量濃度的抑制劑，測定其對蔗糖酶活性的影響。按公式1計算抑制率。

2.3.3 IC50值的測定 以橫坐標為酶促反應體系中抑制劑的質量濃度，縱坐標為抑制率，繪圖，計算并生成公式，其抑制率為50％時的抑制劑濃度，即為IC50值。

2.4 95％乙醇提取物的分部萃取 將所得的95％乙醇提取物，用少量的水混懸，再倒入3倍體積的乙醚混勻，接著倒入分液漏斗中，劇烈振蕩30 min，室溫下靜置至兩相完全分離，即得上相乙醚相，下相繼續依次用氯仿、水飽和正丁醇萃取，分別得到氯仿相、正丁醇相和萃余相（水相）。將各萃取液減壓濃縮至膏狀體，4℃保存，待用。

2.5 地錦草萃取物的化學成分分析 化學成分分析按照謝奇［13］的方法略加修改而來。采用三氯化鐵法分析酚性成分，PH值法分析脂肪酸成分，醋酸鉛法分析黃酮類成分，碘-碘化鉀法和泡沫實驗分析生物堿成分，氯仿-濃硫酸法分析三萜類成分，苯酚濃硫酸法分析多糖類成分。

2.6 地錦草乙醚萃取物(DEEF)抗氧化性能的測定

2.6.1 DEEF的DPPH自由基清除能力的測定DPPH自由基清除能力的測定參考Liu［14］的方法略加修改而來。以甲醇梯度稀釋地錦草提取液，取1.5 mL樣品加入2.5 mL DPPH，1.5 mL 0.06 mmo1/L甲醇溶液，混勻，20 min后測定517 nm處吸光度；同法1.5 mL甲醇加入2.5 mL DPPH溶液混勻測定吸光度。每份樣品平行操作3次，取平均值，以維生素（Vc）為陽性對照。按照公式2計算清除率。清除能力以IC50來表示，IC50即清除率為50％時所需的提取物質量濃度。其中A0為空白對照；Ai為反應液的吸光度值；Aj為不加DPPH應用液時提取液自身的吸光度值。

2.6.2 DEEF的鐵離子還原力的測定 鐵離子還原力的測定按照Liu［14］的方法略加修改而來。1.0 mL提取液中，加入2.5 mL 0.2 mo1/L PH 6.6磷酸緩沖液，然后加入2.5 mL 1％六氰合鐵酸鉀，50℃水浴30 min后加入2.5 mL 10％三氯乙酸，混均后以4 000 r/min離心10 min，取上清液2 mL同2 mL甲醇和0.4 mL 0.1％三氯化鐵混均，于700 nm比色測定。同時以Vc作為陽性對照，考察樣品的還原力。還原力以IC50來表示，IC50為吸光值為0.5時的提取液質量濃度值。

2.6.3 DEEF的羥自由基清除能力的測定 羥自由基清除能力的測定按照梁鵬［15］的方法略加修改而來，以甲醇溶液梯度稀釋地錦草提取液至2 mL，依次加入6 mmo1/L的FeSO42 mL，2.4 mmo1/L的H2O2溶液2 mL，搖勻，靜置10 min，再加入6 mmo1/L的水楊酸溶液2 mL搖勻，然后37℃水浴30 min，離心（3 000 r/min，10 min），取上清液于510 nm處測吸光值，以Vc作為陽性對照。按照公式3計算清除率。清除能力以IC50來表示，IC50即清除率為50％時所需的提取物濃度。其中A0為空白對照；Ai為反應液的吸光度值；Aj為不加水楊酸時提取液自身的吸光度值。

2.6.4 DEEF的超氧陰離子清除能力的測定 超氧陰離子清除能力的測定按照李明靜［16］的方法略加修改而來。甲醇溶液梯度稀釋地錦草提取液至1.0 mL，加入3 mL Tris-HC1（PH=8.2），25℃水浴20 min后，加入100 μL 10 mmo1/L鄰苯三酚，精確反應4 min，滴入100 μL 6 mo1/L HC1終止反應，在325 nm處測定吸光值。每個試驗作3個平行樣?？瞻捉M以蒸餾水代替樣品溶液。以抗壞血酸作為陽性對照，考察樣品清除·O-2的能力。清除能力以IC50來表示，IC50即清除率為50％時所需的提取物濃度。按照公式4計算清除率。

