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骨關(guān)節(jié)炎軟骨細胞對白細胞介素18的炎癥應(yīng)答

2016-09-16 08:14:53付兆宗江建明趙振東司沙沙謝清華劉一濤中山大學(xué)附屬江門醫(yī)院江門市中心醫(yī)院脊柱骨科廣東江門5900南方醫(yī)科大學(xué)南方醫(yī)院脊柱骨科廣東廣州5055江門市中心醫(yī)院生殖中心廣東江門5900
分子影像學(xué)雜志 2016年3期
關(guān)鍵詞:骨關(guān)節(jié)炎檢測

付兆宗,江建明,趙振東,司沙沙,謝清華,劉一濤中山大學(xué)附屬江門醫(yī)院(江門市中心醫(yī)院)脊柱骨科,廣東江門 5900;南方醫(yī)科大學(xué)南方醫(yī)院脊柱骨科,廣東 廣州 5055;江門市中心醫(yī)院生殖中心,廣東 江門 5900

臨床研究

骨關(guān)節(jié)炎軟骨細胞對白細胞介素18的炎癥應(yīng)答

付兆宗1,江建明2,趙振東1,司沙沙3,謝清華1,劉一濤1
1中山大學(xué)附屬江門醫(yī)院(江門市中心醫(yī)院)脊柱骨科,廣東江門 529030;2南方醫(yī)科大學(xué)南方醫(yī)院脊柱骨科,廣東 廣州 510515;3江門市中心醫(yī)院生殖中心,廣東 江門 529030

目的 探討IL-18對骨關(guān)節(jié)炎軟骨細胞的作用。方法 取骨關(guān)節(jié)炎患者的膝關(guān)節(jié)軟骨,進行原代細胞培養(yǎng)。不同濃度的IL-18(0,50,150,300 ng/mL)刺激軟骨細胞,RT-PCR檢測TNFα和COX-2 mRNA的表達,ELISA檢測TNFα、PGE2的水平。應(yīng)用IL-1受體阻斷劑(IL-1Ra)+IL-18干預(yù)軟骨細胞,檢測軟骨細胞COX-2的表達量和培養(yǎng)液中PGE2的水平。提取軟骨細胞RNA,測定IL-18受體的表達。結(jié)果 對于COX-2和TNFα,300 ng/mL組和150 ng/mL組mRNA的表達量顯著高于對照組(P<0.01,P<0.05)。50、300 ng/mL組的PGE2水平顯著高于對照組(P<0.05)。150、300 ng/mL組的TNFα蛋白的濃度顯著高于對照組(P<0.05),IL-1Ra組的PGE2濃度高于對照組(P<0.01),但是低于IL-18組(P<0.01)。軟骨細胞能夠檢測到IL-18受體的表達。結(jié)論 IL-18誘導(dǎo)軟骨細胞產(chǎn)生炎癥應(yīng)答,這種作用和IL-1β有關(guān)但不完全依賴IL-1β。

骨關(guān)節(jié)炎;白細胞介素18;軟骨細胞;退行性變

骨性關(guān)節(jié)炎(OA)是全球最常見的關(guān)節(jié)疾病,給社會造成巨大的經(jīng)濟負擔[1-2]。我國OA的發(fā)病率約為4%。60歲以上者膝骨性關(guān)節(jié)炎發(fā)病率高達49%,每年消耗的醫(yī)療費用超過1500億元[3]。因此,早期有效的治療OA具有重大的社會效益和經(jīng)濟效益。目前OA的治療方法多樣,但是難以阻止病情進展,大量患者最終需接受關(guān)節(jié)置換手術(shù)。雖然手術(shù)能夠一定程度提高生活質(zhì)量,但是給患者帶來較大的創(chuàng)傷和醫(yī)療負擔,且存在血栓形成、關(guān)節(jié)內(nèi)感染、假體松動等并發(fā)癥[4-5]。另外,隨著人口平均壽命的延長以及OA發(fā)病的年輕化,平均壽命為10~15年的關(guān)節(jié)假體需慎用于65歲以下的患者。因此,如何針對OA的發(fā)病機制,尋找新的、有效的治療方法一直是骨關(guān)節(jié)炎研究領(lǐng)域的熱門課題。

