溫濕度與光照對葡萄霜霉病菌孢子囊萌發及存活的影響

李卓，金恭璽，郎寧，孫琦，任毓忠，趙寶龍，張莉，李國英

(石河子大學綠洲農作物病害防治重點實驗室，新疆石河子 832000)

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溫濕度與光照對葡萄霜霉病菌孢子囊萌發及存活的影響

李卓，金恭璽，郎寧，孫琦，任毓忠，趙寶龍，張莉，李國英

(石河子大學綠洲農作物病害防治重點實驗室，新疆石河子 832000)

【目的】研究溫濕度、光照對葡萄霜霉病菌孢子囊萌發及存活的影響，為葡萄霜霉病的預報與防治提供理論依據。【方法】通過人工控制溫濕度、光照等三因子交叉試驗設計和人工接種葉盤的方法，明確孢子囊萌發的條件及存活的氣象因子。【結果】孢子囊只有在水中才能夠萌發并釋放游動孢子，最適萌發溫度是18～22℃。孢子囊的存活與溫度，濕度，光照有較密切的關系，在35℃，70%和100%濕度條件下，孢子囊只能存活3 d。而在10～20℃各個濕度條件下，無論完全光照、完全黑暗或光暗交替孢子囊都可存活6 d以上。用干癟的孢子囊接菌葉盤，仍然發病，說明不能用干癟孢子囊作為孢子囊死亡的標志。孢子囊經0.58×102μW/cm2的紫外光照射5 h、直射光照射8 h就死亡，但散射光照射10 h孢子囊仍然存活。【結論】孢子囊只有在水中才能萌發，水是孢子囊萌發的決定性因素；萌發的最適溫度為18～22℃；孢子囊對紫外光比較敏感，在光照強度為65 000～107 100 lx的直射光下8 h孢子囊就死亡。

葡萄霜霉病；溫濕度與光照；孢子囊；萌發；存活

0 引 言

【研究意義】葡萄霜霉病是一種流行性很強的多循環病害，主要依靠氣流和雨水傳播，在葡萄生長季節該病菌主要以孢子囊的形式進行多次再侵染，一旦氣候條件適合，可產生大量的孢子囊，很易暴發成災[1]。【前人研究進展】葡萄霜霉病的發生對氣候條件的要求比較嚴格，其中主要是孢子囊的萌發和侵染要求的條件比較嚴格。對此國內外學者都曾進行過不少研究,但其結論并非完全一致。Thind和Galet等[2,3]認為，孢子囊萌發釋放游動孢子的溫度為3～30℃，最適溫度為22～25℃。李懷方等[4]認為，孢子囊萌發的溫度范圍為12～30℃，最適溫度18～24℃；董金皋[5]認為孢子囊萌發的溫度范圍為5～21℃，最適溫度10～15℃；他們都認為孢子囊萌發需要在水滴中進行；而孢子囊存活時間較短，在高溫干燥環境中，存活4～6 d，低溫環境中可存活14～16 d。邱強等[6]報道，濕度不夠或過高，孢子囊萌發長出芽管，孢子囊的存活力隨溫度升高、濕度降低而降低，在30℃時僅能存活6 h，對低濕度敏感。Kennelly等[7]認為園內溫度超過42.8℃，霜霉菌孢子囊就會死亡，大多數新生的孢子囊通常在白天會被殺死，然而在黑暗環境中，12～24 h后50%以上的孢子囊仍然可以產生并釋放游動孢子。【本研究切入點】不同地區的報道存在較大差異。研究針對以往多從單因子入手研究氣候因子對孢子囊萌發的影響，改為三因子交叉試驗設計進行研究；對孢子囊死亡的鑒別除觀察其形態變化外，還采用人工接種的方法觀察其致病性的有無；只有其形態改變，并喪失致病性，才認為已經死亡。【擬解決的關鍵問題】研究孢子囊萌發及存活的最適溫濕度和光照條件，為葡萄霜霉病的測報與防治提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 材 料

