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系統性紅斑狼瘡患者血漿miRNA-23a表達的檢測及意義

2016-05-06 04:02:21葉璐璐范超凡黃茜茜郭剛強章慧娣張麗芳林巧愛薛向陽溫州醫科大學微生物學與免疫學教研室浙江溫州505溫州醫科大學臨床醫學系浙江溫州505溫州醫科大學附屬第一醫院腎內科浙江溫州505
溫州醫科大學學報 2016年3期
關鍵詞:血漿水平檢測

葉璐璐,范超凡,黃茜茜,郭剛強,章慧娣,張麗芳,林巧愛,薛向陽(.溫州醫科大學 微生物學與免疫學教研室,浙江 溫州 505;.溫州醫科大學 臨床醫學系,浙江 溫州 505;.溫州醫科大學附屬第一醫院 腎內科,浙江 溫州 505)

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系統性紅斑狼瘡患者血漿miRNA-23a表達的檢測及意義

葉璐璐1,范超凡2,黃茜茜2,郭剛強1,章慧娣3,張麗芳1,林巧愛1,薛向陽1
(1.溫州醫科大學微生物學與免疫學教研室,浙江溫州325035;2.溫州醫科大學臨床醫學系,浙江溫州325035;3.溫州醫科大學附屬第一醫院腎內科,浙江溫州325015)

[摘 要]目的:分析miR-23a在系統性紅斑狼瘡(SLE)患者血漿中的表達及臨床意義。方法:收集54例SLE患者、16例類風濕性關節炎(RA)患者和20例健康對照血漿標本,抽提血漿小RNA,反轉錄后,以celmiR-39為外參,通過定量PCR檢測血漿miR-23a的表達,統計分析miR-23a表達水平與臨床資料的相關性。結果:miR-23a在SLE患者、健康對照和RA患者血漿中的相對表達量差異具有統計學意義(x2=39.199,P<0.001)。與RA患者及健康對照比較,SLE患者血漿中miR-23a表達水平明顯下調(P<0.05)。受試者工作特征曲線(ROC曲線)分析顯示,血漿miR-23a區分SLE患者和健康對照以及RA患者的ROC曲線下面積(AUC)分別為0.931和0.884。血漿miR-23a表達水平以19.22臨界值區分SLE患者和健康對照的特異性和敏感性達74.5%和88.9%;以30.98臨界值區分SLE與RA患者的特異性和敏感性達73.3%和86.3%。血漿miR-23a的表達水平與SLE臨床檢測指標的相關性分析顯示,血漿miR-23a的表達水平與抗核抗體(ANA)滴度水平及血白細胞計數(P<0.05)相關。結論:SLE患者血漿中下調表達的miR-23a可能與其發病和病情進展相關,是SLE臨床診斷一個新的生物學指標。

[關鍵詞]系統性紅斑狼瘡;微小RNA;miR-23a

系統性紅斑狼瘡(systemic lupus erythematosus,SLE)是一種累及多系統的自身免疫性疾病,其發病機制尚未明確。目前認為,具有遺傳背景的個體在環境、性激素及感染等因素的共同作用或參與下,引起機體免疫功能異常,致使自身反應性B細胞活化,產生大量自身抗體,這些自身抗體與自身抗原形成的免疫復合物對機體產生損傷[1-2]。SLE臨床表現復雜、多樣,尚缺乏穩定而準確的實驗室檢測指標用以診斷早期SLE。目前常用的臨床檢測指標,如抗dsDNA抗體、補體C3、C4、SLE病情活動指數(systemic lupus erythematosus disease activity index,SLEDAI)評分等,很難做到對SLE的準確診斷和病情的確切評估[3-4]。雖然已有研究提出了一些有潛在臨床檢測價值的生物標記物,如抗C1q抗體、血漿CD27陽性細胞、單核細胞趨化因子-1(MCP-1)等等[5-6],但是這些指標并沒有確切的臨床價值。為此尋找能夠在SLE患者體內特異表達的生物學指標,將為輔助診斷疾病、評估病情、判斷治療效果和預后提供基礎。