OA是多種炎癥因子參與的關(guān)節(jié)退變疾病。軟骨破壞是其主要病理特征,軟骨碎片進入滑液,刺激滑膜引起滑膜炎,滑膜釋放序貫性的炎性介質(zhì),進一步降解軟骨,形成惡性循環(huán)[6]。白細胞介素1β誘導(dǎo)軟骨細胞產(chǎn)生NO、iNOS、PGE2、MMPs等損傷性的炎癥因子[7],導(dǎo)致軟骨細胞的炎癥反應(yīng)和軟骨基質(zhì)的降解[8-10]。IL-18的結(jié)構(gòu)與IL-1相似,被認為是IL-1超家族的一員[11-12]。類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎(RA)患者的膝關(guān)節(jié)滑液中可以檢測到IL-18的表達,同時,RA的關(guān)節(jié)滑膜中也可檢測到IL-18R的存在[13-14]。前人的研究探討了高濃度的IL-18對RA滑膜細胞和RA患者外周血單核細胞的影響,并發(fā)現(xiàn)對后者的促炎作用更加顯著。但是,IL-18對OA軟骨細胞的作用尚未有確切報道。IL-1能夠誘導(dǎo)PGE2的產(chǎn)生和COX-2的基因表達,并誘導(dǎo)iNOS的產(chǎn)生[15]。但是,IL-1β和IL-18在這種作用中的關(guān)系尚不清楚。本研究探討了IL-18在OA發(fā)病過程中的作用,分析了IL-18和IL-1在促炎作用中的關(guān)系,為OA的靶向治療提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1細胞培養(yǎng)與分組

實驗所用的軟骨細胞來自8名OA患者(5女,3男,平均年齡62.3歲)。取材過程獲得患者的知情同意。關(guān)節(jié)軟骨切成2~3 mm3的小塊,DMEM(Gibco,USA)沖洗3次,10%的胰蛋白酶37℃下消化15 min。收集組織,加入0.2%的II型膠原酶(Gibco,USA)和0.1%的透明質(zhì)酸酶(Sigma,USA)37℃搖床消化6 h。除去消化酶,DMEM清洗,無菌細胞篩過濾。用含10%FBS的DMEM懸浮細胞并進行原代培養(yǎng)。倒置相差顯微鏡觀察軟骨細胞的形態(tài)。檢測軟骨細胞的特異性膠原——Ⅱ型膠原進行細胞鑒定。原代細胞接種至六孔板。原代培養(yǎng)的軟骨細胞加入不同濃度的IL-18(0、50、150和300 ng/mL)孵育48 h,收集上清液,完成ELISA檢查。提取細胞總RNA,進行后續(xù)PCR實驗。

為進一步研究IL-18和IL-1的炎癥誘導(dǎo)作用,取5例軟骨細胞分為3組:對照組不加干預(yù),IL-18組加入100 ng/mL的IL-18,IL-1Ra(IL-1受體抑制劑)組軟骨細胞加入100 ng/mL的IL-18和IL-1Ra(R&D,USA),孵育24 h。收集細胞上清液,ELISA法檢測PGE2的水平。

1.2細胞免疫化學(xué)檢測

8 mm×8 mm載玻片泡酸并消毒后放入六孔板,接種軟骨細胞,培養(yǎng)24 h,完成爬片。棄去培養(yǎng)基,PBS清洗3次,每次3 min。3%雙氧水封閉內(nèi)源性過氧化物酶,動物血清封閉非特異性蛋白。去除殘留血清,加入II型膠原兔多克隆抗體(Boster,China),放入濕盒中4℃過夜。加入羊多克隆抗體(Boster,China),37℃孵育30 min。加入辣根過氧化物酶底物和DAB顯色劑,倒置顯微鏡下觀察并采集圖像。

1.3細胞因子檢測

收集細胞培養(yǎng)上清液至1.5 mL離心管,3000 g/min離心后放-80℃低溫冰箱保存,集中測定細胞因子濃度。應(yīng)用酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA),根據(jù)試劑盒廠家的說明書(PGE2:Uscn Life,China;TNFα:Cusabio,China)繪制標準曲線,計算PGE2和TNFα的濃度。