1.1.1 同齡孢子囊的獲取

實驗前1 d的20：00～21：00在石河子大學試驗站葡萄園感病品種無核紫上采集典型新鮮的霜霉病葉，用流水沖洗10 min，直至霉層完全沖凈，室溫下放置10 min，使葉片表面無明顯水分，然后在保濕缸中20 ℃黑暗條件下保濕培養12 h，待病部生長出新的孢子囊，即視為同齡孢子囊。

1.1.2 供試品種及葉盤的制備

供試品種為感病品種紅地球，每次實驗前從健株紅地球新梢上選取倒數第3～6片展開的健康新葉，用直徑2 cm滅菌打孔器打孔，制成2 cm直徑的葉盤，放到保濕的塑料袋中供接種用。

1.1.3 主要儀器

培養箱：上海一恒科學儀器有限公司生產的MGC-250型智能型光照培養箱，HOBO記錄儀：Oneset Computer Corporation生產的U12-012 Temp/RH/Light /External Data Logger，透明塑料盒10×10×5 cm3，凹玻片，照度計：優利德數字式照度計UT381/382 照度儀，紫外輻照儀：上海嘉定學聯實業有限公司學聯儀表廠生產的ZDZ-1型自動換擋外輻射照度計，紫外燈：上海惠光照明生產的紫寶牌ZWS、8W紫外殺菌燈管、1%水瓊脂平板。

1.2 方 法

1.2.1 氣候因子對霜霉病菌孢子囊萌發的影響

光照采用3種處理：完全光照(光照強度為14 000 Lx)、完全黑暗和光暗交替(以12 h光照，12 h黑暗為一個光周期)。溫度采用10種處理：10、15、16、18、20、22、24、25、30和35℃。相對濕度(RH)采用5種處理：85%、90%、95%、100%和游離水，共150個組合處理，每種組合處理均設3次重復。共觀察7次，分別為接種后2、4、6、8、10、12和24 h。培養箱內設定上述對應的光照和溫度，其內不同濕度場的配制按照國家標準(GB/T 15309-94)[8]，即用不同濃度丙三醇溶液配制而成，將塑料盒放于培養箱中，盒中加入二分之一體積不同濃度丙三醇溶液分別制成85%、90%、95%、100%的不同濕度場，溫、濕度場及光照用HOBO調試校對。

將制備的新鮮同齡孢子囊用小排筆刷到滅菌的平皿中混勻，再用小排筆刷到凹玻片上，游離水處理組是將上述同齡孢子囊加無菌水混勻制成懸液，將懸液滴到1%水瓊脂平板表面。將載有孢子囊的凹玻片和水瓊脂平板放置于配置好的150個不同溫濕度和光照處理的環境中，分別以規定時間進行鏡檢，每種處理的每個重復隨機觀察3個視野，每個視野100個孢子囊，記錄萌發率。

1.2.2 溫濕度和光照條件對霜霉病菌孢子囊存活的影響

1.2.2.1 不同溫濕度和光照對葡萄霜霉菌孢子囊存活的影響

不同溫度設置為10、15、20、25、30和35℃，光照條件的設置與1.2.1相同，相對濕度(RH)采用3種處理：40%、70%和100%，濕度場的配置方法與1.2.1相同；共54個組合，每個組合均設3次重復。均于處理后1、3和6 d測定孢子囊的萌發率，并接種觀察其致病性。以孢子囊不能萌發，接種后也不能致病作為孢子囊死亡的依據。

