趙 峰 何 薇 張國平 劉少俊 王 輝 石 碩
(河北醫科大學第一醫院骨科,河北 石家莊 050031)
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透明質酸對骨關節炎細胞模型中細胞蛋白多糖分泌功能的影響
趙峰何薇1張國平劉少俊王輝石碩
(河北醫科大學第一醫院骨科,河北石家莊050031)
目的探討透明質酸(HA)對體外培養的大鼠骨關節炎(OA)細胞增殖率及蛋白多糖分泌功能的影響。方法選取無特定病原體(SPF)級成年雄性SD大鼠1只,機械分離膝關節軟骨,經胰蛋白酶、Ⅱ型膠原酶消化,CO2恒溫培養,取第三代傳代細胞,將其與DMEM培養液混合制成的細胞懸液移入細胞培養板中,分為三組,每組8個孔,接受不同的處理方法。模型組以白細胞介素(IL)-1β建立體外OA細胞模型;HA組造模外加入不同濃度(10、50、100、150 μg/L)的透明質酸(HA);對照組不加IL-1β和HA,均孵育72 h。分別采用四氮甲基唑藍(MTT)法及二甲基亞藍(DMB)比色法檢測各組軟骨細胞的增殖率及蛋白多糖的含量。結果模型組與HA組的細胞增殖率均顯著低于對照組(P<0.05),而模型組與HA組比較無統計學差異(P>0.05);模型組與HA組(10、50 μg/L)的蛋白多糖含量均顯著低于對照組,而HA 100、150 μg/L組的含量高于模型組(P<0.05),而兩組與對照組相比均無統計學差異(P>0.05)。結論外源性HA可促進OA細胞對蛋白多糖的分泌功能,但對細胞增殖率無影響。
骨關節炎;透明質酸;蛋白多糖
骨關節炎(OA)病理基礎是關節軟骨中細胞減少和組織結構破壞〔1,2〕,研究表明,軟骨中蛋白多糖(PG)減少是造成軟骨組織結構破壞的重要原因〔3〕。透明質酸(HA)是一種酸性黏多糖,是關節滑液和軟骨基質中的重要組分,在潤滑關節、調節蛋白質和水電解質的擴散及運轉、調節血管壁通透性、促進創傷愈合、抑制炎癥反應等方面發揮重要作用;同時,HA也是PG組成的重要物質基礎,對保證軟骨組織形態結構的正常不可或缺。雖然美國骨科醫師學會(AAOS)在最新的骨關節炎治療指南中不推薦使用關節腔注射HA治療OA,但近年來有觀察發現,HA對改善OA患者的臨床癥狀作用顯著〔4〕,但其作用機制尚未完全闡明。本研究通過分析HA對PG分泌功能的影響,為探索OA的臨床治療方案及其作用機制提供新的線索。
1.1動物選取無特定病原體(SPF)級成年雄性SD大鼠1只,體質量120 g,由河北醫科大學動物實驗中心提供,合格證編號:DK0709-0165。于動物實驗室自由飲食喂養,室溫(25.0±2.0)℃,自然光照。
1.2方法
1.2.1大鼠軟骨細胞的分離與培養將大鼠麻醉、處死,摘取膝關節軟骨,手術過程注意無菌操作。將軟骨剪成1 mm3左右的小碎塊后,分別以胰蛋白酶和Ⅱ型膠原酶對軟骨碎片消化1 h,得到軟骨細胞懸液。將軟骨細胞接種于DMEM培養液中(含10%胎牛血清),37℃ 5% CO2培養箱中培養,細胞貼壁后約2~3 d換液。待細胞匯集成片后棄去原培養基,以磷酸鹽緩沖液(PBS)(含1%青鏈霉素)漂洗2遍,后加入0.25%的胰蛋白酶(含0.01%EDTA)搖勻置于恒溫培養箱內消化3~5 min,傳代培養,取第三代細胞待用。
1.2.2OA細胞模型的建立與分組以DMEM培養液(含0.5%胎牛血清)將第三代軟骨細胞稀釋成細胞懸液,濃度為4×107/L。吸取100 μl置于96孔板上。分別取8個孔用于空白對照組(對照組)及OA細胞模型組(模型組),另取32孔作為HA干預組(HA組)。其中,模型組及HA組均進行OA細胞模型建立:取1 μl白細胞介素(IL)-1β溶液(美國Sigma公司)加入各孔中(終濃度10 μg/L),混勻,37℃ 5% CO2培養箱中孵育72 h,棄上清。造模成功判定標準為顯微鏡下軟骨細胞呈現胞質回縮,且胞內可見空泡。本次研究中40個孔均造模成功,成功率為100%。
1.2.3處理方法HA組在孵育前于各孔中加入100 μl不同濃度的HA(分子量為2×106U,美國Sigma公司),使HA的終濃度分別為10、50、100、150 μg/L,各濃度HA組均為8個孔;對照組不加IL-1β和HA,模型組不加HA,于培養箱內孵育72 h。
1.3觀察指標