1.4RT-PCR檢測

應(yīng)用Trizol(Invitrogen,USA)裂解培養(yǎng)的軟骨細胞,提取總RNA。260 nm分光光度計(NanoDrop,Wilmington,USA)測定mRNA濃度。應(yīng)用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Toyobo,Japan)(Applied Biosystems,F(xiàn)oster City,CA)進行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)(Applied biosystems,F(xiàn)oster City,CA)。反應(yīng)條件:30℃-10 min,42℃-20 min,95℃-5 min。應(yīng)用ABI7500 PCR(Applied biosystems,F(xiàn)oster City,CA)系統(tǒng)完成定量PCR。雙delta Ct法進行定量分析[16]。取PCR產(chǎn)物進行凝膠電泳分析。取4例患者軟骨細胞,參考Moller等的研究檢測IL-18Rα和IL-18Rβ的表達[17]。

1.5統(tǒng)計分析

應(yīng)用SPSS13.0軟件包進行統(tǒng)計分析。細胞因子的濃度及mRNA水平均表示為均數(shù)±標準差,P<0.05有統(tǒng)計學(xué)差異。不同濃度IL-18對軟骨細的胞影響采用多樣本比較的方差分析,若有統(tǒng)計學(xué)差異,則采用LSD法或者Dunnetts'T3(方差不齊時)進行多重比較。

2 結(jié)果

2.1軟骨細胞的形態(tài)觀察和鑒定

接種后1 d軟骨細胞呈圓形或橢圓形,透光度高(圖1A),細胞穩(wěn)定貼壁后成多邊形,核大(圖1B)。軟骨細胞Ⅱ型膠原染色陽性,細胞間分布有網(wǎng)狀的Ⅱ型膠原(圖1C),對照組未見Ⅱ型膠原陽性染色(圖1D)。

2.2RT-PCR和ELISA檢測炎癥因子的水平

隨著IL-18濃度的升高,COX-2和TNFα的mRNA表達量升高(圖2)。無論是COX-2還是TNFα,300 ng/mL組和150 ng/mL組的表達量顯著高于對照組(P<0.01,P<0.05)。檢測不同濃度IL-18干預(yù)下,炎癥蛋白的水平(表1)。50 ng/mL組、150 ng/mL組和300 ng/mL的PGE2濃度分別為410.03±22.97、460.38±112.86、518.28± 38.80 pg/mL,均高于對照組(340.47±22.03 pg/mL,P= 0.003,P<0.001和P<0.001,圖3A)。同樣,與對照組相比,150 ng/mL組和300 ng/mL組的TNFα(52.45±10.93 pg/mL和103.80±22.29 pg/mL)顯著增高(P=0.002,P<0.001,圖3B)。IL-18誘導(dǎo)PGE2和TNFα的增高,呈濃度依賴效應(yīng)。

2.3IL-1Ra對軟骨細胞炎癥應(yīng)答的影響

IL-18干預(yù)下,無論是否加入IL-1Ra,COX-2的表達上調(diào)(圖4)。對照組、IL-18組和IL-1Ra組的PGE2濃度分別為140.26±23.63 pg/mL、399.27±70.27 pg/mL和268.16±36.45 pg/mL,IL-18組和IL-Ra組PGE2的水平顯著高于對照組(P<0.001,P=0.002),而IL-18組的PGE2濃度顯著高于IL-Ra對照組(P=0.003,圖4)。

2.4RT-PCR檢測IL-18R的表達

RT-PCT檢查軟骨細胞IL-18受體的表達(圖5)。盡管表達強度不一致,軟骨細胞中均可檢測到IL-18Rα的表達,2例檢測到IL-18β的表達。圖中呈現(xiàn)的是4例患者軟骨細胞(B)中IL-18Rα和IL-18β mRNA的表達。

表1 IL-18干預(yù)后PGE2、TNF-α的水平(,pg/mL)

表1 IL-18干預(yù)后PGE2、TNF-α的水平(,pg/mL)

*P<0.01 vs PGE2in 0 ng/mL group;#P<0.01 vs TNF-α in 0 ng/mL group.

TNF-α(n=8)20.48±7.36 25.32±9.55 52.45±10.93#103.80±22.29#Group 0 ng/mL 50 ng/mL 150 ng/mL 300 ng/mL PGE2(n=8)340.47±22.03 410.03±22.97* 460.38±112.86* 518.28±38.80*