將制備的新鮮同齡孢子囊用小排筆輕輕拍打到滅菌的培養皿中，使其孢子囊均勻且薄薄地平鋪于皿底，分別置于所設不同溫濕度及光照條件下的54個組合處理中。經1、3和6 d后，滴加無菌水混勻制成孢子囊懸液，供以下三種處理用：其中一部分用于檢測孢子囊在水中24 h后的萌發率，即將孢子囊懸液滴加到1%水瓊脂平板表面，置于100%濕度場中，20℃黑暗條件放置24 h后，隨即鏡檢,觀察3個視野，每個視野100個孢子囊，記錄孢子囊的萌發率。另一部分配成1×105個/mL孢子囊懸浮液，用葉盤法[9]進行接種。即將該濃度的孢子囊懸浮液滴加到準備好的紅地球品種的葉盤上，用于葉盤法[9]接種。設9個重復，置于20℃黑暗條件下培養7 d，觀察其致病性。剩余者立即鏡檢觀察孢子囊的干癟情況。

1.2.2.2 紫外線照射對葡萄霜霉菌孢子囊存活的影響

實驗在25℃，相對濕度41%的培養箱內進行。分為紫外線照射和完全黑暗(對照)兩種處理。紫外線由培養箱內紫外燈提供，所有處理放置在距紫外燈50 cm處，該處的UVC紫外輻照度經測定為0.58×102μW/cm2。紫外照射時間分別為0、10、20、30、60、120、180、240、300、360、420、480、540和 600 min，照射結束后按1.2.1中的方法分別測定其孢子囊的萌發率和致病性，以相同時間黑暗條件處理組的孢子囊萌發率和致病性為對照，每個處理設3次重復。兩者結果進行比較，明確紫外線照射對葡萄霜霉菌孢子囊存活的影響。

1.2.2.3 自然光對葡萄霜霉菌孢子囊存活的影響

自然光設三種處理：直射光、散射光和完全黑暗。實驗于2015年7月27日10：00～20：00時完全晴朗天氣下進行，在室外陽光充沛處放置一張方桌，桌面鋪有隔熱材料，將盛有孢子囊的無蓋平皿置于隔熱材料上。直射光處理即直接放在陽光下直射，每隔1 h用照度計測定一次光照強度；散射光處理是在盛有孢子囊的平皿上部30 cm處用遮陽網遮陰，同樣每隔1 h照度計測定一次光照強度；完全黑暗處理是用不透光塑料盒將平皿封蓋。分別處理0、1、2、3、4、5、6、、8、9和10 h，后按1.2.1中的方法測定孢子囊的萌發率和致病性；并觀察不同時間內孢子囊的干癟情況，每種處理3次重復。

2 結果與分析

2.1 溫濕度與光照對霜霉病菌孢子囊萌發的影響

研究表明，在供試溫度范圍內，孢子囊在85%、90%、95%和100%的相對濕度環境中，無論完全黑暗、完全光照和光暗交替的環境，其萌發率均為0，即不能萌發，只有在水中可以萌發，說明水是孢子囊萌發的決定性因素，這與葡萄生長季節只要遇陰雨連綿的天氣，葡萄霜霉病便會暴發性流行的情況是一致的。

在水中無論完全光照、完全黑暗和光暗交替的環境，孢子囊在10～25℃的水中均可萌發，且以18～22℃孢子囊的萌發率最高，24℃其萌發率有明顯下降，30和35℃孢子囊均不能萌發，且均以完全黑暗萌發率較高，其次是光暗交替，說明光照對孢子囊萌發有一定的影響。圖1

圖1 不同溫度、光照條件下的孢子囊在水中萌發率
Fig.1 The germination rate of sporangium urder different temperatures and light in the water