3 結果與分析

3.1 不同體積分數乙醇溶液對地錦草提取率的影響 10 g地錦草粉末經95％、70％、40％乙醇提取，過濾并旋轉蒸發，以及減壓濃縮干燥之后，得到3種提取物。提取率如圖1所示。實驗結果表明: 40％乙醇提取地錦草的提取率為11.001％；70％乙醇提取地錦草的提取率為15.872％；95％乙醇提取地錦草的提取率為10.594％。

圖1　不同體積分數乙醇對地錦草的提取率的影響Flg.1 Effects of dlfferent ethanol concentratlons on the extractlon rate from Euphorbia Humifusa

3.2 地錦草提取物對鼠腸蔗糖酶的抑制活性 將所得到的95％乙醇提取物、70％乙醇提取物、40％乙醇提取物與二甲亞砜混勻配成溶液，使得反應體系的抑制劑最終的質量濃度為1、5、10、50、100 μg/mL。測得其對鼠腸蔗糖酶抑制率，結果如圖2所示。

地錦草95％乙醇提取物對蔗糖酶的抑制活性明顯好于40％乙醇提取物和75％乙醇提取物。在1～100 μg/mL范圍內，地錦草40％與95％乙醇提取物對蔗糖酶的抑制呈現先上升后下降的趨勢，在1～10 μg/mL范圍內隨著抑制劑質量濃度的增加，抑制率增高；在10 μg/mL時，地錦草95％乙醇提取物對蔗糖酶的抑制率達到48％；在10～100 μg/mL之后隨著抑制劑質量濃度的增加，抑制率降低。

圖2　地錦草提取物對鼠腸蔗糖酶的抑制率Flg.2 Inhlbltory actlvltles of Euphorbia Hum ifusa at d lfferent concentratlons onα-glucosldase

3.3 95％乙醇提取物的萃取分離 由前面實驗得到的最好的抑制酶活性的相是95％乙醇相，我們對該相進一步進行物質的萃取分離，選擇不同極性的溶劑:乙醚、氯仿、水飽和的正丁醇進行萃取分離，加上最后水相，得到四相。各萃取物的得率結果如圖3所示。

圖3　地錦草9 5％乙醇提取物各萃取物的萃取率Flg.3 Extractlon of 95％ ethanol extract of Euphorbia hum ifusa extracts rate

萃取率分別為乙醚相7.093％，氯仿相0.569％，水飽和正丁醇相14.450％，水相9.821％。

3.4 不同萃取物對蔗糖酶的抑制率 將所得到的乙醚萃取物與二甲亞砜混勻，使得反應體系的抑制劑最終的質量濃度為1、10、25、50、75、 100 μg/mL，測其抑制率，同樣將氯仿相、水飽和的正丁醇相和水相分別配成相同質量濃度，得到對鼠腸蔗糖酶抑制率，結果如圖4所示。

圖4　不同萃取物對蔗糖酶的抑制率Flg.4 Inhlbltlon ratlo of dlfferent extracts on α-glucosldase

95％地錦草乙醚萃取物對蔗糖酶的抑制率在1～100 μg/mL范圍內隨著抑制劑質量濃度的增加而增高；95％地錦草水飽和正丁醇萃取物對蔗糖酶的抑制率在1～100 μg/mL范圍內并不明顯，在100 μg/mL時抑制率僅達到22％；95％地錦草氯仿萃取物對蔗糖酶抑制率在1～100 μg/mL范圍內隨質量濃度增大呈現先上升后下降的趨勢，在50 μg/mL時抑制率達到33％；95％地錦草水提取物對蔗糖酶的抑制率在1～100 μg/mL范圍內變化并不明顯。按公式1計算得到的抑制率通過作圖計算可得DEEF IC50值為78.8 μg/mL。曹乃峰［17］等用甲醇提取地錦草中降糖活性物質，其石油醚提取物IC50=279.40 μg/mL、正丁醇提取物IC50= 130.70 μg/mL。本實驗得到的DEEF的IC50值為78.8 μg/mL，比曹乃峰得到甲醇石油醚提取物和正丁醇提取物低，說明DEEF具有較好的α-葡萄糖苷酶抑制活性。

