基本培養基及激素對野生一粒小麥幼胚培養的影響

李 揚，徐 鳳，柴乖強，李春蓮，王中華

(旱區作物逆境生物學國家重點實驗室/農業部西北地區小麥生物學與遺傳育種重點實驗室/西北農林科技大學農學院，陜西楊凌 712100)

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基本培養基及激素對野生一粒小麥幼胚培養的影響

李 揚，徐 鳳，柴乖強，李春蓮，王中華

(旱區作物逆境生物學國家重點實驗室/農業部西北地區小麥生物學與遺傳育種重點實驗室/西北農林科技大學農學院，陜西楊凌 712100)

為建立適于野生一粒小麥遺傳轉化的高效組培再生體系，以野生型一粒小麥幼胚為外植體，研究了MS、MSE3和N6三種基本培養基和激素對愈傷組織誘導、分化和成苗的影響。結果表明，愈傷誘導培養基以MES3為基本培養基并添加2.0 mg·L-12, 4-D效果最佳，愈傷組織出愈率最高可達90.5%，胚性愈傷率為80.0%。愈傷組織分化過程在添加0.25 mg·L-1IAA的MS培養基中加入0.5 mg·L-16-BA分化效果最佳，分化率能達到50.7%，成苗率為26.5%。

野生一粒小麥；幼胚；愈傷組織；再生

隨著測序技術的快速發展，普通小麥的基因組測序工作進展很快，其A、D基因組的二倍體供體種以及普通小麥中國春的基因組測序工作已完成[1-3]。由此，小麥的研究工作即將進入基因功能研究快速發展的新時期。但由于普通小麥是由3個二倍體供體材料經過兩次天然雜交形成的異源六倍體，基因組大小為17 Gb，十分龐大，并且普通小麥的基因通常以多拷貝的形式存在，功能上有很大的冗余，這為研究小麥重要基因的功能造成巨大困難。野生一粒小麥(Triticumboeoticum, AA)是普通小麥A基因組的二倍體供體種，其基因組以及功能基因的冗余度比普通小麥小，可以作為研究小麥基因功能的一個較為理想的受體。同時，A基因組中含有包括抗病基因在內的大量重要的具有經濟價值的基因。以抗白粉病基因為例，在已確定的50個小麥抗白粉病基因位點中11個都被定位在A染色體上[4]。所以建立野生一粒小麥的高效遺傳轉化體系可以為小麥功能基因的研究提供技術上的保證。

但二倍體小麥相比于四倍體和六倍體小麥來說，組培過程中愈傷組織形成和分化能力較差。目前對野生一粒小麥再生體系領域的研究仍較少，且再生率極低。陸維忠等[5]利用一粒小麥幼胚進行試驗發現，一粒小麥幼胚出愈率僅為30%～40%，且并未得到再生植株。畢瑞明等[6]以野生一粒小麥成熟胚作為外植體，發現成熟胚誘導率為68.8%，再生效率僅為0.6%，不能適應批量化基因轉化的要求。因此，亟須建立高效的野生一粒小麥組培再生體系和遺傳轉化體系。

目前，小麥組培體系的研究已比較成熟。小麥的再生效率主要取決于基因型、外植體類型和培養基成分等。在小麥研究中常用的外植體有幼胚、幼穗、花藥和成熟胚，其中小麥幼胚出愈率和再生率高，被普遍認為是最佳的小麥組織培養外植體[7-8]?；谛←溣着哐芯窟M展，本研究以野生一粒小麥幼胚為外植體，使用不同基本培養基和不同濃度2, 4-D、6-BA進行誘導和分化，以期尋找適合野生一粒小麥幼胚的組織培養條件，提高一粒小麥再生效率，為研究小麥基因功能奠定基礎。

1　材料與方法

1.1材 料

二倍體野生型一粒小麥YL1(Triticumboeoticum, AA)由西北農林科技大學小麥遺傳育種新技術創新團隊提供。2014年秋播種于西北農林科技大學試驗田，2015年春取幼穗進行試驗。

1.2培養基

本研究中所用培養基見表1，其中，MSE3培養基為：MS大量+MS微量+MS有機+鹽酸硫胺素(0.04 mg·L-1)+L-天冬酰胺(150 mg·L-1)。所有培養基pH值均調節為5.8，然后120 ℃高溫滅菌20 min。

表1　誘導、分化培養基成分Table 1　Media of callus induction and differentiation

1.3組織培養

1.3.1種子消毒

取揚花后10～12 d的野生一粒小麥幼穗，插入水中置于4 ℃冰箱低溫處理1～2 d后用鑷子撥出籽粒。用75%(v/v)酒精表面消毒1 min，無菌水沖洗2～3次，15%(v/v)次氯酸鈉消毒20 min，無菌水沖洗3～5次。

1.3.2接種及愈傷組織誘導

用鑷子挑取野生一粒小麥種子的幼胚，盾片朝上接種在愈傷組織誘導培養基上。每皿接種約100個幼胚，每個處理3次重復。25 ℃黑暗條件下培養，每14天繼代1次。誘導培養7 d后統計誘導出的愈傷組織數，愈傷誘導30 d左右統計胚性愈傷組織數。

