朱小麗,孫小鳳,賴銘瑩
?
·實驗論著·
蟲草素對高糖培養的恒河猴脈絡膜-視網膜血管內皮細胞血管新生的影響
朱小麗*,孫小鳳*,賴銘瑩
?METHODS: Cultured RF/6A cells were divided into normal control group, high glucose group and high glucose (HG) + different concentration cordycepin groups (HG+10μg/mL group, HG+50μg/mL group, HG+100μg/mL group). The cell proliferation was assessed using cholecystokinin octapeptide dye after treated for 48h. The cell migration was investigated by a Transwell assay. The tube formation was measured on Matrigel. Furthermore, the impact of cordycepin on high glucose-induced activation of VEGF and VEGF receptor 2 (VEGFR-2) was tested by Western blot analysis.
?RESULTS: Compared with normal control group, cell viability markedly increased in high glucose group (P<0.05). Cordycepin inhibited RF/6A cell proliferation in a dose-dependent fashion: 10.2±0.9%, 23.4±1.5% and 31.1±1.2% inhibition as the concentrations of cordycepin were 10, 50 and 100μg/mL, respectively. The difference had statistically significant (P<0.05) compared with high glucose group. The number of cell migration were 55.6±2.70, 87.4±2.40, 65.4±2.7, 57.8±2.38, 62.4±2.77 in normal control group, high glucose group and HG+10μg/mL group, HG+50μg/mL group, HG+100μg/mL group respectively. Migration of RF/6A conspicuously increased in high glucose group(P<0.05) compared with normal control group; while showing a gradually reducing trend with the increase of cordycepin dose and a statistically significant difference compared with high glucose group(P<0.05). The number of tube formation were 18.7±2.08, 25.7±1.52, 19.9±1.57, 16.3± 2.51, 5.67±1.72 in the abovementioned group. Similarly showing a gradually reducing trend with the increase of cordycepin dose and a statistically significant difference with high glucose group (P<0.05). In addition, the number of tube formation of RF/6A in high glucose group significant increased compared with normal control group (P<0.05). The expression of VEGF and VEGFR-2 dramaticlly increased in high glucose groupvsnormal control group, oppositely gradually decreased with the increase of cordycepin concentrations, and had a statistically significant differencevshigh glucose group (P<0.05).