3.5 不同萃取物的化學成分分析 不同的萃取物經過化學成分分析，結果顯示各萃取物中含有酚性成分、脂肪酸成分、三萜類成分等。乙醚相、氯仿相、水飽和正丁醇相及水相的結果如表1所示。

由化學顯色分析可知，95％地錦草的醇提物中，經過乙醚、氯仿、水飽和正丁醇萃取后，萃取物的組成成分各不相同。其中DEEF中的三萜類成分少于其他三相，而酚性成分多余其余三相，而其余成分與其他萃取物所含大致相同。根據DEEF為地錦草體外抑制α-葡萄糖苷酶活性最強組分，初步推測DEEF中的酚性成分可能是地錦草降糖活性物質的基礎。田瑛［18］等從地錦草70％乙醇提取物中分離得到7個酚性化合物如短葉蘇木酚（brevifo1in）、短葉蘇木酚酸（brevifo1in carboxy1ic acid）、短葉蘇木酚酸甲酯（methy1brevifo1incarboxy1ate）等。

表1　萃取物的化學成分分析Tab.1 Prellm lnary chem lcal composltlon analysls of d lfferent extracts

3.6 95％地錦草醇提物的乙醚萃取物抗氧化活性的測定 按“2.6”項實驗方法從4個方面進一步考察了DEEF的體外抗氧化能力。結果如表2所示。

表2　地錦草乙醚萃取物的抗氧化活性Tab.2 Antloxldant actlvltles of DEEF

DEEF的超氧陰離子清除能力EC50值為31.3 μg/mL，Vc的EC50值為31.8 μg/mL，表明DEEF具有較好的超氧陰離子清除能力。李容［19］等研究表明白茅根多糖對羥基自由基有清除作用，EC50為1.1 mg/mL，王衛東［20］等研究表明陳皮提取物質量濃度為600 mg/L時對羥基自由基抑制率為51.23％。DEEF對羥自由基的清除率為EC50= 182.7 μg/mL，可見DEEF對羥自由基的清除能力比白茅根多糖與陳皮提取物好。

4 討論

糖尿?。╠iabetes me11itus，DM）是在遺傳和環境因素相互作用下，產生胰島素分泌相對不足、絕對不足、胰島素抵抗，繼而引起體內的糖、蛋白質、脂肪、水、電解質等代謝紊亂，其中以2型糖尿病居多。國際糖尿病聯盟（IDF）2013年公布的第六版“IDF糖尿病地圖”顯示，中國糖尿病人數居于世界首位，為9 840萬。糖尿病的治療和防治給社會經濟帶來沉重的經濟負擔。α-葡萄糖苷酶抑制劑是治療糖尿病的一種有效口服藥物［7］，其可通過抑制小腸α-葡萄糖苷酶的活性，延緩多糖的降解，減少葡萄糖的吸收，抑制餐后血糖的升高。因此，探尋高效、安全的α-葡萄糖苷酶抑制劑是糖尿病干預或治療的重要研究內容。

王翼［21］等研究表明植物中的多糖、皂苷、黃酮、生物堿、酚類這5類化學成分在降血糖方面有顯著效果，本實驗化學成分分析結果表明DEEF中含有較多的酚性成分，且DEEF對α-葡萄糖苷酶活性抑制作用最強。田瑛［18］等從地錦草70％乙醇提取物中分離得到7個酚性化合物，有短葉蘇木酚（brevifo1in）、短葉蘇木酚酸（brevifo1in carboxy1ic acid）、短葉蘇木酚酸甲酯（methy1brevifo1incarboxy1ate）等。由此可見，地錦草中的酚類物質可能為降糖活性物質基礎。曹乃峰［17］等首先提出地錦草甲醇提取物具有較好的α-葡萄糖苷酶抑制活性，活性物質為地錦草石油醚提取物、乙酸乙酯提取物、正丁醇提取物。本實驗以α-葡萄糖苷酶體外抑制活性為追蹤指標，測得地錦草的95％乙醇提取物具有最高的α-葡萄糖苷酶的抑制活性（IC50= 78.8 μg/mL），進一步采用不同極性的溶劑對95％地錦草醇提物進行萃取分離，得到α-葡萄糖苷酶的抑制活性最強的DEEF部位，實驗表明DEEF部位同時具有較好的抗氧化活性。

