酶法輔助提取山杏種皮黑色素工藝優化及其穩定性

李紅姣，李巨秀*，趙 忠*

（1.西北農林科技大學林學院，西部環境與生態教育部重點實驗室，陜西 楊凌 712100；

2.河北農業大學林學院，河北 保定 071000；3.西北農林科技大學食品科學與工程學院，陜西 楊凌 712100）

酶法輔助提取山杏種皮黑色素工藝優化及其穩定性

李紅姣1,2，李巨秀3,*，趙 忠1,*

（1.西北農林科技大學林學院，西部環境與生態教育部重點實驗室，陜西 楊凌 712100；

2.河北農業大學林學院，河北 保定 071000；3.西北農林科技大學食品科學與工程學院，陜西 楊凌 712100）

以山杏種皮為原料，以黑色素得率為指標，對堿性蛋白酶、纖維素酶、胃蛋白酶、中性蛋白酶4 種酶輔助提取山杏種皮黑色素的效果進行比較分析，篩選出酶解效果較好的胃蛋白酶。再通過單因素試驗和正交試驗，優化胃蛋白酶輔助提取山杏種皮黑色素的最佳工藝，最后對山杏種皮黑色素的穩定性進行系統的分析。結果表明，在酶解溫度32 ℃、酶解pH 2.0、加酶量90 000 U/g、酶解時間5 h的條件下進行胃蛋白酶輔助提取的效果較好，黑色素得率達到7.4%。山杏種皮黑色素在堿性介質中穩定，金屬離子Cu2+、Fe2+和Fe3+對其穩定性有影響，而氧化劑、還原劑、蔗糖和檸檬酸對其穩定性無影響。

酶；山杏種皮；黑色素；提取；穩定性

李紅姣, 李巨秀, 趙忠. 酶法輔助提取山杏種皮黑色素工藝優化及其穩定性[J]. 食品科學, 2016, 37(10): 69-75. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201610012. http://www.spkx.net.cn

LI Hongjiao, LI Juxiu, ZHAO Zhong. Optimization of enzyme-assisted extraction of melanin from testae of wild apricots and evaluation of its stability[J]. Food Science, 2016, 37(10): 69-75. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/ spkx1002-6630-201610012. http://www.spkx.net.cn

植物來源的食品添加劑，特別是植物黑色素，安全性較高，應用范圍廣，不僅可以作為食品色素，還具有生物半導體、抗氧化、清除自由基、防紫外線輻射、螯合重金屬離子等功能[1-7]。黑色素是生物界普遍存在的一

類結構復雜多樣的酚類或吲哚類生物大分子色素[8]，來源廣泛，很多動物、植物、微生物都含并且可以合成，具有很大的應用潛力。已有研究人員對不同材料中黑色素的提取、性質等方面做了大量研究，如黑米[9]、烏骨雞[10]、魷魚墨[11]、烏飯樹葉[12]、黑芝麻[13]等中的黑色素。

酶法提取主要采用酶破壞細胞壁結構，具有反應條件溫和選擇性高的特點，而酶的專一性可避免對底物外物質的破壞。在提取熱穩定性差或含量較少的化學成分時，優勢更為明顯[14-15]。酶法相對其他提取方法具有眾多優點，可以提高有效成分產率，縮短提取時間，降低能耗，降低提取成本。由于酶法提取可以在常溫和非有機溶劑條件下進行，所以得到的產物純度、穩定性及活性都較高，無污染。酶法提取無需投入昂貴新設備，成本較低，具有成本低廉、性價比高的優勢。Noveilino等[16]用酶降解法從人的頭發和牛的虹膜中提取出真黑素。筆者已經探索出了山杏種皮黑色素的常規提取方法-堿溶酸沉法[17]，但酶法輔助提取山杏種皮黑色素鮮見報道。

本實驗采用酶法輔助堿溶酸沉淀法提取山杏種皮黑色素，利用堿性蛋白酶、中性蛋白酶、纖維素酶和胃蛋白酶的活性輔助提取黑色素，優化確定酶輔助提取山杏種皮黑色素的最佳工藝條件。以山杏種皮為原料提取黑色素，可以提高杏仁深加工產品的附加值，研究山杏種皮黑色素作為天然食用色素的穩定性，可為進一步開發利用山杏種皮黑色素提供依據，并且對促進山杏產區農村經濟的發展、增加農民的收入均有重要的意義。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