?CONCLUSION: Cordycepin can suppress the proliferation, migration and tubu formation of RF/6A in high glucose condition, might via inhibiting expression of VEGF and VEGFR-2.
目的:觀察蟲草素對高糖培養的恒河猴脈絡膜-視網膜血管內皮細胞(RF/6A)血管新生作用的影響,探討其可能的作用機制。
方法:培養RF/6A細胞,分為正常對照組(NC組)、高糖對照組(HG組)、高糖加不同濃度的蟲草素組(HG+10μg/mL組、HG+50μg/mL組、HG+100μg/mL組)。采用CCK8法檢測各組細胞的增殖活性;采用Transwell實驗檢測各組細胞的遷移;采用Matrigel檢測各組管腔形成的情況;采用Western-blot檢測各組細胞中VEGF和VEGFR2蛋白表達的情況。
結果:與NC組相比,HG組RF/6A的增殖活性增加(P<0.05)。不同濃度的蟲草素對RF/6A的增殖均有抑制作用,隨著蟲草素濃度增加,細胞活性下降。HG+10μg/mL組、HG+50μg/mL組、HG+100μg/mL組的增殖活性抑制率分別為(10.2±0.9)%、(23.4±1.5)%、(31.1±1.2)%,與HG組比較差異均有統計學意義(P<0.05)。NC組、HG組、HG+10μg/mL組、HG+50μg/mL組、HG+100μg/mL組細胞遷移個數分別為55.6±2.70、87.4±2.40、65.4±2.7、57.8±2.38、62.4±2.77個。與NC組相比,HG組遷移細胞數量增加(P<0.05);不同濃度蟲草素組細胞遷移數量隨著蟲草素濃度的增加而減少,與HG組相比,差異具有統計學意義(P<0.05)。NC組、HG組、HG+10μg/mL組、HG+50μg/mL組、HG+100μg/mL組的細胞管腔形成個數分別為18.7±2.08、25.7±1.52、19.9±1.57、16.3±2.51、5.7±1.72個。與NC組相比,HG組細胞管腔形成個數增加(P<0.05);不同濃度蟲草素組細胞管腔形成個數隨著蟲草素濃度的增加而減少,與HG組相比,差異具有統計學意義(P<0.05)。與NC組相比,HG組VEGF和VEGFR2蛋白表達的量增加(P<0.05);不同濃度蟲草素組中細胞內VEGF和VEGFR2蛋白表達的量均低于高糖對照組(P<0.05)。
結論:蟲草素可能通過抑制高糖下VEGF和VEGFR2蛋白的表達,抑制RF/6A細胞增殖、遷移和管腔形成,進而抑制血管新生。
蟲草素;高糖培養;恒河猴脈絡膜-視網膜血管內皮細胞;血管內皮生長因子;血管新生
引用:朱小麗,孫小鳳,賴銘瑩.蟲草素對高糖培養的恒河猴脈絡膜-視網膜血管內皮細胞血管新生的影響.國際眼科雜志2016;16(7):1237-1241
糖尿病視網膜病變(diabetic retinopathy,DR)是糖尿病最常見和嚴重的微血管并發癥之一。DR發病機制復雜,其中以血管內皮生長因子(vascular endothelial growth factors,VEGF)為主的促血管生長因子在眼部的過度表達是導致DR發生、發展的重要因素[1]。在DR病理過程中,高糖可導致視網膜血管內皮細胞過度分泌VEGF,引起血管內皮細胞損傷,血管滲透性增加,毛細血管閉塞,促進視網膜組織的缺血缺氧,最終引起新生血管的形成[2-3]。過度分泌的VEGF與其受體(主要是VEGFR2受體)結合磷酸化后,激活下游信號通路,誘導內皮細胞的增殖、遷移和管腔形成,導致新生血管形成增加[4]。蟲草素是冬蟲夏草中提取的單體,是蟲草制劑作用的核心成分,最早用于腫瘤的治療,近年來它的抗新生血管活性也逐漸受到關注。吉川紀子[5]于2005年通過體內實驗發現,蟲草素具有劑量依賴性抑制血管新生作用。蔡偉等[6]研究結果證明,蟲草素能抑制結腸癌細胞質中VEGF的表達。但蟲草素對VEGF和VEGFR2在血管內皮細胞上表達的影響還沒有報道。本研究擬將體外培養的RF/6A置于高糖環境下,觀察蟲草素對其增殖活性、遷移、管腔形成及VEGF和VEGFR2蛋白表達的影響,為蟲草素應用于DR提供實驗研究的支持。
1.1材料RF/6A細胞(中科院上海細胞庫);蟲草素(美國Sigma公司);DMEM培養基(美國Hyclone公司);胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)、0.25%胰蛋白酶-ETDA消化液(美國Gibco);青霉素、鏈霉素(Cyagen公司);CCK8試劑盒(日本同仁公司);Transwell小室(美國Corning公司);蘇木精染色液(上海碧云天生物科技公司);Matrigel(美國BD公司);兔抗人VEGF多克隆抗體(美國NovusBiologicals公司);KDR多克隆抗體(德國Giobal Biotech公司);山羊抗兔IgG HRP(美國Abcam公司);細胞恒溫CO2細胞培養箱(美國Thermo公司);酶標儀(美國BioTek公司);熒光倒置顯微鏡(德國Leica公司);凝膠成像系統(美國Bio-Rad公司);電泳儀(美國Bio-Rad公司)。
