范 濤, 王 洪, 魏 杰, 周舒雅, 岳秉飛, 李保文
(中國食品藥品檢定研究院,北京 100050)
?
不同來源高度免疫缺陷小鼠微衛星DNA遺傳檢測的分析
范濤, 王洪, 魏杰, 周舒雅, 岳秉飛, 李保文
(中國食品藥品檢定研究院,北京100050)
目的對不同來源的高度免疫缺陷小鼠進行遺傳背景的檢測分析,旨在發現經遺傳修飾的小鼠遺傳背景是否符合近交系遺傳特征。方法對收集到的4種不同來源以NOD為背景的高度免疫缺陷小鼠,選取30個微衛星DNA位點進行PCR檢測,通過凝膠電泳結果和STR掃描確定基因型,進行遺傳分析。結果4組20個樣本中共有17個位點呈現多態性,A、B兩組小鼠30個微衛星位點表現為純和,其他兩組小鼠中不同位點均出現雜合個體;A、B兩組遺傳距離最小,保持著較高的遺傳相似度。結論研究表明,不同來源高度免疫缺陷小鼠遺傳背景有差異。
免疫缺陷小鼠;微衛星;遺傳質量
高度免疫缺陷小鼠“NSG”是在NOD(non-obese diabetic)小鼠的背景下,發生重癥聯合免疫缺陷Prkdcscid(protein kinase, DNA activated, catalytic polypeptide,Prkdc;severe combined immune deficiency,SCID)和白細胞介素2受體γ鏈(interleukin 2 receptor gamma chain,Il2rg)缺失突變產生的。該小鼠模型表現為成熟T、B淋巴細胞、功能性NK細胞缺失,細胞因子信號缺少。由于其免疫缺陷程度相對于其他品系更高,能更好地適用于人類造血干細胞、外周血單核細胞和腫瘤的異種移植,而成為一種理想的人源化免疫缺陷小鼠模型。不同來源的高度免疫缺陷小鼠有不同的建立方法:一種方法是同源導入,通過回交獲得以受體小鼠品系為背景的雙基因突變型小鼠;另一種是利用基因編輯技術直接在背景品系小鼠上進行改造,更快、更直接地獲得目標動物。微衛星又稱短串聯重復序列(short tandom repeat, STR),作為分子標記在實驗動物的遺傳質量檢測中具有良好的適用性,被廣泛應用[1-4]。具有高度多態性的簡單重復序列可以用于區分不同近交系小鼠,而在同品系內不同個體間,微衛星DNA則呈單態性[5,6],可以用于近交系遺傳質量評價。本實驗通過選擇30個微衛星位點對收集到的4種不同來源,不同制作方法的“NSG”小鼠進行遺傳檢測,旨在發現這些遺傳工程小鼠從制作之初背景品系的選取,到后期建系保種的過程,在遺傳質量方面是否符合近交系特點。
1.1材料

圖1 4組小鼠在D5Mit48位點PCR凝膠電泳結果Fig.1 PCR gel electrophoresis at loci D5Mit48 of mice in the four groups
4種不同來源的“NSG”小鼠由本單位收集保存并提供,生產許可證號【SCXK(京)2014-0013】。4種小鼠中有兩種是在背景品系上做的基因敲除,兩種為同源倒入。每品系5只,4~6周齡,雌雄在選擇時不做限制,SPF級環境飼養,選擇1只B6小鼠作為參照。
1.2方法
1.2.1小鼠DNA提取:將4種不同來源高度免疫缺陷小鼠順序編為A、B、C、D四個組。剪取小鼠尾尖3~5 mm放入EP管中,加蛋白酶K緩沖液裂解過夜,酚/氯仿法提取DNA,濃度稀釋至50~100 ng/μL,4℃保存。
1.2.2微衛星位點的選擇:根據文獻報道[7],選擇30個多態性較高的微衛星位點,覆蓋小鼠1~20號染色體,引物序列詳見表1,引物由英濰捷基(上海)貿易有限公司合成。
1.2.3PCR擴增:反應體系:總反應體系20 μL,其中:10× PCR buffer 2 μL,上、下游引物各1 μL,dNTP 1.2 μL,鎂離子1.5 μL,Taq酶0.2 μL,基因組DNA 1 μL,純水12.1 μL。PCR反應條件:95℃預變性5 min;94℃變性30 s;退火溫度(54~64℃)30 s;72℃延伸30 s;35個循環;72℃延伸8 min;擴增產物4℃保存。
1.2.4電泳:2.5%瓊脂糖凝膠,電泳。溴化乙錠染色,用紫外可見分析儀查看結果并記錄。
1.2.5STR掃描:將21個樣本擴增產物放入STR掃描儀,用GeneMarker V2.2.0讀取各樣本在各位點擴增片段的大小。每個位點按照片段大小順序記為a、b、c、d,根據等位基因分型的不同,各微衛星位點的基因型以aa、ab、ac等方式記錄,基因型全部純和,判斷為符合近交系特征;反之出現雜合基因型則不符合近交系遺傳特點。
1.2.6數據結果:用Lynch法計算組間相似系數,同時將數據放入PopGen1.32進行統計分析。
2.1PCR檢測分析結果
30個微衛星位點均能擴增出條帶。根據電泳結果進行初步篩查,可觀察到多態性位點,以D5Mit48位點為例(圖1),C組1、2、4、5號小鼠在該位點上與其他組別個體間有差別,呈現多態性。通過與B6 PCR結果的比較,D7Mit12、D14Mit3、D18Mit19、D19Mit3、D19Mit16位點兩種品系的擴增片段長度一致,表現為單態性。
2.2STR掃描及結果
瓊脂糖凝膠電泳用肉眼難以觀察區別小于10 bp的片段,STR掃描可以精確檢測片段的具體長度,區分相差1 bp的DNA片段。根據STR掃描結果,可以更準確地判斷各位點的多態性,同時判斷位點為純合還是雜合,判讀方法如圖2所示。C組在D12Mit7位點出現了兩種片段長度,經掃描,1、4、5號樣本出現106 bp和122 bp兩個波形,說明該小鼠在這個位點為雜合狀態,基因型記錄為ab;2號樣本和3號樣本各在122 bp和106 bp出現了一個波形,說明這兩只小鼠在該位點為純和型并表現出多態性,記錄為bb、aa,以此類推。4組20個實驗樣本判讀結果(表1)。