3 討論

IL-18誘導(dǎo)OA軟骨細胞的炎癥應(yīng)答。本研究發(fā)現(xiàn)IL-18能夠誘導(dǎo)軟骨細胞表達TNFα和PGE2,刺激軟骨細胞生成過量的COX-2。COX-2通過降解花生四烯酸產(chǎn)生PGE2。一旦PGE2過量,將導(dǎo)致軟骨代謝失衡,誘發(fā)軟骨降解[18]。關(guān)節(jié)液中TNFα的水平和OA病情緊密緊密相關(guān),是OA炎癥進展的促進因素[19-20]。另外,本研究還發(fā)現(xiàn)OA軟骨細胞均表達IL-18Rα,且部分表達IL-18Rβ。IL-18對細胞的刺激依賴于這兩種受體,然后通過NF-κB途徑完成信號轉(zhuǎn)導(dǎo),引起細胞炎癥應(yīng)答[22]。

IL-18可能通過上調(diào)某些細胞因子的含量,引起OA的癥狀。TNF-α是OA病理過程中重要的細胞因子之一,許多研究發(fā)現(xiàn)OA的功能評分與TNF-α的含量具有相關(guān)性[19,21]。另外,TNF-α和PGE2一起加重OA患者膝關(guān)節(jié)的疼痛、腫脹等臨床癥狀。Notoya等[23]也對IL-18和TNF-α做了部分研究,并發(fā)現(xiàn),由于IL-18能夠誘導(dǎo)IL-1β和TNF-α的mRNA表達,后兩者在對軟骨細胞的作用類似于IL-18。IL-18對軟骨細胞的影響可能依賴于IL-1或TNFα,或者受到二者的影響[23]。

IL-18和IL-1β對軟骨細胞的作用既有交叉又相互獨立。IL-1β促進軟骨細胞分泌炎癥因子,并分泌基質(zhì)金屬蛋白酶,導(dǎo)致軟骨基質(zhì)的降解,是OA發(fā)病過程中典型的促炎因子[24-25]。IL-18在功能上與IL-1β有相似之處,二者均促進軟骨細胞分泌炎癥因子。然而,IL-1Ra阻斷IL-1β的作用后,IL-18仍然能成功誘導(dǎo)軟骨細胞的炎癥應(yīng)答,但是PGE2和TNFα的水平有所降低。這表明IL-18發(fā)揮作用部分依賴于IL-1β,但并不全依賴于IL-1β。可能與二者的傳導(dǎo)通路有關(guān)。IL-18通過MAPK-p38-AP1途徑和NF-κB途徑促進COX-2的產(chǎn)生[26-27],而IL-1β可以通過p38 APK/c-Fos/AP-1和JAK2/STAT1/2途徑誘導(dǎo)基質(zhì)金屬蛋白酶的產(chǎn)生。不同的信號通路導(dǎo)致了IL-18和IL-1β的不同效應(yīng)。

關(guān)節(jié)液主要來自滑膜細胞的分泌和軟骨細胞的部分代謝產(chǎn)物,是關(guān)節(jié)軟骨自我更新所依賴的環(huán)節(jié)。OA患者滑膜細胞產(chǎn)生更多的IL-18,并通過類似自分泌的方式影響滑膜細胞[28],總體結(jié)果增加了關(guān)節(jié)液中IL-18的濃度。我們的體外實驗一定程度上模擬了軟骨細胞在高濃度IL-18的干預(yù)下主要促炎因子的變化,體外特定的干預(yù)有利于剔除活體代謝中的混雜因素。但是,由于正常情況下關(guān)節(jié)液較少,且為倫理學(xué)所限制,目前尚無大樣本的研究確定生理狀態(tài)、病理狀態(tài)下關(guān)節(jié)液中IL-18的濃度。我們體外實驗中干預(yù)濃度的確定一方面參考了前人的研究[29],另一方面是基于預(yù)實驗的結(jié)果。盡管如此,仍能說明IL-18對軟骨炎癥代謝活動的影響。

IL-18能夠增加典型炎癥因子的表達,可能處于炎性反應(yīng)的上游。既往的研究表明,IL-1在OA的發(fā)病過程中起重要的作用,本實驗發(fā)現(xiàn)IL-18對OA軟骨細胞的影響可能與IL-1有關(guān),但是其促炎作用相對獨立于IL-1對軟骨細胞的影響。因此,阻斷或抑制IL-18的代謝過程可能對實現(xiàn)早期OA的靶向治療具有重要的價值。

[1]Nho SJ,Kymes SM,Callaghan JJ,et al.The burden of hip osteoarthritis in the United States:epidemiologic and economic considerations[J].JAmAcad Orthop Surg,2013,21(Suppl 1):S1-6.