microRNAs(miRNAs)是一種小的(~21 nt)、內源性的、非編碼RNA,通過與靶基因mRNA的非編碼區(3’-UTR)完全或不完全匹配,降解mRNA或抑制翻譯,負性調控基因表達[7-8]。研究發現,miRNAs與機體免疫功能和自身免疫耐受有關[9],許多自身免疫性疾病,如類風濕性關節炎(rheumatoid arthritis,RA)、干燥綜合征、硬皮病和SLE等的發病都可能與miRNAs有關[10-13]。有學者認為,miRNAs的作用與SLE的發病、復發和特定器官的自身免疫性損傷存在一定聯系[14],miRNAs與SLE的發病機制密切相關[15]。近年來的研究發現,除了細胞內,血清(血漿)、淚液、唾液、母乳、氣管灌洗液、腦脊液、羊水等體液均存在miRNAs[16-17]。這些miRNAs具有抵抗RNA酶的能力,在體外可以長時間存在而不降解,這一特性使循環miRNAs非常適合作為疾病的血清標志物[18-22]。

本課題組前期利用miRNAs芯片分析SLE患者血漿miRNAs表達情況時發現,與健康對照者比較,SLE患者血漿中的miR-23a表達明顯下調。最近有研究發現,miR-23a可以參與調節巨噬細胞分泌炎癥因子[23-24]。此外,有人提出將miR-23a作為特發性肺動脈高壓的一個檢測指標[25]。但是目前鮮見血漿miR-23a與SLE的相關性報道。因此,本研究通過定量PCR檢測SLE患者血漿miR-23a的表達,并分析其表達與臨床資料的相關性,探討血漿miR-23a表達與SLE的關系。

1 對象和方法

1.1研究對象 外周血樣本共90份,來源于54例SLE患者、20例健康對照者和16例RA患者。SLE患者為2014年6月-2015年4月間在溫州醫科大學附屬第一醫院風濕免疫科、腎內科收治確診者,其中男10例,女44例,年齡21~63歲,中位年齡34歲,均符合美國風濕病學會(American College of Rheumatology,ACR)1997年修訂的SLE分類標準,采用SLEDAI評分評估疾病活動度。20例健康對照者為同期健康體檢者,排除心血管、腫瘤,以及其他自身免疫性疾病,其中男10例,女10例,年齡18~56歲,中位年齡32歲。16例RA患者為同期在溫州醫科大學附屬第一醫院風濕免疫科收治確診者,其中男7例,女9例,年齡25~72歲,中位年齡46歲,均符合2010年ACR和歐洲抗風濕病聯盟(European League Against Rheumatism,EULAR)提出的分類標準。

1.2主要試劑 Tri-Reagent BD試劑購自美國Sigma公司;miScript II RT kit及miScript SYBR Green PCR Kit均購自德國QIAGEN公司;DEPC處理水購自寶生物工程(大連)有限公司。

1.3方法

1.3.1標本收集及保存:取EDTA抗凝的外周血標本(當天抽取),4 ℃,3 000 r/min離心10 min,收集血漿,進一步經4 ℃,12 000 r/min離心10 min,去除殘留的細胞碎片。血漿標本置-80 ℃冰箱保存。1.3.2 血漿RNA抽提:按Tri-Reagent BD試劑說明書步驟抽提血漿RNA。為增加RNA獲得率,在抽提時加入1 μL糖原,并采用80%乙醇洗滌RNA沉淀。以DEPC處理水溶解RNA,-80 ℃冰箱保存。為消除血漿RNA抽提的誤差,每份標本均取200 μL,而且抽提前加入1 nmol/μL與人miRNAs無同源性的celmiR-39外參照(由上海吉瑪公司合成)。