1.2方法
1.2.1 RF/6A細胞的培養采用含10% FBS和1%青鏈霉素雙抗的25mmol/L高糖DMEM培養液和5.5mmol/L正常DMEM培養液分別作為生長培養基。將RF/6A細胞接種到75cm2培養瓶內,制成密度為5×105/瓶的細胞懸液,置于恒溫37℃、體積分數5% CO2培養箱內培養,待細胞鋪滿瓶底后,用0.25%胰蛋白酶-ETDA消化,按1∶2或1∶3分瓶傳代,取生長良好的第3~4代細胞,用于下一步實驗。
1.2.2細胞分組將細胞分為5組,分別為NC組:5.5mmol/L葡萄糖的DMEM培養下的正常對照組;HG組:25mmol/L高糖DMEM培養下的高糖對照組;HG+10μg/mL組:在高糖組中加入10μg/mL蟲草素;HG+50μg/mL組:在高糖組中加入50μg/mL蟲草素;HG+100μg/mL組:在高糖組中加入100μg/mL蟲草素。
1.2.3 CCK8檢測RF/6A細胞增殖活性取對數生長期RF/6A細胞用于實驗。按分組分別加入正常和高糖的DMEM培養液,制成細胞濃度為5×104個/mL的細胞懸液,每孔100μL,接種于96孔板上,每組6個復孔,共5組,邊緣孔均用無菌PBS填充,置于37℃、5% CO2培養箱內孵育。24h后將其中三組的高糖培養基吸干,分別加入含不同濃度蟲草素(10、50、100μg/mL)的高糖DMEM 100μL,各組培養48h后,吸去孔中的培養基,每天同一時間向每孔內加入含10%的CCK8(cell counting kit-8,CCK8)溶液的DMEM培養液100μL后放入恒溫37℃、5% CO2培養箱繼續培養2h,按操作說明用自動酶標儀測450nm波長下吸光度A值。相同條件下重復實驗3次。細胞活性抑制率(%)=[(實驗組平均A值-對照組平均A值)/對照組平均A值]×100%。
1.2.4 Transwell小室檢測RF/6A細胞移行Transwell小室置于含10% FBS的DMEM培養液600μL的24孔板中,正常組為5.5mmol/L葡糖糖的DMEM培養液,高糖組和蟲草素組為25mmol/L葡糖糖的DMEM培養液,接種RF/6A細胞于上室,密度為6×103/孔。每孔上室按不同分組加入含相應濃度蟲草素的無血清培養基100μL。37℃、5%CO2培養箱培養24h后,取出小室,棄去培養液,用棉簽輕輕擦掉小室上層未遷出的細胞,4%多聚甲醛固定小室20min,將小室適當風干后,0.1%結晶紫染色20min,PBS洗3次。細胞在400倍顯微鏡下隨機取5個視野照相,所得細胞數的平均值用以統計分析。每組3個復孔,重復實驗3次。
1.2.5 Matrigel檢測內皮細胞管腔形成在4℃下提前融化Matrigel。取96孔板,每孔內緩慢加入100μL液態Matrigel(所有操作均在冰上進行)。消化RF/6A細胞,用正常和高糖DMEM培養基分別稀釋為2×105個/mL細胞懸液。每孔加入50μL,設3個復孔,按不同分組每孔加入相應濃度的蟲草素。孵育12h后在顯微鏡下觀察,隨機取5個不同視野照相,對形成的完整管腔計數,取平均值。每組設3個復孔,重復實驗3次。
1.2.6 Western-Blot法檢測各組RF/6A細胞中VEGF和VEGFR2蛋白的表達六孔板正常和高糖DMEM培養液培養RF/6A細胞,蟲草素組每孔中加入不同濃度的蟲草素(10、50、100μg/mL),高糖組和正常組不加蟲草素,藥物作用48h后,收集細胞。冰上超聲波粉碎儀粉碎細胞,12000r/min,4℃離心30min,收集、測定并調節上清蛋白濃度后,SDS-PAGE電泳(150V電壓)后轉移至PVDF膜,5% BSA室溫下封閉2h,VEGF及VEGFR2一抗(分別為1∶1000,1∶500)4℃下孵育過夜,TBST清洗3次,再以相應的辣根過氧化物酶標記的二抗(均為1∶5000)37℃搖床孵育1h,TBST清洗3次。ECL顯影液顯色,用Bio-Rad凝膠成像系統成像后,圖片用Image J軟件分析條帶的信號強弱,以GAPDH為內參照,計算蛋白的相對表達量。

2.1蟲草素對RF/6A細胞增殖活性的影響CCK8結果顯示,與NC組比較,HG組RF/6A細胞增殖活性明顯提高,差異具有統計學意義(P<0.05)。蟲草素對RF/6A增殖有抑制作用,與HG組相比,HG+10μg/mL組、HG+50μg/mL組、HG+100μg/mL組細胞活性抑制率分別為(10.2±0.9)%、(23.4±1.5)%、(31.1±1.2)%。隨著蟲草素濃度的增加,細胞活性下降,與HG組比較差異均有統計學意義(P<0.05)。各組間比較差異具有統計學意義(F組間=90.283,P<0.05,圖1)。