圖2 C組樣本在D12Mit7位點的微衛星掃描波形Fig.2 The waveforms of loci D12Mit7 in STR scanning of samples of the group C
根據STR掃描結果,參照樣本B6所有微衛星位點都為純合狀態;A、B組的10只小鼠30個微衛星位點均為純合狀態; C組的5個樣本中在D2Mit15、D8Mit33、D9Mit21、D9Mit23、D11Mit4、D12Mit7、D17Nds3、D17Mit11、D18Mit9、D19Mit16 等10個位點上,出現多個雜合型個體;D組的樣本僅有一只小鼠在D19Mit6位點上表現為雜合型。4組20個樣本中共有17個位點呈現出多態性,包括:D1Mit365、D2Mit15、D3Mit29、D5Mit48、D6Mit8、D6Mit102、D8Mit33、D9Mit21、D9Mit23、D11Mit4、D12Mit7、D16Mit9、D17Nds3、D17Mit11、D18Mit9、D19Mit16、DXMit16。
2.34種小鼠相似系數
按Lynch法計算相似系數其結果(表2)。A組與B組小鼠相似度最高,其次是B組與D組;C、D兩組相似性最低。C組與其他三組都有較低的相似性。
2.44種小鼠遺傳距離比較
通過PopGen1.32軟件分析Nei’(1978)遺傳距離、遺傳相似度指標結果(表3)。通過計算可以看出A組與B組遺傳距離最小,保持著較高的遺傳相似度。
Jackson實驗室發布的高度免疫缺陷小鼠是通過將NOD.CB17-Prkdcscid/J與B6.129S4-Il2rgtm1Wjl/J兩品系雜交,產生同時具備Prkdcscid和Il2rg基因型的F1代后,與NOD.CB17-Prkdcscid/J回交8代,產生的雜合子相互交配得到Prkdcscid和Il2rg雙純合型(Il2rg是X-link基因,雄性為半合子)的NSG小鼠[8]。國內不少實驗室和基因工程公司則使用基因編輯技術,在NOD或NOD/SCID(NOD.CB17-Prkdcscid)小鼠上進行基因改造而獲得同樣的動物模型。不論哪種方式,最終獲得的目標動物都應符合近交系特點。根據實驗結果,A、B兩組中所包含的10只小鼠樣本30個位點均處于純和狀態,符合近交系特點;C組的5只小鼠樣本中,在10個位點上出現多個個體的基因型為雜合,可以判定其不符合近交系遺傳特征。D組有一只小鼠在1個位點上出現雜合基因型,可將其本身及其后代淘汰,不進入繁育體系。
根據報道[9],不同近交系在D7Mit12、D19Mit3兩個微衛星位點呈單態性,實驗證明NOD小鼠也符合該特點。不同組別的小鼠在同一位點上也具有多態性。例如A組全部樣本在D1Mit365位點、C組在D6Mit8位點上都出現了與其他三組不一致的DNA片段長度,但都為純合的基因型,這可能是在小鼠模型構建之初選擇了不同的亞系而導致的。又如A組在D3Mit29、D17Nds3兩個位點各出現了1只與組內其他4只不同的基因型,如果該樣本處在基礎群或核心群中,可以在日后的繁育管理中將其淘汰,避免在該位點出現雜合等位基因。
近交系小鼠的遺傳質量直接影響著實驗結果的可靠性[10,11],大多數基因工程小鼠都是以近交系為背景進行基因改造而來。遺傳質量的改變可能發生在建立時選用的小鼠自身發生遺傳變異,遺傳背景不符合近交系特點;也可能發生在后續的建系保種過程中,如回交倒入品系不合格,回交未超過5代(N5),未嚴格按照全同胞兄妹繁殖等。