1.3.3miR-23a表達的檢測:按照miScript II RT kit說明書,取5 μL血漿RNA,以miR-23a的RT引物進行反轉錄,獲得miR-23a的cDNAs。反轉錄的反應條件為:37 ℃ 60 min,95 ℃ 5 min。反轉錄產物保存于-20 ℃冰箱。由QIAGEN公司設計合成引物miScript Primer Assay,以20 μL反應體系進行熒光定量PCR,檢測miR-23a的表達量。PCR反應條件為:95 ℃預變性15 min后,94 ℃ 15 s,55 ℃ 30 s,70 ℃ 30 s,循環40次。外參照cel-miR-39的檢測按照QIAGEN公司熒光定量PCR檢測試劑盒進行,每個樣品做2個復孔。采用ABI StepOne Plus實時熒光定量PCR儀進行檢測,記錄每個孔中熒光信號到達設定閾值時的循環數(Ct值)。根據待測標本的Ct值,以cel-miR-39作為外參照,采用定量PCR中的相對定量法,以N=2-△Ct表示標本中miR-23a相對表達量,其中△Ct=Ct(miR-23a)-Ct(cel-miR-39)。為方便數據計算,所有數值均放大10 000倍。PCR產物采用4%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

1.4統計學處理方法 實驗數據采用SPSS20.0統計軟件分析。以中位數及四分位間距表示miR-23a的表達數據,2組獨立樣本間比較采用Mann-Whitney U檢驗,2組以上獨立樣本間比較采用Kruskal-Wallis檢驗。采用ROC曲線分析敏感性和特異性。對于定量的臨床資料,用Pearson相關分析法分析2組間的相關性,對于定性的臨床資料,用卡方檢驗/Fisher精確檢驗比較相關性。P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1血漿miR-23a表達檢測特異性分析 血漿標本抽提的miRNA經反轉錄成cDNA后,采用定量PCR檢測。圖1顯示,miR-23a及外參照cel-miR-39定量PCR的溶解曲線為單峰。圖2顯示,其PCR產物經4%瓊脂糖凝膠電泳顯示為單一條帶,而未反轉錄的RNA對照及空白對照均無擴增產物,說明定量PCR體系可以特異檢測血漿標本中miR-23a。

圖1 血漿miR-23a實時熒光定量PCR的溶解曲線圖

圖2 瓊脂糖凝膠電泳miR-23a PCR產物的結果

圖3 SLE患者、RA患者和健康對照者血漿中miR-23a表達水平

2.2miR-23a在SLE患者、健康對照者和RA患者血漿中的相對表達量 如圖3所示,miR-23a在SLE患者、健康對照者和RA患者血漿中的相對表達量差異有統計學意義(x2=39.199,P<0.001)。SLE患者血漿中miR-23a相對表達量為4.13(1.41,11.94),明顯低于健康對照者的127.19(27.26,360.36)及RA患者的45.23(17.76,82.65)(P<0.01)。與健康對照者比較,RA患者血漿中miR-23a相對表達水平也明顯降低(P<0.01)。

2.3血漿miR-23a診斷SLE的敏感性和特異性 ROC曲線分析顯示,以miR-23a的相對表達量區分SLE患者與健康對照者的曲線下面積(area under curve,AUC)為0.881(P<0.001)。以19.22為臨界值(cutoff值)區別SLE患者和健康對照者的特異性和敏感性分別為74.5%和88.9%,見圖4A。以miR-23a的相對表達量區分SLE患者與RA患者的AUC為0.801(P<0.001)。以30.98為臨界值區別SLE患者和RA患者的特異性和敏感性為73.3%和86.3%(見圖4B)。