2.2 溫度、濕度和光照對霜霉病菌孢子囊存活的影響

2.2.1 不同溫度、濕度、光照對霜霉菌孢子囊存活的影響

研究在54個溫度、濕度和光照組合處理中，無論是置于完全光照，光暗交替，還是完全黑暗，24 h后孢子囊在水中均可萌發，且具致病性；且以6～8 h內的萌發率最高，以后則增加的不夠明顯；在高溫高濕條件下孢子囊容易死亡，而低溫干燥的條件下，孢子囊的存活時間較長。如在相對濕度100%、30～35℃條件下，孢子囊在3 d后萌發率為0，并失去致病力，則認為已經死亡；而置于較低溫度和濕度的處理下，孢子囊既可萌發，也能致病。又如相對濕度100%、25℃條件下6 d后的孢子囊就不能萌發，也失去致病能力；而置于10、15和20℃和較低濕度的孢子囊仍可萌發，且具有致病力，說明低溫低濕的條件有利于孢子囊的存活。另外，以往認為干癟的孢子囊都已死亡，但事實并非完全如此，實驗中發現有些干癟的孢子囊置于水中，不僅可以恢復原狀，用其接種也可致病，據此認為干癟的孢子囊并非都已死亡，如在35℃，相對濕度40%，處理第6 d的孢子囊全部干癟，但用干癟的孢子囊接種葉盤，發現仍然發病，所以不能用干癟的孢子囊作為死亡的標志。圖2～4

a.完全黑暗; b.光暗交替; c.完全光照

a.dark; b.alternation of light and darkness; c.light

圖2 不同溫度、濕度、光照條件下霜霉菌孢子囊萌發率
Fig.2 The sporangia germination rate under different temperatures, humiditys and light

注：a. 處理前的孢子囊形態；b.干癟的孢子囊形態；c. 干癟孢子囊在水中不能恢復的形態；d.干癟孢子囊在水中恢復的形態

Note: a. the sporangium morphology before the treatment; b. the withered sporangium; c. The cannot recovered sporangium in water; d. The recovered sporangium in water

圖3 處理前后孢子囊形態對比

Fig.3 The morphological comparison of sporangium before and after the treatment

圖4 完全黑暗條件下，不同溫濕度處理第6 d的孢子囊接菌新鮮的葉盤，7 d后的葉盤發病情況(黑色框內為未發病的葉盤)
Fig.4 The sporangium, which had been treated by different temperatures and humidity six days in the dark, was inoculated in the leaf disk seven days, and then the incidence was observed

2.2.2 紫外線照射對葡萄霜霉菌孢子囊存活的影響

研究表明，孢子囊對紫外光比較敏感，在25℃、相對濕度41%的培養箱中，經紫外強度為0.58×102μW/cm2UVC照射5 h后，孢子囊既不能萌發，也無致病性，說明孢子囊已經死亡；而對照(黑暗處理)即使10 h，孢子囊仍有較高的萌發率和致病能力，由此說明孢子囊對紫外光比較敏感。圖5

2.2.3 自然光對葡萄霜霉菌孢子囊存活的影響

在溫度為22～37℃，相對濕度為36%～66%的條件下，將霜霉病菌的孢子囊分別置于直射光、散射光和完全黑暗的條件下，其孢子囊的萌發率和存活情況存在明顯區別。實驗證明，以直射光照射對孢子囊的殺傷力最強，經2 h直射光照射(光照強度為65 000～88 000 lx)后，其萌發率開始較明顯下降，但仍具有致病性，4 h后萌發率大幅度降低，6 h時孢子囊出現部分干癟現象，8 h時萌發率降到0，此時用其接種的葉盤已不發病，表明孢子囊已經死亡。散射光對孢子囊的殺傷力明顯減弱，在此條件下即使放置10 h，仍然具有一定的萌發率和致病力；而在完全黑暗的條件下放置10 h后，其萌發率和致病性仍然較高，據此在病害初發期選擇高溫晴朗的天氣摘除病葉，對該病的防治具有重要的意義。表1

圖5 紫外光處理后葡萄霜霉菌孢子囊萌發率
Fig.5 The germination rate of grape downy mildew sporangium which was treated by ultraviolet light
表1 自然光處理后葡萄霜霉菌孢子囊存活率和致病性
Table 1 The survival rate and pathogenicity of grape downy mildew sporangium which was treated by natural light

