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ARTP誘變選育中溫α-淀粉酶高產菌株及其發酵條件優化

2016-09-18 12:38:27王興吉劉文龍錢娟娟山東隆科特酶制劑有限公司山東臨沂276400
中國釀造 2016年1期
關鍵詞:優化

王興吉,劉文龍,錢娟娟(山東隆科特酶制劑有限公司,山東 臨沂 276400)

ARTP誘變選育中溫α-淀粉酶高產菌株及其發酵條件優化

王興吉,劉文龍*,錢娟娟
(山東隆科特酶制劑有限公司,山東 臨沂 276400)

利用常壓室溫等離子體(ARTP)技術,對產中溫α-淀粉酶的枯草芽孢桿菌菌株進行誘變處理,通過平板、深孔板初篩及搖瓶復篩共篩選出3株酶活明顯提高的菌株,其中產酶活力最高的突變株BS-12,搖瓶酶活達到了801U/mL,較出發菌株提高了32.2%。通過單因素試驗,得到的最佳發酵條件為接種量6%,溫度36℃,發酵時間68 h。在此條件下,搖瓶酶活力達到1 395U/m L,經30 L發酵罐放大,酶活達到了1 553U/m L。

常壓室溫等離子體;中溫α-淀粉酶;發酵條件;優化;枯草芽孢桿菌

中溫α-淀粉酶是指一類最適反應溫度在50~70℃的α-淀粉酶,已經廣泛應用于淀粉糖[1]、焙烤工業[2-3]、啤酒釀造[4]、酒精工業等行業,也用于飼料、紡織[5-6]、造紙[7]、醫藥[8]等各個領域。目前,國內對中溫α-淀粉酶的研究不多,大多數科研院所已轉向耐高溫α-淀粉酶、酸性α-淀粉酶、堿性α-淀粉酶等領域。

常壓室溫等離子體(atmospheric and room temperature plasma,ARTP)誘變技術的射流溫度為25~35℃,且分布均勻,對于環境和人均無危害,無真空裝置,設備簡單易于操作,與生物大分子和細胞作用明顯,同時有獨特的SOS修復機制,基于以上優勢,已經成為誘變領域的研究熱點。本研究以枯草芽孢桿菌為出發菌株,通過ARTP誘變技術進行誘變處理[9-10],并對高產突變菌株的發酵條件進行優化,提高了生產能力和發酵水平,對促進我國酶制劑工業的發展具有現實意義。

1 材料與方法

1.1料與試劑

1.1.1株與試劑

枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis):本公司省重點實驗室保藏菌株。

葡萄糖、氯化鈉、硫酸銨、磷酸氫二鈉、氯化鈣、瓊脂均為分析純:國藥集團化學試劑有限公司;蛋白胨、酵母浸出物、酵母粉、營養肉湯:美國BD公司;糊精、玉米漿:青援食品有限公司;豆餅粉、玉米粉:市售。

1.1.2養基

斜面培養基:蛋白胨1%,酵母浸出物0.5%,氯化鈉1%,瓊脂2%,pH值自然。

種子培養基:蛋白胨1%,酵母浸出物0.5%,氯化鈉1%,pH值6.6。

平板篩選培養基:葡萄糖2%,氯化鈉0.2%,酵母粉0.2%,營養肉湯0.3%,蛋白胨0.5%,玉米淀粉1%,瓊脂1.3%,pH值7.0左右。

深孔板、搖瓶發酵培養基:糊精4.2%,硫酸銨0.4%,磷酸氫二鈉1.5%,氯化鈣0.27%,調pH值7.0,加入碳酸鈣1%。

30 L發酵培養基:玉米淀粉5%,玉米粉6%,豆餅粉1%,玉米漿1.4%,磷酸氫二鈉0.8%,消泡劑、液化酶適量,pH 6.5。

1.2器與設備

ARTP-IIS常壓室溫等離子體誘變系統:無錫思清源生物科技有限公司;ZWF-B3612搖瓶機、ZXSD-A 1270生化培養箱:上海智誠分析儀器制造有限公司;Plus384酶標儀:美國MD公司;5810R離心機:德國Eppendorf公司;30 L發酵罐:上海國強生化有限公司。

