雷公藤內酯通過下調CⅡTA抑制BV-2小膠質細胞MHCⅡ表達

金　銜，　曾常茜，　臧麗麗，　路　遙，　曹　巖，　鄒颯楓

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雷公藤內酯通過下調CⅡTA抑制BV-2小膠質細胞MHCⅡ表達

金銜1，曾常茜2，臧麗麗1，路遙2，曹巖3，鄒颯楓1

目的觀察雷公藤內酯對海人酸活化的BV-2小膠質細胞MHCⅡ分子表達的影響，并探討其相關的分子機制。方法將BV-2細胞隨機分為對照組、海人酸組、雷公藤內酯組，免疫組化方法檢測雷公藤內酯對海人酸活化的BV-2細胞MHCⅡ和CⅡTA蛋白的影響。結果對照組MHCⅡ陽性BV-2細胞為(0.059±0.005)，海人酸組MHCⅡ陽性BV-2細胞為(0.893±0.038)，經統計學處理二者存在顯著性差異(P<0.05)。雷公藤內酯組MHCⅡ陽性BV-2細胞率(0.089±0.013)，與海人酸組比較二者存在顯著性差異(P<0.05)；對照組C ⅡTA陽性BV-2細胞為(0.043±0.003)，海人酸組CⅡTA陽性BV-2細胞為(0.692±0.015)，經統計學處理二者存在顯著性差異(P<0.05)。雷公藤內酯組CⅡTA陽性BV-2細胞為(0.057±0.009)，與海人酸組比較存在顯著性差異(P<0.05)。結論雷公藤內酯可以抑制海人酸活化的BV-2細胞MHCⅡ表達，其機制可能與下調BV-2細胞CⅡTA表達有關。

雷公藤內酯；癲癇；小膠質細胞；MHC Ⅱ；CⅡTA

癲癇是由多種原因引起的神經元反復同步化異常放電所致的突然性、反復性和短暫性的運動、感覺、意識、精神、植物神經等功能異常的腦部疾病，典型的臨床表現為癲癇持續狀態。流行病學調查結果顯示，癲癇發病率為千分之一，患病率為 3.6～7.0‰，其中約20%～30%藥物治療無法控制。癲癇發作可導致腦神經元選擇性損傷甚至死亡，是癲癇頻發和難治的主要原因之一[1]。主要組織相容性復合體Ⅱ類分子(major histocompatibility complex classⅡ molecules，MHCⅡ)在抗原提呈、CD4+T細胞激活及特異性免疫應答中發揮著重要作用。MHCⅡ類分子表達失調與多種疾病有關，在癲癇發作的急性期，大多數大鼠黑質區小膠質細胞被激活并表達MHCⅡ類分子。

雷公藤內酯(triptolide,TP)是從雷公藤中分離得到的內萜二酯類化合物，是雷公藤中最具代表性的成分之一，是雷公藤抗炎及發揮免疫抑制作用的主要成分[2,3]。本實驗以海人酸活化的BV-2細胞作為研究對象，觀察雷公藤內酯對海人酸活化的BV-2細胞MHCⅡ類分子表達的影響，并進一步探討其分子機制，旨在為雷公藤內酯抗癲癇的研究與開發提供實驗依據。

1　材料和方法

1.1材料BV-2小膠質細胞由中國醫科大學免疫學教研室惠贈，海人酸購自Sigma公司，雷公藤內酯購自北京優尼康公司，DMEM高糖培養基購自Gibco公司，胎牛血清購自Hyclone公司，胰蛋白酶購自Anersco公司。大鼠抗小鼠MHCⅡ抗體、兔抗小鼠CⅡTA抗體購自Santa Cruz Biotechnology公司，兔抗大鼠IgG-HRP抗體、羊抗兔IgG-HRP抗體購自北京中杉金橋公司。

1.2方法

1.2.1BV-2小膠質細胞的分組及培養將BV-2細胞隨機對照組、海人酸組、雷公藤內酯組。對照組：BV-2細胞加入新鮮DMEM培養基培養；海人酸組：BV-2細胞用終濃度為100 nmol海人酸的DMEM培養基培養2 h；雷公藤內酯組：先用終濃度為10 nmol雷公藤內酯的DMEM培養基培養16 h，棄掉培養基后，再加入終濃度為100 nmol海人酸的DMEM培養基培養2 h。