時間(h)Time直射光Directlight散射光Scatteredlight黑暗Dark萌發率GerminationRate(%)致病性Pathogenicity光照強度(lx)Illuminationintensity萌發率Germinationrate(%)致病性Pathogenicity光照強度(lx)Illuminationintensity萌發率Germinationrate(%)致病性Pathogenicity0(10：00)1778+01767+01722+1(11：00)1467+650001444+15401522+2(12：00)1156+880001189+17501656+3(13：00)811+920001044+18901633+4(14：00)611+100100933+19701689+5(15：00)467+107100744+24201644+6(16：00)311+93100611+22201611+7(17：00)244+85500433+20401411+8(18：00)000-74600356+16801378+9(19：00)000-61200322+15601289+10(20：00)000-37500389+12701200+

注：+ 有致病性，- 無致病性

Note：+ pathogenicity，- no pathogenicity

3 討 論

經不同溫度、濕度和光照條件對葡萄霜霉菌孢子囊萌發的研究，結果表明，該菌的孢子囊只有在水中才能萌發，即使100%濕度下都不能萌發，水是葡萄霜霉菌孢子囊萌發和侵染的決定性因素，也是測報中最重要的依據，這一結果與國淑梅等[10]對黃瓜霜霉病的描述相符；研究表明，該菌孢子囊在10～25℃的水中均可萌發，萌發的最適溫度為18～22℃左右，與李懷方[4]與Keil等[11]最適侵染溫度最適萌發溫度較一致。與其他學者[12-18]的研究有一定的差別。

沒有把孢子囊干癟作為孢子囊死亡的標志，主要考慮到孢子囊出現干癟后部分在水中不僅可恢復原來形狀，且仍可侵染。如在完全光照25℃，40%相對濕度的條件下，6 d后孢子囊出現干癟現象，但在水中仍可恢復原來的形狀，用干癟的孢子囊接種新鮮的葉盤，7 d后葉盤仍然發病，故不能把孢子囊干癟作為孢子囊死亡的標志。具體孢子囊干癟多長時間才失去侵染力，有待繼續研究。初步認為孢子囊因水分蒸發導致干癟，但并不很快失去致病力的這種現象，可能是該菌對不良環境適應的一種結果。

關于孢子囊存活與溫濕度的關系，一般認為孢子囊的存活時間很短，在高溫干燥環境中，只能存活4～6 d，低溫環境中可存活14～16 d。也有認為孢子囊的存活力隨溫度的升高，濕度降低而降低，在30℃時僅能存活6 h，對低濕度敏感。實驗查明，低溫干燥的條件有利孢子囊的存活。

實驗還證明，孢子囊對紫外光比較敏感，經紫外強度為0.58×102μW/cm2紫外線照射5 h后，孢子囊就死亡。自然光的實驗表明，直射光照射對孢子囊的殺傷力較強，照射1 h后，其萌發率開始下降，8 h后孢子囊就死亡。散射光照射10 h后孢子囊仍能萌發致病，說明散射光對孢子囊的殺傷力明顯減弱。這一結果與國淑梅等[10]對黃瓜霜霉病菌的研究結果比較一致。

在自然條件下，夏季陰雨連綿、氣溫較低的氣候有利于孢子囊大量萌發和侵染，這與2007和2013年6、7月間新疆葡萄霜霉病暴發性發生與流行的情況是十分吻合的。

4 結 論

孢子囊只有在水中才能萌發，水是孢子囊萌發的決定性因素。在水中無論完全光照、完全黑暗和光暗交替的環境，孢子囊在10～25 ℃均可萌發，其萌發的最適溫度為18～22℃左右，30℃以上孢子囊均不能萌發。高溫高濕條件下孢子囊容易死亡，而低溫干燥的條件有利于孢子囊的存活。用干癟的孢子囊接種葉盤，仍然發病，說明孢子囊干癟后并非馬上死亡，不能用干癟孢子囊作為孢子囊死亡的標志。孢子囊對紫外光比較敏感，經紫外強度為0.58×102μW/cm2照射5 h后，孢子囊死亡，直射光對孢子囊的殺傷力也很強，夏季經2 h直射光照射(光照強度為65 000～88 000 lx)后，其萌發率開始較明顯下降，4 h后萌發率明顯降低，8 h時孢子囊死亡。

References)

[1] 吉麗麗, 李海強, 任毓忠,等. 葡萄霜霉菌孢子囊擴散動態及與田間病情的相關性[J]. 果樹學報, 2012,29(1):94-98.