表1 30個微衛星座位的引物序列、擴增條件及各組基因型結果

表2 任意兩組間相同等位基因數量與相似系數
注:對角線以上部表示兩組間相同位點數量,對角線以下為兩組間相似系數。
Note. The number of the same alleles (above the diagonal) and similarity index (below the diagonal)

表3 任意兩組間遺傳相似度和遺傳距離
注:對角線以上部表示兩組間遺傳相似度,對角線以下為兩組間遺傳距離。
Genetic identity (above the diagonal) and genetic distance (below the diagonal)
微衛星DNA具有位點充足,遺傳穩定,多態性高,片段短容易擴增等優勢,非常適合用于近交系的遺傳監測。近交系遺傳修飾小鼠在保種、擴繁的過程中除目的基因的檢測外,定期對基礎群和核心群的繁殖個體進行遺傳背景的篩查很有必要,及時發現不合格的個體并不作選留,可維護整個種群的純合性。本文通過微衛星DNA分子標記對不同來源高度免疫缺陷小鼠的遺傳質量進行檢測,為近交系小鼠微衛星位點的篩選提供數據支撐,同時,對建立動物模型質量評價提供參考。對于今后的保種和繁殖以及使用的意義和社會價值的重要性進行闡述。
[1]Basta PV, Whitmore SP, Basham KB, et al. Microsatellite analysis in FVB/N mice [J]. Comp Med, 2004, 54(5): 524-527.
[2]Katoh H, Yoshino S, Inui Y, Honda S, et al. Microsatellite genotyping for genetic quality testing using sperm cells in the mouse [J]. Exp Anim, 2005, 54( 4): 373-376.
[3]陳振文, 歐陽兆和, 董罡, 等. 用微衛星標記技術對國內BALB/c小鼠遺傳質量的分析 [J]. 遺傳, 2004, 26(6): 845-848.
[4]李芳芳, 魏杰, 王洪, 等. 應用微衛星標記對兩個豚鼠封閉群的遺傳學研究 [J]. 中國比較醫學雜志, 2014, 24(12): 33-38.
[5]歐陽兆和, 陳振文, 李瑞生, 等. 微衛星DNA多態性在十種近交系小鼠遺傳監測中的應用研究[J]. 中國比較醫學雜志,2004,14(2):71-74.
[6]王純耀,楊衛紅,宋國英,等.微衛星DNA在近交系小鼠遺傳監測中的應用 [J]. 中國獸醫學報, 2008, 28(3): 333-335.
[7]王洪, 杜小燕, 徐平, 等. 上海KM小鼠種子群體遺傳狀況分析 [J]. 中國比較醫學雜志, 2014, 24(12): 27-32.
[8]JAX Mice, JAX Mice & Services, The Jackson Laboratory, Bar Harbor, ME. World Wide Web (http://www.jax.org/strain/005557)
[9]劉先菊, 王艷蓉, 高子琪, 等. 近交系小鼠微衛星DNA引物的篩選和Tm值優化研究 [J].實驗動物科學, 2012, 29(1): 9-13.
[10]張樹輝,魏泓,史景泉.近交系小鼠微衛星DNA多態性的研究[J]. 遺傳, 2000, 22(6): 375-378.
[11]劉先菊, 王艷蓉, 張麗芳, 等. 常用近交系小鼠微衛星 DNA多態性的分析研究 [J]. 實驗動物科學, 2010, 27(5): 1-4.
Genetic monitoring and analysis of highly immunodeficient mice from different sources by microsatellite DNA markers
FAN Tao, WANG Hong, WEI Jie, ZHOU Shu-ya, YUE Bing-fei, LI Bao-wen.
National Institutes for Food and Drug Control, Beijing 100050, China)
ObjectiveTo test and analyze the genetic background of highly immunodeficient mice from different sources. Methods Four highly immunodeficient mouse strains from different sources of NOD background were collected. 30 microsatellite DNA sites were detected, and the genotype can be displayed by gel electrophoresis and STR scanning. Results17 microsatellite sites exhibit polymorphism in 20 mice of the four groups. There were 30 homozygous loci in the mice of groups A and B, and heterozygous in the other two groups. The genetic distance is minimum between groups A and B, showing a higher genetic similarity. ConclusionsThe genetic backgrounds are different in highly immunodeficient mice from different sources.
Immunodeficient mice; Microsatellite; Genetic quality; Mice
范濤(1983-),男,技師,專業:實驗動物保種。E-mail:crvchinaft@126.com。
李保文(1967-),男,副主任技師。E-mail:libaowen2003@aliyun.com。
研究報告
R-33
A
1671-7856(2016) 08-0091-05
10.3969.j.issn.1671-7856.2016.08.015
2016-04-28