Brown1ee［22］等提出氧化應激是糖尿病并發癥的發生的機制之一。氧化應激是體內大量活性分子的產生和抗氧化防御能力不平衡的一種狀態，其會導致組織受損。活性氧（ROS）是氧化應激的主要來源之一，主要包括超氧陰離子、羥自由基、過氧化氫等［23］。本實驗以DEEF對DPPH自由基、羥自由基、超氧陰離子的清除能力以及鐵離子的還原能力研究了DEEF的抗氧化能力，結果表明，DEEF清除超氧陰離子的EC50值為31.3 μg/mL，羥自由基清除能力EC50值為182.7 μg/mL，鐵離子還原能力EC50值為76.9 μg/mL，DPPH自由基清除能力EC50值為132.9 μg/mL。李潔［24］等研究表明昆侖雪菊多糖具有α-葡萄糖苷酶抑制活性，質量濃度為0.091 72 mg/mL時，對α-葡萄糖苷酶抑制作用達到50％，DPPH自由基清除能力EC50值為0.939 4 mg/mL，具有一定的抗氧化能力；李榮［19］等研究表明，白茅根多糖對羥基自由基有清除作用，EC50為1.1 mg/mL，但對α-葡萄糖苷酶抑制作用較低。由此可見，DEEF具有良好的α-葡萄糖苷酶抑制能力且同時具有較好的抗氧化活性。因此，本實驗在為地錦草的降糖活性機制研究提供實驗基礎，同時也為地錦草的進一步開發及其在降糖活性保健產品中的利用奠定基礎。

參考文獻:

［1］ 柳潤輝，王漢波，孔令文.地錦草化學成分的研究［J］.中草藥，2001，32（2）: 107-108.

［2］ 安惠霞，古力娜·達吾提，李治建，等.地錦草有效部位抗真菌作用及其機制研究［J］.中國藥理學通報，2010，26（9）: 1162-1165.

［3］ Tian Y，Sun L M，Liu X Q，et al.Anti-HBV active f1avone g1ucosides from EuPhorbia humifusa Wi11d.［J］.FitoteraPia，2010，81（7）: 799-802.

［4］ Shinkai H，Onogi S，Tanaka M，et al.Isoxazo1idie-3，5-diPne and noncyc1ic1，3-dicarbony1comPounds as hyPog1ycemic agents［J］.JMed Chem，1998，41（11）: 19-27.

［5］ Zhou JM，Wang G Y，Wu JH.Synthesis and in vitro characterization of ionone-based cha1cones as nove1 antiandrogens effective againstmu1tiP1e c1inica11y re1evantandrogen recePtormutants［J］.Invest New Drugs，2010，28（3）: 291-298.

［6］ 董福輪，季 蓓，陳英群.鳥不宿、地錦草降低血糖的臨床研究［J］.四川中醫，2002，20（4）: 24-25.

［7］ Asano N，Nishida M，Kizu H，et al.Fagomine isomers and g1ycosides from Xanthocercis zambesiaca［J］.J Nat Prod，1997，60（3）: 98-102.

［8］ Baron A D.PostPrandia1 hyPerg1ycemia and a1Pha-g1ucosidase inhibitors［J］. Diabetes Res Clin Pract，1998，40（3）: 51-55.

［9］ 馬慶一，陳春濤，時國慶，等.天然α-葡萄糖苷酶抑制劑的研究［J］.食品工業科技，2005，26（8）: 51-53.

［10］ 陳百泉，李呂勤，常 星，等.頭花蓼對α-葡萄糖苷酶的抑制活性研究［J］.中國實驗方劑學雜志，2010，16（8）: 151-53.

［11］ 李曉媛，胡桂雨，王碧川.白藜蘆醇對大鼠α-葡萄糖苷酶活性影響［J］.華北煤炭醫學院學報，2010，12（1）: 151-153.

［12］ Kim J S，Kwon C S，Son K H.Inhibition of a1Phα-g1ucosidase and amy1ase by 1uteo1in a f1avonoid［J］.Biosci Biotech Bioch，2000，64（11）: 2458-2461.

［13］ 謝 奇，李治建，斯拉普·艾白，等.地錦草提取物以及有效部位化學成分的初步研究［J］.時珍國醫國藥，2011，2（8）: 1814-1816.

［14］ Liu S C，Lin JT，Wang CK，etal.Antioxidant ProPerties of various so1vent extracts from 1ychee（Litchi chinenesis Sonn.）f1ower［J］.Food Chem，2008，9（88）: 1-5.