JI Li-li, LI Hai-qiang, REN Yu-zhong, et al. (2012). Dynamics of sporangium diffusion of Plasmopara viticola and its correlation with disease incidence in vineyard [J].JournalofFruitScience, 29(1):94-98. (in Chinese)

[2] Thind, T. S., Arora, J. K., Mohan, C., & Raj, P. (2004).EpidemiologyofPowderyMildew,DownyMildewandAnthracnoseDiseasesofGrapevine.DiseasesofFruitsandVegetablesVolumeI. Springer Netherlands.

[3] ALET, P( 1977):.LESMaladiesetlesparasitesdelavigne.Champignosetlesvines. Vol.1. France: Paysan la Midi Montpellier, 871.

[4] 李懷方, 劉鳳權, 郭小密. 園藝植物病理學[M]. 北京:中國農業大學出版社, 2001:122-123.

LI Huai-fang, LIU Feng-quan, GUO Xiao-mi. (2001).GardeningPlantPathology[M]. Beijing: China Agricultural University Press: 122-123. (in Chinese)

[5] 董金皋. 農業植物病理學[M]. 北京：中國農業出版社:2007:323-324.

DONG Jin-hao.(2007).AgriculturalPhytopathology[M]. Beinjing: China Agriculture Press: 323-324. (in Chinese)

[6] 邱強. 原色葡萄病蟲圖譜 [M]. 北京:中國科學技術出版社, 2000:44-48.

QIU Jiang.(2000).PrimaryGrapeDiseasesandPestsAtlas[M]. Beijing: China Science and Technology Press: 44-48. (in Chinese)

[7] Kennelly, M. M., Gadoury, D. M., Wilcox, W. F., Magarey, P. A., & Seem, R. C. (2007). Primary infection, lesion productivity, and survival of sporangia in the grapevine downy mildew pathogen plasmopara viticola.Phytopathology, 97(4):512-522.

[8] GB/T 15309-94，附錄A: 飽和鹽溶液、丙三醇溶液標準濕度場測試方法[S].

GB/T 15309-15309, appendix A. (1995) :saturatedsaltsolution,glycerolsolutionstandardhumidityfieldtestmethods.(in chinese)

[9] 湯鈿.葡萄霜霉病離體接種方法的研究[J]. 微生物學通報, 1994,21(6):373-374 .

TANG Tian. (1994). The Study of Vitro Inoculation Methods in the Grapevine Downy Mildew Pathogen [J].MicrobiologyChina, 21(6):373-374. (in Chinese)

[10] 國淑梅，牛貞福. 溫濕度對黃瓜霜霉菌病斑產孢和孢子囊萌發的影響[J].北方園藝, 2012,(13):151-153.

GUO Shu-mei, NIU Zhen-fu.(2012). Effect of Temperature and Moisture to Sporangium Germination and Formation of Cucumber Downy Mildew[J]NorthernHorticulture, (13):151-153. (in Chinese)

[11] Laviola, C., Burruano, S., & Strazzeri, S. (1986). Influenza della temperatura sulla germinazione delle oospore di plasmopara viticola (berk et curt.) berl. et de toni.PhytopathologiaMediterranea, 25(1/3):80-84.

[12] Gregory C T.( 1915).Studies on Plasmopara viticola (Downy Mildew, The official report of the session of the International Congress of Viticulture: 126-150.

[13] Kortekamp, A., Wind, R., & Zyprian, E. (1998). Investigation of the interaction of plasmopara viticola with susceptible and resistant grapevine cultivars.JournalofPlantDiseases&Protection, 105(5):475-488.

[14] Galet P,Les maladies et les parasites de la vigne. Tome 1, Imprimerie du Paysan du Midi: Montpellier,1977.