圖4 血漿miR-23a作為SLE診斷的敏感性和特異性分析

2.4血漿中miR-23a表達水平與SLE患者臨床特征的關系 如表1所示,血漿miR-23a相對表達量與SLE患者性別、年齡、病情嚴重程度(SLEDAI評分)無明顯相關(P>0.05);SLE患者血漿中miR-23a的表達水平在不同抗核抗體(antinuclear antibody,ANA)滴度水平組間差異有統計學意義,高抗ANA滴度的SLE患者血漿中miR-23a的表達水平明顯較低(P=0.041);SLE患者血漿中miR-23a的表達水平與抗ds-DNA等其他常見臨床檢測的自身抗體間未見明顯相關性(P>0.05);與正常白細胞計數SLE患者比較,低白細胞計數SLE患者血漿miR-23a表達水平明顯降低(P=0.045),但血漿miR-23a的表達水平與淋巴細胞、中性粒細胞、單核細胞數間未見明顯相關性(P>0.05)。

3 討論

研究發現,miR-23a可以抑制癌細胞的轉移和侵襲,其主要機制是抑制了p21活化的cAMP依賴性蛋白激酶-6(cAMP-dependent protein kinase 6,PKA-6)及其下游分子LIM激酶-1(LIMK-1),發揮調節細胞骨架的作用,而在前列腺癌患者中則發現miR-23a的表達顯著下調[26]。腫瘤特異性CD8+T淋巴細胞中的miR-23a表達下降與轉化生長因子-β (transforming growth factor-β,TGF-β)介導的免疫抑制有關[27]。此外,研究發現,miR-23a可以直接與端粒重復序列結合因子-2(telomere repeat binding factor 2,TRF-2)作用,導致TRF-2異常表達,影響端粒酶的活性,進而加速細胞衰老[28]。Peng等[23]發現在人的原始巨噬細胞中,miR-23a的表達量往往很高,并且在進一步研究后提出,miR-23a可以通過作用于A20基因,影響核因子-κB (nuclear factor kappa B,NF-κB)的活性,從而影響整條NF-κB信號通路,調節巨噬細胞合成和分泌炎癥因子。細胞外游離的miRNA作為疾病標志物是近年來研究的熱點。許多血漿miRNA已被證實是癌癥、心血管疾病、自身免疫性疾病等多種疾病的生物標志[21,23,29]。

本研究發現,SLE及RA患者血漿中miR-23a表達水平均明顯低于健康對照者,提示循環miR-23a下調表達可能是多種自身免疫性疾病的共同特征。此外,與RA患者相比,SLE患者血漿miR-23a表達水平也是明顯偏低。進一步的ROC曲線分析顯示,血漿miR-23a表達水平可以作為臨床上診斷SLE和區分SLE與RA的一個指標。最近,Sarrion等[24]針對循環miR-23a的研究發現,其與特發性肺動脈高壓患者的肺功能有關,可作為評價特發性肺動脈高壓患者病情的一個生物標記物。本研究中,血漿miR-

23a表達水平與SLE臨床特征的相關分析顯示,高抗ANA滴度及低白細胞計數的SLE患者循環miR-23a的表達水平明顯降低。已經明確,自身抗體,尤其是ANA,是SLE發病的重要機制,而白細胞計數減少是SLE活動的重要指標。這些結果進一步提示,循環miR-23a下調表達可能參與SLE的發病過程,其具體作用機制有待于進一步研究。

表1 血漿中miR-23a表達與SLE臨床特征的相關性分析

參考文獻:

[1]HERRMANN M,VOLL R E,KALDEN J R.Etiopathogenesis of systemic lupus erythematosus[J].Immunol Today,2000,21(9):424-426.

[2]WAKELAND E K,LIU K,GRAHAM R R,et al.Delineating the genetic basis of systemic lupus erythematosus[J].Immunity,2001,15(3):397-408.

[3]ILLEI G G,TACKEY E,LAPTEVA L,et al.Biomarkers in systemic lupus erythematosus:II.Markers of disease activity[J].Arthritis Rheum,2004,50(7):2048-2065.

[4]ROVIN B H,BIRMINGHAM D J,NAGARAJA H N,et al.Biomarker discovery in human SLE nephritis[J].Bull NYU Hosp Jt Dis,2007,65(3):187-193.