1.3法

1.3.1活測定方法

酶活的測定按照國家標準GB 8275—2009《食品添加劑—α-淀粉酶制劑》執行。

酶活定義:1m L液體酶于60℃,pH 6.0條件下,1 h液化1 g可溶性淀粉,即為1個酶活力單位,以U/m L表示。

1.3.2菌懸液的制備

離心收集培養至對數期的種子液,用生理鹽水洗滌兩次,然后用生理鹽水稀釋成濃度為106~108CFU/m L的菌懸液。

1.3.3ARTP誘變

吸取10μL菌懸液于載片中央并涂抹均勻,用無菌鑷子將載片放于ARTP系統操作室旋轉臺上的對應孔位,調整照射距離2mm,氣流量10 L/min,功率100W,然后進行誘變處理。本實驗將出發菌株分別處理0、5 s、10 s、15 s、20 s、25 s、30 s,通過菌落數計算菌株的致死率,并繪出致死率曲線[9]。致死率計算公式如下:

式中:m為經ARTP處理后平板上平均菌落數,CFU;n為未經ARTP處理平板上菌落數,CFU。

1.3.4變菌株篩選

初篩:采用平板和深孔板相結合的方法。將誘變后的菌液涂布于平板篩選培養基上,34℃培養36 h,挑選淀粉水解圈直徑與菌落直徑比值超過6.5的菌株;將這些菌落轉入深孔板,34℃培養36 h,培養結束后用酶標儀測定上清液酶活[11-12]。

復篩:將初篩篩選出的誘變菌株分別進行搖瓶發酵,34℃培養50h,每組設置3個平行試驗,發酵結束測定酶活。

1.3.5酵條件優化單因素試驗

在原有發酵工藝基礎上,在裝液量100m L/500m L,搖床轉速200 r/m in的條件下進行搖瓶培養,分別對接種量、溫度、發酵時間進行優化。

接種量的確定:采用2%、4%、6%、8%和10%的接種量,34℃發酵50 h后測定酶活,以確定最佳接種量。

溫度的確定:采取恒溫發酵的方式,以32℃、34℃、36℃、38℃、40℃作為培養溫度、按6%的接種量接種,發酵50 h后測定酶活,以確定最佳培養溫度。

發酵時間的確定:按6%的接種量接種,36℃培養,發酵24 h后,每隔4 h測定酶活,以確定最佳發酵時間。

1.3.6優條件下的搖瓶實驗

根據1.3.5的試驗結果,選取最優發酵條件,進行搖瓶培養,發酵結束測定酶活。

1.3.730 L發酵罐放大實驗

為了驗證優化后發酵條件效果,采用30 L發酵罐對發酵條件進行放大實驗。固定裝液量60%,接種量6%,溫度36℃,罐壓0.06MPa,通氣量3m3/h,發酵時間68 h。發酵結束后,測定酶活力。

1.3.8變菌株的遺傳穩定性實驗

誘變株在平板上進行6次傳代培養,對每1代菌株進行搖瓶發酵,測定酶活力,以檢測誘變菌株的遺傳穩定性[13-15]。

2 結果與分析

2.1變菌株的篩選結果

2.1.1ARTP誘變致死率曲線的測定

按方法1.3.3對出發菌株誘變致死率進行計算,并獲得致死率曲線,結果如圖1所示。

圖1 枯草芽孢桿菌的ARTP致死率曲線Fig.1 Fatality ra te curve of Bacillus subtilis with the ARTP treatm ent

由圖1可知,隨著誘變時間的增加,致死率不斷上升。當誘變時間為15 s時,致死率>90%,而時間達到20 s時,致死率>99%,本實驗將致死率設定為90%以上即可,故誘變處理時間確定為15 s。

2.1.2變菌株初篩

共挑選出1 600個淀粉水解圈直徑與菌落直徑比值超過6.5的菌落。通過深孔板篩選出酶活提高15%以上的誘變菌株共36株。

2.1.3變菌株復篩

將初篩篩選出的誘變菌株分別進行搖瓶發酵,測定其酶活力,搖瓶發酵后酶活測定結果見表1。由表1可知,菌株BS-12的發酵水平最高,所以選用BS-12進行后續實驗。

表1 菌株復篩結果Tab le 1 Secondary screening results of the m utan t strains

2.2酵條件優化結果

2.2.1種量對酶活力的影響

接種量對菌株發酵酶活力的影響見圖2。由圖2可知,接種量<6%時,酶活力隨接種量的增大而增高,接種量>6%時,酶活力隨接種量的增大反而降低,當接種量為6%時,酶活力最高。接種量的多少主要影響菌體的生長速度和代謝強度,接種量小,延遲期長,不利于菌體快速大量繁殖;接種量大,菌體過早衰老,產酶期短,最終活力不高。故選擇接種量為6%。