[15] Caffi, T., Legler, S. E., González-Domínguez, E., & Rossi, V. (2015). Effect of temperature and wetness duration on infection by plasmopara viticola, and on post-inoculation efficacy of copper.EuropeanJournalofPlantPathology: 1-14.

[16] 常永義,朱建蘭.全球紅葡萄霜霉病防治及病菌生物學特性研究[J].中外葡萄與葡萄酒,2001,(1):17-20.

CHANG Yong-yi, ZHU Jian-lan.( 2001 ). Study on the Control of "Quan Qiu Hong" Grape Downy Mildew and Its Pathogen Biological Characteristics [J].Sino-OverseasGrapevine&Wine, (1):17-20. (in Chinese)

[17] 郭明浩, 李華, 楊永鋒. 葡萄霜霉病原孢子囊萌發特性及其多元回歸分析[C]//.第四屆國際葡萄與葡萄酒學術研討會論文集. 西安:陜西人民出版社, 2004:59-63.

GUO Ming-hao, LI Hua, YANG Yong-feng.(2004).GerminationCharacteristicsandMultipleRegressionAnalysisofSporangia，Plasmoparaviticola[C]//.Xián:TheProceedingoftheFourthConferenceonInternationalGrapeandWine,PublishedbyShanxiPeople'sPublishingHouse: 59-63. (in Chinese)

[18] Williams, M. G., Magarey, P. A., & Sivasithamparam, K. (2007). Effect of temperature and light intensity on early infection behaviour of a western australian isolate of plasmopara viticola, the downy mildew pathogen of grapevine.AustralasianPlantPathology, 36(4):325-331.

Fund project:Supported by the earmark funds for public welfare industry(201203035)

Effects of Temperature, Humidity and Illumination on the Germination and Survival of Sporangia of Downy Mildew of Grapes

LI Zhuo, JIN Gong-xi, LANG Ning, SUN Qi, REN Yu-zhong,ZHAO Bao-long, ZHANG Li, LI Guo-ying

(Key Laboratory of Prevention and Control of Oasis Crop Diseases, Shihezi University,ShiheziXinjiang832000,China)

【Objective】 The objective of this project is to study the effects of climate factors on the germination and survival of grape downy mildew sporangia, and provide the theoretical basis to control the disease.【Method】The survival and germination of sporangium was researched by controlling temperature, humidity, light and other climatic factors.【Result】The results showed that sporangia could germinate in water and release zoospores, and the optimum germination temperature was approximately 18-22℃. Sporangia survival was related to temperature, humidity, and light. At 35℃ and relative humidity of either 70% or 100%, sporangia died within three days. Sporangia survived for more than six days at 10-20℃, regardless of light conditions. Disease was observed when these shriveled sporangia were inoculated onto leaf discs. This indicated that shriveled sporangia cannot be used as an indicator whether the sporangia were dead or not. Sporangia were dead after illumination with 0.58 × 102μW / cm2of ultraviolet light for 5 h. The sporangium did not germinate and was not pathogenic after exposure to 8 h direct light. The sporangium survived with 10 h irradiance of scattered light.【Conclusion】Sporangia could germinate in water and release zoospores, and the optimum germination temperature is about to 18-22℃; the sporangium was sensitive to ultraviolet light. At the direct light intensity of 65,000-107,100 lx, the sporangium would die in 8 hours.

downy mildew of grape；temperature and humidity and light；sporangium；germination；survival

10.6048/j.issn.1001-4330.2016.11.017

2016-05-04

公益性行業專項(201203035)

李卓(1988-)，女，甘肅人，碩士研究生，研究方向為葡萄病害及其防治，(E-mail)349927259@qq.com

張莉(1970-)，女，江蘇人，教授，研究方向植物病理學，(E-mail)1602784618@qq.com

李國英(1941-)，男，河北人，教授，研究方向為植物病原真菌與真菌病害，(E-mail)lgyshu@163.com

S436.64

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1001-4330(2016)11-2090-08