2.2蟲草素對RF/6A細胞遷移的影響Transwell實驗結果顯示,NC組、HG組、HG+10μg/mL組、HG+50μg/mL組、HG+100μg/mL組細胞遷移個數分別為55.6±2.70、87.4±2.40、65.4 ±2.7、57.8±2.38、62.4±2.77個,各組間比較差異具有統計學意義(F=185.651,P<0.05)。與NC組相比,HG組細胞遷移個數明顯增加(P<0.05),與HG組相比,不同濃度蟲草素對RF/6A細胞的遷移均有抑制作用,且隨著蟲草素濃度的增加,移行細胞個數逐漸減少,差異有統計學意義(P<0.05,圖2)。
2.3蟲草素對RF/6A細胞管腔形成的影響Matrigel實驗結果顯示,NC組、HG組、HG+10μg/mL組、HG+50μg/mL組、HG+100μg/mL組細胞的管腔形成個數分別為18.7±2.08、25.7±1.52、19.9±1.57、16.3±2.51、5.7±1.72個,各組間比較差異具有統計學意義(F=58.207,P<0.01)。與NC相比,HG組細胞管腔形成個數明顯增加(P<0.05)。與HG組相比,不同濃度蟲草素對RF/6A細胞的管腔形成均有抑制作用,且隨著蟲草素濃度的增加,管腔形成個數逐漸減少,差異有統計學意義(P<0.05,圖3)。

圖1蟲草素對高糖下RF/6A細胞活性的抑制作用aP<0.05vsNC組;cP<0.05vsHG組。
2.4各組RF/6A細胞中VEGF和VEGFR2蛋白的表達Western-Blot實驗結果顯示,與NC組相比,HG組VEGF和VEGFR2蛋白表達相對增多(P<0.05)。與HG組相比,不同濃度蟲草素對RF/6A細胞VEGF和VEGFR2蛋白表達均有抑制作用(P<0.05),隨著蟲草素濃度的提高,VEGF和VEGFR2蛋白表達的量下降。各組間比較差異具有統計學意義(F=217.074,P<0.01,圖4)。
DR是糖尿病最常見的眼部微血管并發癥,它已成為大多數發達國家工作年齡人群致盲的首要原因。高血糖被認為是DR的危險因素,且高血糖的嚴重程度和持續時間與DR患病率和嚴重程度直接相關[7]。長期慢性高血糖,機體血管滲透性紊亂,視網膜組織缺血缺氧,從而促進大量VEGF產生。VEGF被認為是眼內促新生血管生長因子中的最關鍵因子,在DR的發生發展中扮演非常重要的角色,參與了DR形成的各個環節[8]。血管的新生包括血管內皮基質降解、內皮細胞移行、內皮細胞增殖、內皮細胞管道化分支形成血管環和形成新的基底膜等步驟。抑制VEGF的產生及其受體的過度表達可以延緩DR病變的發生發展[9],因此可以抑制VEGF表達的藥物有望成為糖尿病視網膜病變的有效治療藥物。
蟲草素是我國傳統中草藥中的滋補珍品,是從蛹蟲草中提取的一種核苷類抗生素,具有抗腫瘤、抗新生血管、抗白血病、抗菌、免疫調節、清除體內自由基、降血糖、降血脂等多種生物活性和藥理作用[10]。目前多用于抗腫瘤和腎病的治療,據報道蟲草素對糖尿病腎病的治療取得良好的療效,可通過下調TGF-β的表達抑制高糖誘導的大鼠腎小管上皮細胞轉分化的發生[11-12]。Yoo等[13]就冬蟲夏草水提取物(cordyceps militaris extract,CME)的抗新生血管及抗腫瘤作用做了有益的探討,結果發現不管在體內還是體外,蟲草素均能通過下調基質金屬蛋白酶MMP-2的表達,發揮抗新生血管和抗腫瘤的作用,而MMP-2對VEGF、VEGFR2蛋白的表達具有抑制作用。Won等[10]研究也證明了蟲草素具有抗炎及抗新生血管的活性。

圖2蟲草素對高糖下RF/6A細胞遷移的抑制作用(×400)A:NC組;B:HG組;C:HG+10μg/mL組;D:HG+50μg/mL組;E:HG+100μg/mL組;F:蟲草素對RF/6A細胞遷移抑制作用的條形圖(aP<0.05vsNC組;cP<0.05vsHG組)。

圖3蟲草素對高糖下RF/6A細胞管腔形成的抑制作用(×200)A:NC組;B:HG組;C:HG+10μg/mL組;D:HG+50μg/mL組;E:HG+100μg/mL組;F:蟲草素對RF/6A細胞遷移抑制作用的條形圖(aP<0.05vsNC組;cP<0.05vsHG組)。
本實驗依據相關的文獻[11,14-15]及預實驗的結果,選定了10、50、100μg/mL共3個質量濃度進行實驗,以證明蟲草素對體外高糖條件下RF/6A細胞血管新生的作用,并探討其可能的作用機制。結果發現,高糖條件下,不同濃度的蟲草素對RF/6A增殖、遷移、管腔形成均有抑制作用。而新生血管的生成包括細胞增殖、細胞遷移和管腔形成等過程,因此蟲草素在體外高糖環境下能夠抑制血管的新生。VEGF有兩種主要受體(VEGFR1和VEGFR2),其中VEGFR2存在于血管和淋巴管內皮等處。在生理和病理血管新生中,VEGFR2均是主要的信號轉導蛋白,通過自身磷酸化觸發下游一系列信號通路,促進血管的發生。為進一步探討蟲草素抑制高糖下RF/6A 細胞血管新生的作用機制,本實驗采用Western-Blot的方法檢測VEGF和VEGFR2蛋白的表達。與正常組比較,高糖組中的VEGF和VEGFR2蛋白表達明顯增多,高糖促進了VEGF和VEGFR2蛋白的表達。不同濃度梯度的蟲草素均能下調高糖培養的血管內皮細胞VEGF和VEGFR2的表達,且隨著作用濃度的增加,蟲草素抑制血管內皮細胞VEGF和VEGFR2蛋白表達的作用增強。提示蟲草素可能通過改變VEGF和VEGFR2的表達,從而影響血管新生。因此蟲草素抑制細胞VEGF和VEGFR2表達可能是其抑制血管新生作用的一個重要機制。