圖2 接種量對α-淀粉酶活力的影響Fig.2 Effectof inoculum onα-am ylase activity

2.2.2度對酶活力的影響

溫度對菌株發酵酶活力的影響見圖3。由圖3可知,溫度對發酵活力有較大影響,溫度低于36℃,菌體生長緩慢,不易形成高密度發酵;溫度高于36℃,菌體生長快,自溶也快,發酵活力反而降低。溫度36℃時,酶活力最高,為1 050 U/m L,因此最佳培養溫度為36℃。

圖3 溫度對α-淀粉酶活力的影響Fig.3 Effecto f tem perature onα-am ylase activity

2.2.3酵時間對酶活力的影響

發酵時間對酶活力的影響見圖4。由圖4可知,24 h以后發酵液酶活力逐漸升高,隨著時間的延長在發酵68 h時酶活力達到最高,68 h以后酶活力隨著發酵時間的延長逐漸降低,故選擇發酵時間為68 h。

圖4 發酵時間對α-淀粉酶活力的影響Fig.4 Effectof different fermentation time onα-am ylase activity

2.2.4優條件下的搖瓶實驗結果

在最優的發酵條件下,3批搖瓶培養,酶活力分別為1 383 U/m L、1 416 U/m L、1 395 U/m L,平均酶活達到1 395U/m L,較優化前提高了74.2%。

2.330 L發酵罐放大實驗結果

在最優條件下采用30 L發酵罐對發酵條件進行放大實驗,3批放大實驗的酶活力分別為1 523U/m L、1 561U/m L、1 576 U/m L,平均酶活達到1 553U/m L,因此優化的發酵條件是可行的。

2.4變菌株的遺傳穩定性

誘變株BS-12在平板上進行6次傳代培養,對每1代菌株進行搖瓶發酵,測定酶活力,結果見表2所示。

表2 BS-12遺傳穩定性結果Table 2 Genetic stability experiments resultof strain BS-12

由表2可知,經ARTP誘變的BS-12菌株具有良好的遺傳穩定性,經6次傳代后,搖瓶發酵活力都維持在1300U/m L左右。

3 結論

對ARTP誘變處理的枯草芽孢桿菌進行篩選,獲取高產中溫α-淀粉酶的突變株BS-12,搖瓶酶活達到了801U/m L,較出發菌株提高了32.2%。該菌株具有良好的遺傳穩定性,6次傳代后搖瓶發酵活力維持在1 300U/m L左右。

對誘變菌株發酵條件進行優化,確定的最佳發酵條件為接種量6%,溫度37℃,發酵時間68 h。在此條件下,搖瓶酶活力達到1 395U/m L,經30 L發酵罐放大,酶活達到了1 553 U/m L。

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Screening of medium-temperature α-amylase high-yield strains by ARTP and its fementation conditions optimization

WANG X ingji,LIUWenlong*,QIAN Juanjuan
(Shandong Long Kete Enzyme Co.,Ltd.,Linyi276400,China)

The Bacillus subtilis strainswhich producemedium-temperature α-amylase weremutated by atmospheric and room temperature plasma(ARTP)mutagenesis.Three strains which had higherα-am ylase activity were screened through plate and deep hole plate screening and flask secondary screening.Thestrain BS-12 had the highestenzyme-producing activity of 801 U/m l,which was32.2%higher than thatof the original strain. A ftersingle factorexperiment,theoptimal fermentation conditionswereas follows:inoculum 6%,fermentation temperature 37℃and time 68 h.Under the condition,the enzyme activitywas1 395 U/m l in flask.However,the experimentwas scaled-up by 30 L fermentation tank,and the enzyme activity reached 1 553 U/m l.

atmospheric and room temperatureplasma;medium-temperatureα-amylase;fermentation conditions;optim ization;Bacillus subtilis

TQ925

0254-5071(2016)01-0078-04

10.11882/j.issn.0254-5071.2016.01.017

2015-10-27

王興吉(1970-),男,工程師,碩士,研究方向為酶制劑生產與開發。

劉文龍(1982-),男,工程師,碩士,研究方向為酶制劑生產與開發。

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