［15］ 梁 鵬，甄潤英.辣木莖葉中水溶性多糖的提取及抗氧化活性的研究［J］.食品研究與開發，，2013，34（14）: 25-28.

［16］ 李明靜，慶偉霞，楊玉霞，等.七種天然黃酮類化合物對超氧陰離子自由基的清除活性［J］.化學研究，2006，17 （4）: 73-75.

［17］ 曹乃峰.費菜和地錦草生物活性成分研究［D］.開封:河南大學，2011: 5.

［18］ 田 瑛，孫立敏，劉細橋，等.中藥地錦草酚性成分［J］.中國中藥雜志，2010，35（5）: 613-615.

［19］ 李 容，梁榕珊，覃 濤，等.白茅根多糖抗氧化活性及抑制α-葡萄糖苷酶活性研究［J］.食品研究與開發，2014，35（7）: 9-11.

［20］ 王衛東，趙志鴻，張小俊，等.陳皮提取物中黃酮類化合物及抗氧化的研究［J］.食品工業科技，，2007，28（9）: 98-103.

［21］ 王 翼，張 旭.α-葡萄糖苷酶抑制劑的研究進展［J］.海峽藥學，2009，21（9）: 4-6.

［22］ Brown1ee M.Biochemistry and mo1ecu1ar ce11bio1ogy of diabetic comP1ications［J］.Nature，2001，414（6865）: 813-820.

［23］ Rosen P，Nawroth P P，King G，et al.The ro1e of oxidative stress in the onset and Progression of diabetes and its comP1ications: a summary of a Congress Series sPonsored by UNESCOMCBN，the American Diabetes Association，and the German Diabetes Society［J］.Diabetes Metab Res，2001，17（3）: 189-212.

［24］ 李 潔，曾 紅，呂喜鳳，等.昆侖雪菊多糖抗氧化及α-淀粉酶和α-葡萄糖苷酶的抑制［J］.中國釀造，2014，33 （9）: 124-128.

Antloxldant andα-glucosldase lnhlbltory actlvltles of Euphorbia Humifusa extracts

ZHENG Qiao， YANG Er-1ei， ZHU Ying， TU Jie*
（School of Biotechnology，Jiangsu University of Science and Technology，Zhenjiang 212018，China）

ABSTRACT:AIM To study antioxidantand α-g1ucosidase inhibitory activities of EuPhorbia Humifusa extracts in vitro.METH0DS Theα-g1ucosidase inhibitory activities of40％，70％，and 95％ ethano1extracts from E.Humifusa were tested，of which the higher inhibitory activity of ethano1 extract was se1ected for further extraction. Tested extraction so1ventswere diethy1ether，ch1oroform，water-satureted n-butano1，and water.Free radica1-，hydroxy1 free radica1-，suPeroxide anion-scavenging caPacity，and iron ion reducing caPacity were examined.RESULTS 95％ ethano1extracts from E.Humifusa had the stronestα-g1ucosidase inhibitory activity and the diethy1 ether extract had the strongestα-g1ucosidase inhibitory activity of them，with its IC50va1ue at 78.8 μg/mL.The Pre1iminary chemica1comPositions of diethy1ether extract showed Pheno1ic comPounds；their free radica1scavenging caPacity EC50was132.9 μg/mL；iron ion reducing caPacity was76.9 μg/mL；hydroxy1 free radica1scavenging ca-Pacity was 182.7 μg/mL；suPeroxide anion scavenging caPacity was 31.3 μg/mL.C0NCLUSI0N The diethy1 ether extract of 95％ ethano1extracts from E.Humifusa has the antioxidant and re1ative1y the strongestα-g1ucosidase inhibitory activity.

*通信作者:屠 潔（1977—），女，碩士，副教授，研究方向為食品生物技術。Te1: 13921581995，E-mai1: tujie@just.edu.cn

作者簡介:鄭 巧（1994—），女，研究方向為天然藥物活性成分。Te1: 18362894635，E-mai1: 1300205004@qq.com

基金項目:江蘇科技大學本科生創新計劃（2014年）

收稿日期:2015-07-08

中圖分類號:R285.5

文獻標志碼:A

文章編號:1001-1528（2016）02-0252-06