[5]LIU C C,MANZI S,AHEARN J M.Biomarkers for systemic lupus erythematosus:a review and perspective[J].Curr Opin Rheumatol,2005,17(5):543-549.

[6]ABULABAN K M,BRUNNER H I.Biomarkers for childhood-onset systemic lupus erythematosus[J].Curr Rheumatol Rep,2015,17(1):471.

[7]RUVKUN G.Molecular biology.Glimpses of a tiny RNA world[J].Science,2001,294(5543):797-799.

[8]BARTEL D P.MicroRNAs:genomics,biogenesis,mechanism,and function[J].Cell,2004,116(2):281-297.

[9]PICASCIA A,GRIMALDI V,PIGNALOSA O,et al.Epigenetic control of autoimmune diseases:from bench to bedside[J].Clin Immunol,2015,157(1):1-15.

[10]SIMPSON L J,ANSEL K M.MicroRNA regulation of lymphocyte tolerance and autoimmunity[J].J Clin Invest,2015,125(6):2242-2249.

[11]HA T Y.MicroRNAs in human diseases:from autoimmune diseases to skin,psychiatric and neurodegenerative diseases[J].Immune Netw,2011,11(5):227-244.

[12]陳阿瓊,薛向陽,章麗和,等.miR-16在系統性紅斑狼瘡血漿中的表達及意義[J].溫州醫學院學報,2013,43(1):106 -111.

[13]陳芳,陳朝生,章慧娣,等.系統性紅斑狼瘡患者外周血B淋巴細胞中狼瘡活動相關miRNA的篩選[J].溫州醫學院學報,2013,43(2):26 -30.

[14]CERIBELLI A,YAO B,DOMINGUEZ-GUTIERREZ P R,et al.MicroRNAs in systemic rheumatic diseases[J].Arthritis Res Ther,2011,13(4):229.

[15]QU B,SHEN N.miRNAs in the pathogenesis of systemic lupus erythematosus[J].Int J Mol Sci,2015,16(5):9557-9572.

[16]WEBER J A,BAXTER D H,ZHANG S,et al.The microRNA spectrum in 12 body fluids[J].Clin Chem,2010,56(11):1733-1741.

[17]PARK N J,ZHOU H,ELASHOFF D,et al.Salivary microRNA:discovery,characterization,and clinical utility for oral cancer detection[J].Clin Cancer Res,2009,15(17):5473-5477.

[18]CHEN X,BA Y,MA L,et al.Characterization of microRNAs in serum:a novel class of biomarkers for diagnosis of cancer and other diseases[J].Cell Res,2008,18(10):997-1006.

[19]ZHENG D,HADDADIN S,WANG Y,et al.Plasma microRNAs as novel biomarkers for early detection of lung cancer[J].Int J Clin Exp Pathol,2011,4(6):575-586.

[20]PERFETTI A,GRECO S,BUGIARDINI E,et al.Plasma microRNAs as biomarkers for myotonic dystrophy type 1[J].Neuromuscul Disord,2014,24(6):509-515.

[21]KJERSEM J B,IKDAHL T,LINGJAERDE O C,et al.Plasma microRNAs predicting clinical outcome in metastatic colorectal cancer patients receiving first-line oxaliplatinbased treatment[J].Mol Oncol,2014,8(1):59-67.

[22]ZHANG W,SHANG T,HUANG C,et al.Plasma microRNAs serve as potential biomarkers for abdominal aortic aneurysm[J].Clin Biochem,2015,48(15):988-992.

[23]PENG P,LI Z,LIU X.Reduced Expression of miR-23a Suppresses A20 in TLR-stimulated Macrophages[J].Inflammation,2015,38(5):1787-1793.

[24]SARRION I,MILIAN L,JUAN G,et al.Role of circulating miRNAs as biomarkers in idiopathic pulmonary arterial hypertension:possible relevance of miR-23a[J].Oxid Med Cell Longev,2015,2015:792846.