1.3.3愈傷組織分化

待愈傷誘導30 d左右并統計胚性愈傷組織數后，挑取胚性愈傷組織接種到分化培養基上，將培養皿密封后置于人工氣候培養箱，25 ℃光培養，每14天繼代1次。分化培養30 d后統計長出綠點的愈傷組織數，分化40 d統計成苗數。

1.3.4再生植株生根及移栽

待綠苗長至3～5 cm時移至生根培養基。待植株生根且再生植株長至6～8 cm時移栽，煉苗1周，生長至成熟。

1.4數據統計與分析

實驗數據用DPS軟件進行處理，方差分析用LSD法檢驗。出愈率、胚性愈傷率、分化率和成苗率分別用以下公式進行計算。

愈傷組織誘導率=形成愈傷組織的幼胚數/接種幼胚數×100%；胚性愈傷組織誘導率=形成胚性愈傷組織的幼胚數/接種幼胚數×100%；分化率=分化出綠點的愈傷組織塊數/接種在分化培養基上的愈傷組織塊數×100%；成苗率=分化出綠苗的愈傷組織塊數/接種在分化培養基上的愈傷組織塊數×100%。

2　結果與分析

2.1基本培養基對野生一粒小麥幼胚愈傷組織誘導的影響

挑取一粒小麥幼胚分別接種到MSE3、N6和MS(每種誘導培養基中分別添加2.5 mg·L-1的2,4-D)三種不同愈傷誘導培養基上培養，結果(表2)表明，一粒小麥幼胚在3種基本培養基上的出愈率均達到85%以上，胚性愈傷率均達到68%以上，但不同培養基的誘導率存在顯著差異(P<0.05)。MSE3基本培養基的誘導率和胚性愈傷率均最高，N6次之，MS最差。MSE3培養基愈傷誘導率與MS培養基之間存在極顯著差異(P<0.01)，胚性愈傷率與MS培養基之間存在顯著差異(P<0.05)。

從愈傷質量來看，MSE3培養基上絕大多數愈傷組織呈淡黃色致密顆粒狀，而N6和MS培養基上的愈傷組織則為乳白色、水質狀。從總體上來看，MSE3更適合一粒小麥幼胚愈傷組織的誘導，誘導率可達93.3%，胚性愈傷率為83.0%，且誘導出的愈傷組織質量較好。

2.2不同濃度2, 4-D對野生一粒小麥幼胚愈傷組織誘導的影響

在MSE3基本培養基中分別添加0、1.0、2.0和3.0 mg·L-1的2,4-D，研究2,4-D濃度對一粒小麥幼胚愈傷組織誘導率及胚性愈傷率的影響，結果(表3)表明，在MSE3培養基中不同濃度的2, 4-D對一粒小麥幼胚愈傷誘導和胚性愈傷組織的形成存在著明顯的影響。

在不添加2, 4-D的對照處理中，接種幼胚直接形成實生芽，導致愈傷組織較小，幾乎無法形成胚性愈傷。而隨著2, 4-D濃度的升高，幼胚的出愈率和胚性愈傷率都有顯著提高。當2, 4-D濃度達到2.0 mg·L-1時，出愈率和胚性愈傷率都達到最大值，分別為90.5%和80.0%，且與對照存在極顯著差異(P<0.01)。當2, 4-D濃度繼續升高，出愈率和胚性愈傷率極顯著地下降。

表2　基本培養基對野生一粒小麥幼胚愈傷組織誘導的影響Table 2　Effects of basal medium on callus induction of immature embryo in Triticum boeoticum

同列數字后的不同小寫字母表示差異在0.05水平上顯著；同列數字后的不同大寫字母表示差異在0.01水平上顯著。下同

Values labeled with different lower-case letters in the same column are significantly different among the treatments at 0.05 level and values labeled with different capital letters are significantly different among the treatments at 0.01 level.The same as below

表3　不同濃度2, 4-D對野生一粒小麥幼胚愈傷組織誘導的影響Table 3　Effects of 2, 4-D concentration on immature embryo callus induction in Triticum boeoticum

2.3不同濃度6-BA對野生一粒小麥幼胚愈傷組織分化的影響

在MS+IAA(0.25 mg·L-1) 的愈傷組織分化培養基中分別添加不同濃度的6-BA，研究6-BA濃度對一粒小麥幼胚愈傷組織分化的影響。結果(表4)表明，6-BA的濃度對一粒小麥愈傷組織的分化具有重要影響。最適宜野生一粒小麥幼胚分化的6-BA濃度為0.5 mg·L-1，此時分化率和成苗率均最高，且與其他處理差異極顯著(P<0.01)。在添加不同濃度6-BA的分化培養基中，分化率范圍為22.4%～50.7%，最高分化率比最低高28.3%，成苗率范圍為7.2%～26.5%，成苗率最高比最低高19.3%。觀察發現(圖1)，當6-BA濃度為0和0.5 mg·L-1時愈傷組織呈淡黃色、較致密，而當6-BA濃度繼續升高，愈傷組織褐化嚴重，分化率顯著下降。因此，適宜一粒小麥分化的6-BA濃度為0.5 mg·L-1，分化率最高可達50.7%，成苗率為26.5%。