1.3.1四氮甲基唑藍(MTT)法檢測軟骨細胞的增殖率于各孔依次加入20 μl 5 g/L的MTT試劑(美國Sigma公司)及100 μl培養液(不含血清),置于恒溫培養箱中再孵育4 h,棄上清,后加入甲瓚溶液200 μl。以酶標儀測定各溶液光密度值(OD),設置主波長為570 nm,參比波長為690 nm。增殖率=(1-實驗組OD值/對照組OD值)×100%。
1.3.2二甲基亞藍(DMB)比色法檢測軟骨細胞中PG的含量取稀釋的細胞懸液(濃度為1×108/L)接種于24孔板上,每孔加入1 ml DMEM液(含10%胎牛血清)后,恒溫培養24 h。各組實驗方法中除所加IL-1β及HA溶液均為10 μl外,其他處理方法同上。孵育72 h后分離上清。于每孔加入1 ml細胞懸液裂解細胞,反應完全后移入5 ml試管內。加入1 ml 32 mg/L DMB溶液(美國Sigma公司),充分混勻5 min后,以分光光度計比色(波長為525 nm)讀取吸光度值。
由于硫酸軟骨素是軟骨中PG的主要組成成分,且其含量與DMB比色法讀取的吸光度值呈良好的線性關系,因此,本研究以硫酸軟骨素含量的吸光度值做標準曲線,繪制的標準曲線方程為Y=0.028X-0.147,R Sq Linear=99.9%,可作為PG的標準曲線。操作:取濃度為5、10、15、20、25、30 mg/L的硫酸軟骨素標準液各1 ml,均加入DMB顯色劑1 ml,混勻,5 min后讀取各濃度液體于525 nm波長處的吸光度值,即得標準曲線。將所測軟骨細胞溶液的吸光度值代入標準曲線方程計算得PG的含量。
1.4統計學方法應用SPSS14.0軟件,正態分布、方差齊性資料進行單因素方差分析及兩兩比較的SNK-q檢驗。
模型組與HA組的細胞增殖率均顯著低于對照組(P<0.05),而模型組與HA組比較均無差異(P>0.05)。模型組與HA組(10、50 μg/L)的PG含量均顯著低于對照組,而HA組(100、150 μg/L)組均顯著高于模型組(P<0.05),而與對照組相比均無統計學差異(P>0.05)。見表1。

表1 HA對大鼠OA細胞增殖率和PG含量的影響
與對照組比較:1)P<0.05;與模型組比較:2)P<0.05
OA是骨科常見的慢性疾病,以軟骨的變性、破壞和骨質增生為主要特征,好發于中老年人群。目前OA的發病機制尚不明確,而細胞因子〔IL-1、腫瘤壞死因子(TNF)-α等〕是研究OA發病機制的重要因素,有研究認為,IL-1是OA產生的始動因子〔5〕,在促進軟骨細胞凋亡、降解細胞外基質等骨代謝過程中發揮重要作用。本研究顯微鏡下觀察顯示,IL-1β可造成軟骨細胞的形態變化,誘導OA細胞的產生。HA是一種由滑膜B細胞分泌的高分子黏多糖,在關節滑液和軟骨基質的組成中必不可少,對于維持細胞及基質的穩定和平衡、潤滑關節、營養和保護軟骨、抑制炎癥等具有重要作用〔6〕。有研究表明,關節液中HA含量的減低與OA的形成密切相關,可作為反映OA嚴重程度的重要指標〔7〕。此外,有研究發現,對OA患者注射外源性HA可顯著緩解臨床癥狀〔8〕,具有良好的治療效果。其作用機制主要有:①對關節軟骨應力進行覆蓋、潤滑和緩沖作用;②降低關節內炎癥反應;③正反饋促進內源性HA的分泌〔9〕。此外,HA在細胞增殖、合成和分化等方面也具有促進作用〔10〕,而本研究未發現其在退變軟骨細胞中的促增殖作用,這可能與本實驗僅為體外實驗,未形成體內軟骨組織相似的細胞外環境有關。另外,HA是關節內PG的主干成分,PG鏈上的大量糖胺多糖支鏈(GAG)可外伸與陽離子和水分子結合,使關節及組織具有巨大的抗壓力作用。同時,PG也是軟骨基質的主要成分。因此,關節內PG含量的穩定對于維持軟骨組織的結構和功能具有重要的支撐作用〔11〕。本研究結果顯示,高濃度的外源性HA可增加退變軟骨細胞中PG的含量,提示外源性HA可促進OA細胞中PG的合成和分泌。而研究未發現低濃度HA(10、50 μg/L)對PG的促分泌作用,提示低濃度HA對于PG的合成作用不顯著。原因可能是低濃度HA合成的PG含量較低,還不足以對其合成作用形成正反饋。
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〔2015-12-13修回〕
(編輯袁左鳴)
河北省2015年度醫學科學研究重點課題(No.20150640)
趙峰(1978-),男,碩士,副主任醫師,主要從事關節損傷與修復方面的研究。
R68
A
1005-9202(2016)18-4417-03;doi:10.3969/j.issn.1005-9202.2016.18.006
1河北醫科大學第三醫院手外科