1.2.2免疫組化法檢測BV-2小膠質細胞MHCⅡ和CⅡTA蛋白表達取對數生長期的BV-2細胞接種于內放置有蓋玻片的6孔細胞培養板，置于5% CO2培養箱內37 ℃培養24 h，棄去孔中培養基，PBS緩沖液洗滌細胞兩次，按上述方法將BV-2細胞隨機分為3組，繼續培養24 h，吸棄培養基，PBS緩沖液洗滌細胞兩次后，用75%的乙醇在4 ℃固定15 min。空氣干燥10 min，PBS沖洗3次，5 min/次，3% H2O2孵育15 min，PBS沖洗3次，5 min/次，正常羊血清室溫封閉20 min。大鼠抗小鼠MHCⅡ抗體、兔抗小鼠CⅡTA抗體1∶300稀釋，4 ℃孵育過夜，PBS沖洗3次，5 min/次。兔抗大鼠IgG-HRP抗體、羊抗兔IgG-HRP抗體室溫孵育30 min，PBS沖洗3次，5 min/次。DAB顯色，在顯微鏡下觀察染色效果，待細胞著色后立即吸棄染色液，自來水沖洗，蘇木素復染30 s，自來水沖洗，中性樹膠封片，鏡下觀察。

2　結　果

2.1雷公藤內酯對海人酸活化的BV-2細胞MHCⅡ蛋白表達的影響對照組MHCⅡ蛋白陽性BV-2細胞為(0.059±0.005)，海人酸組MHCⅡ陽性BV-2細胞為(0.893±0.038)，經統計學處理二者存在顯著性差異(P<0.05)。雷公藤內酯組MHCⅡ蛋白陽性BV-2細胞為(0.089±0.013)，與海人酸組比較存在顯著性差異(P<0.05)(見圖1)。

2.2雷公藤內酯對海人酸活化的BV-2細胞CⅡTA蛋白表達的影響對照組CⅡTA蛋白陽性BV-2細胞為(0.043±0.003)，海人酸組CⅡTA陽性BV-2細胞為(0.692±0.015)，經統計學處理兩組存在顯著性差異(P<0.05)。雷公藤內酯組CⅡTA蛋白陽性BV-2細胞為(0.057±0.009)，與海人酸組比較存在顯著性差異(P<0.05)(見圖2)。

3　討　論

研究發現，靜止狀態的小膠質細胞不表達或者微量表達MHCⅡ類分子，海人酸活化小膠質細胞高度表達MHCⅡ類分子，具有抗原提呈功能，通過免疫應答誘導神經元死亡[4～6]。在持續性癲癇后1 d錐體細胞層CA3區有明顯的神經退行性變，持續性癲癇發作后4～8 d，MHCⅡ陽性的小膠質細胞明顯增加。將微量的破傷風毒素注入大鼠形成癲癇樣癥狀，在癲癇發作的急性期大多數大鼠黑質區小膠質細胞被激活并表達MHCⅡ類分子。癲癇患者和癲癇小鼠模型腦海馬中CD8+T 細胞數量明顯比CD4+T 數量多，CD4+T 細胞傾向于浸潤到腦皮質，而CD8+T細胞傾向于浸潤到大腦海馬。細胞毒性CD8+T 細胞介導攻擊神經元是癲癇發病的關鍵機制[7,8]。

本實驗用雷公藤內酯預處理大鼠及BV-2細胞，結果發現MHCⅡ蛋白陽性表達的BV-2細胞數量明顯降低，表明雷公藤內酯能抑制海人酸活化的BV-2細胞MHCⅡ類分子的表達，從而起到保護神經元的作用。

CⅡTA基因是瑞士科學家Mach在1993年研究MHCⅡ類分子缺陷的裸淋巴細胞綜合征(Bare lymphocyte syndrome,BLS)患者時發現的一種基因。人類CⅡTA基因位于16號染色體(16 p13，13)，全長4543 bp。研究發現，MHCⅡ類分子的表達受到極為嚴格的調控，調控MHC-Ⅱ類分子基因主要發生在轉錄水平，MHC-Ⅱ反式激活蛋白(class II transactivator，CⅡTA)是MHC Ⅱ類分子轉錄的關鍵控制因素，CⅡTA對于MHCⅡ類分子的表達是必要條件，并且是一個主要的限速因素[9]。CⅡTA是一種非DNA結合蛋白，不能直接與MHC-Ⅱ基因結合的啟動子直接結合而發揮作用。CREB、RFX5、RFXANK、NF-YB及NF-YC等轉錄因子相互作用形成了一個稱為MHC增強體的結構，這是MHC-Ⅱ表達所必需的。MHC增強體結構為CⅡTA的招募提供了合適的作用面，CⅡTA分子C端和中部能夠與該增強體結合，然后通過CⅡTA分子的N端的轉錄激活區發揮激活MHC-Ⅱ類基因的作用[10]。