表4　不同濃度6-BA對野生一粒小麥幼胚愈傷分化的影響Table 4　Effects of 6-BA concentration on immature embryo callus differentiation in Triticum boeoticum

A～D分別代表0、0.5、1.0和1.5 mg·L-14個6-BA濃度

A-D indicated the four 6-BA concentrations of 0, 0.5, 1.0 and 1.5 mg·L-1,respectively

圖1不同濃度6-BA誘導野生一粒小麥的分化情況

Fig.1Differentiation of immature embryo callus in different 6-BA concentrations

3　討 論

已有的研究大多以MS培養基為誘導小麥愈傷組織最常用的基本培養基。伍 玲等[9]利用四川小麥背景的小麥幼胚進行研究，發現MSE3培養基的愈傷組織誘導率比MS培養基平均高18.2%，顯著提高了誘導效率。本研究顯示在所用的3種基本培養基中，MSE3效果最佳，MSE3培養基上愈傷組織誘導率和胚性愈傷率都顯著高于MS和N6兩種培養基，說明MSE3培養基同樣適宜于野生一粒小麥幼胚愈傷誘導。

2, 4-D是麥類作物組織培養中最常用的外源激素，它相比于其他生長素更適合小麥愈傷組織的誘導[10]，且在MS培養基上添加2.0～3.0 mg·L-1的2, 4-D誘導小麥幼胚產生愈傷組織均取得良好效果[11]。本研究以MSE3為基本培養基，在2, 4-D設置的4個濃度梯度中，誘導率和胚性愈傷率隨2, 4-D濃度的增加呈單峰曲線變化，當濃度為2.0 mg·L-1時效果最好，與Wu等[12]和陳學虎等[13]在小麥中的研究結果一致。說明一粒小麥最佳的2, 4-D使用量與小麥相同。在2, 4-D濃度為0 時誘導效果最差，實驗證明生長素是一粒小麥愈傷誘導過程必需的激素，但過高濃度的2, 4-D也不利于愈傷組織的形成。

本研究在低濃度的生長素環境中添加不同濃度的細胞分裂素6-BA，研究了適合野生一粒小麥幼胚分化的6-BA濃度，結果發現，0.5 mg·L-16-BA最適宜野生一粒小麥分化，當濃度繼續增加，愈傷組織褐化嚴重，該結果與趙占軍等[14]研究結論一致。曾有人以薄皮核桃、辣椒和沙棘等為材料，發現低濃度的6-BA適宜愈傷組織的分化，隨著培養基中6-BA濃度的升高，褐化率顯著升高，分化率下降[15-18]，與本研究結果相同。在組培過程中植物組織褐變會造成分化率下降、組培材料死亡等結果，嚴重影響了組織培養效率。張衛芳等[15]認為在分化培養基中添加生長素2, 4-D及IAA可以減弱高濃度細胞分裂素的傷害。在未來試驗中可深入研究，考慮二者復配對愈傷分化的影響，從而選擇最佳的生長素與細胞分裂素的濃度配比，進一步提高一粒小麥的分化效率。

本研究對野生一粒小麥再生體系的研究較前人有了顯著提升，出愈率、胚性愈傷率、分化率和成苗率都顯著提高，分別可達到90.5%、80.0%、50.7%和26.5%，證明了野生一粒小麥具有極高的再生潛力，經過不斷深入的研究，一粒小麥可以作為研究小麥功能基因的重要受體材料，為今后的研究奠定基礎。

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The Effects of Basal Medium and Hormone on Immature Embryo Culture inTriticumboeoticum

LI Yang, XU Feng, CHAI Guaiqiang, LI Chunlian, WANG Zhonghua

(State Key Laboratory of Crop Stress Biology for Arid Areas/Key Laboratory of Wheat Biology and Gennetics-breeding in Northwest Area, Ministry of Agriculture/College of Agronomy,Northwest A&F University, Yangling, Shaanxi 712100, China)

In order to optimize regeneration system of immature embryo culture inTriticumboeoticum, the effects of the basal medium and hormone on callus induction, differentiation, and regeneration of immature embryo were studied. The results showed that the callus induction rates were obviously different in various basic media and 2, 4-D concentration. MSE3 with 2.0 mg·L-12, 4-D was suitable for producing immature embryos callus, in which the induction rate can reach to 90.5% and the frequency of embryonic callus induction was 80.0%. The differentiation and seedling rates shown as 50.7% and 26.5%, respectively, were significantly higher under 0.5 mg·L-16-BA than the other three treatments.

Triticumboeoticum; Immature embryo; Callus; Regeneration

時間：2016-05-10

2016-01-06

2016-03-02

國家自然科學基金項目(31271794)

E-mail：liyang910806@163.com

王中華(E-mail：zhonghuawang@nwsuaf.edu.cn)

S512.1；S330

A

1009-1041(2016)05-0583-06

網絡出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1359.S.20160510.1623.014.html