[25]CAI S,CHEN R,LI X,et al.Downregulation of microRNA-23a suppresses prostate cancer metastasis by targeting the PAK6-LIMK1 signaling pathway[J].Oncotarget,2015,6(6):3904-3917.

[26]LIN R,SAMPSON J H,LI Q J,et al.miR-23a blockade enhances adoptive T cell transfer therapy by preserving immune-competence in the tumor microenvironment[J].Oncoimmunology,2015,4(3):e990803.

[27]LUO Z,FENG X,WANG H,et al.Mir-23a induces telomere dysfunction and cellular senescence by inhibiting TRF2 expression[J].Aging Cell,2015,14(3):391-399.

[28]CORTEZ M A,CALIN G A.MicroRNA identification in plasma and serum:a new tool to diagnose and monitor diseases[J].Expert Opin Biol Ther,2009,9(6):703-711.

[29]SURYAWANSHI S,VLAD A M,LIN H M,et al.Plasma microRNAs as novel biomarkers for endometriosis and endometriosis-associated ovarian cancer[J].Clin Cancer Res,2013,19(5):1213-1224.

(本文編輯:丁敏嬌)

·論著·

Detection of the plasma miR-23a expression in systemic lupus erythematosus and its clinical significance

YE Lulu1,FAN Chaofan2,HUANG Xixi2,GUO Gangqiang1,ZHANG Huidi3,ZHANG Lifang1,LIN Qiaoai1,XUE Xiangyang1.1.Department of Medical Microbiology and Immunology,Wenzhou Medical University,Wenzhou,325035; 2.Department of Clinical Medicine,Wenzhou Medical University,Wenzhou,325035; 3.Department of Nephrology,the First Affiliated Hospital of Wenzhou Medical University,Wenzhou,325015

Abstract:Objective:To explore miR-23a expression and its clinical significance in the plasma of systemic lupus erythematosus (SLE) patients.Methods:Plasma samples from 54 SLE patients,16 rheumatoid arthritis (RA) patients and 20 healthy controls were collected.The small RNAs in these plasma samples were isolated and reversely transcribed.Using cel-miR-39 as the external reference,the levels of miR-23a expression were detected with real-time polymerase chain reaction (PCR) method.The correlation between the levels of miR-23a expression and the clinical pathological features of SLE and biological significance of miR-23a expression in SLE were further analyzed with statistical methods.Results:Our data indicated that the levels of miR-23a expression in the plasma of SLE patients,RA patients and healthy controls were significantly different (x2=39.199,P<0.001).The level of miR-23a in the plasma of SLE patients was statistically lower than that in RA patients and healthy controls (P<0.05).The area under the ROC (receiver-operating characteristic) curve (AUC) was 0.931 for discriminating between SLE patients and normal subjects and 0.884 for discriminating between SLE and RA patients and patients.The levels of miR-23a expression were set the cutoff values of 19.22 for healthy control and 30.98 for RA patients,the diagnostic sensitivity and specificity were 74.5%,88.9%,and 73.3%,86.3%,respectively.The analysis of the correlation between miR-23a expression and the clinical pathological features of SLE shown that the levels of plasma miR-23a expression had positively correlated with anti-ANA titers and negatively correlatedbook=169,ebook=17with white blood cell count (P<0.05).Conclusion:Down-regulated of miR-23a expression in plasma of SLE may be involved in the SLE disease occurrence or development and can be used as a novel potential diagnostic biomarker for SLE.

Key words:systemic lupus erythematosus; microRNA; miR-23a

通信作者:薛向陽,副教授,Email:wyxyy001@163.com。

作者簡介:葉璐璐(1989-),女,安徽安慶人,碩士生。

基金項目:浙江省自然科學基金資助項目(LY12H05003,LY15H100004);浙江省科技廳科研基金資助項目(2012C 33126);浙江省大學生新苗人才計劃(2014R413058,2015R413027,2015R413069)。

收稿日期:2015-09-14

[中圖分類號]R593.24

[文獻標志碼]A

DOI:10.3969/j.issn.2095-9400.2016.03.003

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