圖4各組RF/6A細胞中VEGF和VEGFR2蛋白的表達A:各組RF/6A細胞中VEGF和VEGFR2蛋白電泳條帶;B:VEGF表達條形圖;C:VEGFR2表達條形圖(aP<0.05vsNC組;cP<0.05vsHG組)。
本實驗首次將蟲草素運用于眼科研究,從體外實驗著手初步探討了蟲草素對體外高糖培養的RF/6A細胞增殖、遷移、管腔形成和VEGF、VEGFR2蛋白表達的影響,為蟲草素用于體內實驗提供了一定參考,為臨床治療DR提供了新的思路。但蟲草素如何下調VEGF和VEGFR2蛋白表達的機制需要進一步研究證實。
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Anti-angiogenic mechanism of cordycepin on rhesus macaque choroid-retinal endothelial cell line cultured in high glucose condition
Xiao-Li Zhu*, Xiao-Feng Sun*, Ming-Ying Lai
s:Shenzhen Knowledge Innovation Program of Basic Research (No.JCYJ20130402145545766); Shenzhen Science and Technology Plan Project (No.201202144)
Ming-Ying Lai. Shenzhen Eye Hospital Affiliated to Jinan University, Shenzhen Key Laboratory of Ophthalmology, Shenzhen 518000, Guangdong Province, China. laimydoc@163.com
2016-01-27Accepted:2016-06-14
?AIM: To investigate the angiogenesis effect and protective mechanism of cordycepin on rhesus macaque choroid-retinal endothelial (RF/6A) cell line cultured in high glucose condition.
Cordycepin; high glucose condition; rhesus macaque choroid-retinal endothelial (RF/6A) cell line; vascular endothelial growth factor; neovascularization
深圳市知識創新計劃基礎研究項目(No.JCYJ20130402145545766);深圳市科技計劃項目(No.201202144)
(518000)中國廣東省深圳市,深圳市眼科醫院 暨南大學附屬深圳市眼科醫院 深圳眼科學重點實驗室
朱小麗,女,副主任護師,護士長,研究方向:眼科護理;孫小鳳,女,畢業于暨南大學,碩士,主治醫師,研究方向:眼底病。
賴銘瑩,畢業于中山大學眼科中心,博士,主任醫師,碩士研究生導師,研究方向:青光眼、眼底病.laimydoc@163.com
2016-01-27
2016-06-14
Zhu XL, Sun XF, Lai MY.Anti-angiogenic mechanism of cordycepin on rhesus macaque choroid-retinal endothelial cell line cultured in high glucose condition.GuojiYankeZazhi(IntEyeSci) 2016;16(7):1237-1241
10.3980/j.issn.1672-5123.2016.7.08
注:*朱小麗和孫小鳳對本文貢獻一致。
Shenzhen Eye Hospital Affiliated to Jinan University, Shenzhen Key Laboratory of Ophthalmology, Shenzhen 518000, Guangdong Province, China
Co-first authors:*:Xiao-Li Zhu and Xiao-Feng Sun.