[2]Bitton R.The economic burden of osteoarthritis[J].Am J Manag Care,2009,15(8 Suppl):S230-5.

[3]那鍵,劉藝,馬克勇,等.老年性骨關(guān)節(jié)炎的分子生物學(xué)機制及治療展望[J].中國老年學(xué)雜志,2010,30(20):3035-7.

[4]Shao XT,F(xiàn)eng L,Gu LJ,et al.Expression of interleukin-18,IL-18BP,and IL-18R in serum,synovial fluid,and synovial tissue in patients with rheumatoid arthritis[J].Clin Exp Med,2009,9(3): 215-21.

[5]Moser C.Response to:cytokine profile of autologous conditioned serum for treatment of osteoarthritis,in vitro effects on cartilage metabolism and intra-articular levels after injection[J].Arthritis Res Ther,2010,12(6):410-1.

[6]Smith MD,Triantafillou S,Parker A,et al.Synovial membrane inflammation and cytokine production in patients with early osteoarthritis[J].J Rheumatol,1997,24(2):365-71.

[7]Dinarello CA.The IL-1 family and inflammatory diseases[J].Clin Exp Rheumatol,2004,20(5 Suppl 27):S1-13.

[8]Dai SM,Shan ZZ,Xu H,et al.Cellular targets of interleukin-18 in rheumatoid arthritis[J].Ann Rheum Dis,2007,66(11):1411-8.

[9]Mohtai M,Gupta MK,Donlon B,et al.Expression of interleukin-6 in osteoarthritic chondrocytes and effects of fluid-induced shear on this expression in normal human chondrocytes in vitro[J].J Orthop Res,1996,14(1):67-73.

[10]Bjornsson GL,Thorsteinsson L,Gudmundsson KO,et al.Inflammatory cytokines in relation to adrenal response following total hip replacement[J].Scand J Immunol,2007,65(1):99-105.

[11]Ghayur T,Banerjee S,Hugunin M,et al.Caspase-1 processes IFN-gamma-inducing factor and regulates LPS-induced IFN-gamma production[J].Nature,1997,386(6625):619-23.

[12]Okamura H,Tsutsi H,Komatsu T,et al.Cloning of a new cytokine that induces IFN-gamma production by T cells[J].Nature,1995,378(6552):88-91.

[13]Pawlik A,Kurzawski M,Drozdzik M,et al.Interleukin-18 gene(IL18)promoter polymorphisms in patients with rheumatoid arthritis[J].Scand J Rheumatol,2009,38(3):159-65.

[14]Matsui K,Tsutsui H,Nakanishi K.Pathophysiological roles for IL-18 in inflammatory arthritis[J].Expert Opin Ther Targets,2003,7(6):701-24.

[15]Olee T,Hashimoto S,Quach J,et al.IL-18 is produced by articular chondrocytes and induces proinflammatory and catabolic responses[J].J Immunol,1999,162(2):1096-100.

[16]Livak KJ,Schmittgen TD.Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T))Method[J].Methods,2001,25(4):402-8.

[17]M?ller B.Interleukin-18 receptor expression in synovial fluidderived fibroblast-like synoviocytes:comment on the article by Kawashima and Miossec[J].Arthritis Rheum,2004,50(7):2373-4.

[18]Li X,Ellman M,Muddasani P,et al.Prostaglandin E2 and its cognate EP receptors control human adult articular cartilage homeostasis and are linked to the pathophysiology of osteoarthritis[J].Arthritis Rheum,2009,60(2):513-23.

[19]Maganev VA,Davletshin RA,Davletshina GK,et al.Dynamics of tumour necrosis factor-alpha and clinical signs of osteoarthrosis during the treatment with alflutop in combination with peloid applications underconditions of health resort[J].Vopr kurortol fizioter lech Fiz Kult,2011(2):18-20.

[20]Orita S,Koshi T,Mitsuka T,et al.Associations between proinflammatory cytokines in the synovial fluid and radiographic grading and pain-related scores in 47 consecutive patients with osteoarthritis of the knee[J].BMC Musculoskelet Disord,2011,12(1):144-7.

[21]Chan BY,F(xiàn)uller ES,Russell AK,et al.Increased chondrocyte sclerostin May protect against cartilage degradation in osteoarthritis[J].Osteoar Cartilage,2011,19(7):874-85.