在小鼠造血祖細胞中由于缺少Ⅱ類分子轉錄的關鍵因子CⅡTA，即使用IFN-γ等細胞因子刺激后小鼠造血祖細胞表面也不表達MHCⅡ類分子[11]。無論在小鼠還是在人體中，CⅡTA的表達水平直接影響著MHCⅡ的表達量，而MHCⅡ的表達水平與T淋巴細胞的活化相關。用人類白蛋白治療劑預處理小鼠單核細胞，MHCⅡ、CⅡTA和H-2M基因表達增加，使抗原提呈細胞激活T細胞的能力增強[12]。Nikodemova M等[13]研究發現，二甲胺四環素可通過下調實驗性過敏性腦炎大鼠小膠質細胞CⅡTA轉錄，降低MHCⅡ表達水平，進而使臨床癥狀減輕及病程縮短。本實驗通過免疫組化方法研究發現，海人酸組CⅡTA陽性表達的BV-2細胞與對照組比較顯著增加，而雷公藤內酯組CⅡTA陽性表達的BV-2細胞與海人酸組比較顯著降低，表明雷公藤內酯可能是通過下調CⅡTA表達而降低MHCⅡ類分子表達。

綜上所述，雷公藤內酯可以明顯降低海人酸活化的BV-2小膠質細胞過表達MHCⅡ類分子，其作用機制可能是通過下調CⅡTA而進一步調控MHCⅡ類分子的表達。

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注：對照組(a)，海人酸組(b)，雷公藤內酯組(c)；放大倍數：×200

圖1雷公藤內酯對海人酸活化的BV-2細胞MHC Ⅱ蛋白表達的影響

Triptolide inhibited the expression of MHC Ⅱ through downregulating the expression of CⅡTA in kainic acid-activated BV-2 microglia

JINXian,ZENGChangqian,ZANGLili,etal.

(DepartmenofNeurologyofDalianCentralHospital,Dalian116033,China)

ObjectiveTo observe the effect of triptolide on the expression of MHC Ⅱ in kainic acid-activated BV-2 microglia and investigate the related moleculsr molecular mechanism.MethodBV-2 cells were divided into control group,kainic acid group and triptolide group.Immunohistochemistry techniques were used to detect the effect of triptolide on the expressions of MHCⅡ and CⅡTA of kainic acid-activated BV-2 cells.ResultThe MHCⅡ-positive BV-2 cells in control group was (0.059±0.005).The MHC Ⅱ-positive BV-2 cells in kainic acid group was (0.893±0.038) and there was obvious difference compared with that of control group (P<0.05).The MHCⅡ-positive BV-2 cells in triptolide group was (0.089±0.013) and there was obvious difference compared with the kainic acid group (P<0.05).The CⅡTA-positive BV-2 cells in control group was (0.043±0.003).The CⅡTA-positive BV-2 cells in kainic acid group was (0.692±0.015) and there was obvious difference compared with that of the control group (P<0.05).The CⅡTA-positive BV-2 cells in triptolide group was (0.057±0.009) and there was obvious difference compared with that of the kainic acid group (P<0.05).ConclusionTriptolide could inhibit the expression of MHCⅡ in kainic acid-activated BV-2 cells,the mechanism may be related to downregulating the expression of CⅡTA in kainic acid-activated BV-2 cells.

Triptolide;Epilepsy;Microglia;MHCⅡ;CⅡTA

注：對照組(a)，海人酸組(b)，雷公藤內酯組(c)；放大倍數：×200

1003-2754(2016)08-0729-03

2016-04-12；

2016-08-02

2013年度遼寧省科學技術計劃項目(2013225086)

(1.大連市中心醫院神經內科，遼寧 大連 116033;2.大連大學醫學院，遼寧省生物有機重點實驗室，遼寧 大連 116622；3.大連大學附屬新華醫院，遼寧 大連 116021)

鄒颯楓，E-mail：dlzsf62@163.com

R742.1

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