[22]Kawashima M,Miossec P.Heterogeneity of response of rheumatoid synovium cell subsets to interleukin-18 in relation to differential interleukin-18 receptor expression[J].Arthritis Rheum,2003,48(3): 631-7.

[23]Notoya K,Jovanovic DV,Reboul P,et al.The induction of cell death in human osteoarthritis chondrocytes by nitric oxide is related to the production of prostaglandin E-2 via the induction of cyclooxygenase-2[J].J Immunol,2000,165(6):3402-10.

[24]Singh R,Ahmed S,Malemud CJ,et al.Epigallocatechin-3-gallate selectively inhibits interleukin-1beta-induced activation of mitogen activated protein kinase subgroup c-Jun N-terminal kinase in human osteoarthritis chondrocytes[J].J Orthop Res,2003,21(1): 102-9.

[25]Lim H,Kim HP.Matrix metalloproteinase-13 expression in IL-1β-treated chondrocytes by activation of the p38 MAPK/c-Fos/ AP-1 and JAK/STAT pathways[J].Arch Pharm Res,2011,34(1): 109-17.

[26]Lee JK,Kim SH,Lewis EC,et al.Differences in signaling pathways by IL-1beta and IL-18[J].Proc Natl Acad Sci USA,2004,101(23): 8815-20.

[27]Chandrasekar B,Mummidi S,Mahimainathan L,et al.Interleukin-18-induced human coronary artery smooth muscle cell migration is dependent on NF-kappaB-and AP-1-mediated matrix metalloproteinase-9 expression and is inhibited by atorvastatin[J].J Biol Chem,2006,281(22):15099-109.

[28]王鳳龍,江建明,肖軍,等.白細胞介素-18在骨關(guān)節(jié)炎滑膜細胞中的表達及意義[J].中華風(fēng)濕病學(xué)雜志,2010,14(4):260-2.

[29]Inoue H,Hiraoka K,Hoshino T,et al.High levels of serum IL-18 promote cartilage loss through suppression of aggrecan synthesis[J].Bone,2008,42(6):1102-10.

Inflammatory responses of human osteoarthritic chondrocytes induced by interleukin 18

FU Zhaozong1,JIANG Jianming2,ZHAO Zhendong1,SI Shasha3,XIE Qinghua1,LIU Yitao1
1Department of Spine surgery,Affiliated Jiangmen Hospital of Sun Yat-sen University(Jiangmen Central Hospital),Jiangmen 529030,China;2Department of Spine surgery,Nanfang Hospital of Southern Medical University,Guangzhou 510515,China;3Reproductive center,Jiangmen Central Hospital,Jiangmen 529030,China

Objective To explore the role of interleukin 18(IL-18)on the osteoarthritis(OA)patients'chondrocytes.Methods Knee cartilage samples were obtained from osteoarthritic patients,and the primary cells were cultured.After stimulated by IL-18(0,50,150,300 ng/mL),chondrocytes were collect to obtain the total RNA,and the supernatant were extracted,too.The mRNA’s expression of COX-2 and TNFα were detected by quantitative RT-PCR and the level of PGE2and TNFα were investigated using ELISA.Besides IL-18,IL-1 receptor inhibitor(IL-1Ra)was also added into the medium of cell culture. COX-2 mRNA and PGE2were respectively determination.IL-18 receptors in chondrocytes were detected by RT-PCR.Results mRNA expression of COX-2 and TNFα in 150 and 300 ng/mLwere both significantly higher than that in control group(P<0.05). The level of in 50 and 300 ng/mL group were higher than that in control group(P<0.01).While the concentration of TNFα in 150 and 300 ng/mL groups appeared more than that in control group significantly(P<0.01).And the density of PGE2in IL-Ra group was significantly more than that in control group,but less than that of IL-18 group.IL-18R can be detected on chondrocytes.Conclusion IL-18 induces inflammatory responses in osteoarthritic chondrocytes and that this effect was related with,although not entirely dependent on,IL-1β.

osteoarthritis;interleukin 18;chondrocytes;degradation

2016-03-03

國家自然科學(xué)基金(30571890);廣東省自然科學(xué)基金(2015A030310248)

付兆宗,博士,主治醫(yī)師,E-mail:doctor1999@126.com

江建明,碩士,教授,E-mail:doctor2003@126.com

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消腫止痛散外敷治療膝骨關(guān)節(jié)炎的近期臨床療效觀察
小波變換在PCB缺陷檢測中的應(yīng)用
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