山杏種皮：產自甘肅平涼，將杏仁手工去皮，種皮在自然條件下風干后備用。

冰乙酸、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、氯化亞鐵（均為分析純） 天津博迪化工有限公司；鹽酸、乙醇（均為分析純） 西安三浦化學試劑有限公司；氫氧化鈉、蔗糖（均為分析純） 四川西隴化工有限公司；堿性蛋白酶、中性蛋白酶、纖維素酶、胃蛋白酶（均為化學純） 西安沃爾森生物技術有限公司；氨水（分析純）成都市科龍化工試劑廠；氯化銅、氯化鐵（均為分析純） 天津市東麗區天大化學試劑廠；雙氧水、硫代硫酸鈉（均為分析純） 西安化學試劑廠；檸檬酸（分析純） 天津市大茂化學儀器供應站。

1.2 儀器與設備

EB-280-12型千分之一天平 日本島津公司；SC-3610型低速離心機 安徽中科中佳科學儀器有限責任公司；RE-201D型旋轉蒸發儀 鞏義予華儀器有限責任公司；KQ-500DE型數控超聲波清洗機 昆山市超聲波儀器有限公司；HH-6型數顯恒溫水浴鍋、85-2型恒溫磁力攪拌器 國華電器有限公司；DZF型真空干燥箱北京科偉永興儀器有限公司；PHS-3C型酸度計 方舟科技（北京）有限公司。

1.3 方法

1.3.1 山杏種皮黑色素的提取

稱取5.00 g山杏種皮，放入150 mL錐形瓶中，加入75 mL蒸餾水煮沸5 min后過濾，以除去水溶性雜質和排除材料中的氧氣。向濾渣中加入酶，在最適溫度水浴保溫靜置2 h，分別對山杏種皮進行酶解，然后酶失活后過濾，在濾渣中加入NaOH溶液進行提取后，過濾離心，上清液用2 mol/L的HCl溶液調節pH值到2，使黑色素沉淀，室溫靜置2 h，離心分離，沉淀反復堿溶酸沉進行純化，最后真空干燥得到山杏種皮黑色素顆粒。山杏種皮黑色素的提取流程見圖1。

圖1 山杏種皮黑色素的提取工藝流程Fig. 1 The extraction process for MTWA

1.3.2 酶的篩選

表1 加酶條件Table 1 Enzymatic hydrolysis conditions

在圖1提取所得的濾渣中加入75 mL去離子水，同時按照表1加入酶，用0.1 mol/L HCl溶液調節pH值，在最適溫度水浴保溫靜置2 h，分別對山杏種皮進行酶解，然后按照圖1進行提取純化。堿溶液的提取條件為0.5 mol/L的NaOH溶液60 ℃水浴提取2 h。以黑色素得率為指標，選擇得率最高的酶用于后續實驗。

1.3.3 酶法輔助提取單因素試驗

以黑色素得率作為評價指標，分別對酶解pH值（1、2、3、4、5）、酶解時間（2、3、4、5、6 h）、酶解溫度（27、37、47、57、67 ℃）和加酶量（22 000、44 000、66 000、88 000、120 000 U/g）進行單因素試驗，以確定各因素的影響效果和適宜范圍。

1.3.4 酶法輔助提取正交試驗

在單因素試驗基礎上，以酶解溫度、酶解pH值、加酶量、酶解時間作為考察因素，以黑色素得率為考察指標，通過四因素四水平正交試驗，進一步優化提取工藝參數，正交試驗因素與水平見表2。

表2 正交試驗設計因素與水平Table 2 Factors and levels used for orthogonal experimental design

1.3.5 加酶方式對黑色素得率的影響

考察在酶解第1小時一次性加入酶22 000 U/g和分別在第1、2小時2 次各加入酶11 000 U/g對黑色素得率的影響。

1.3.6 黑色素得率計算

將有機溶劑洗滌過的黑色素塊狀物經真空干燥后，稱質量得到黑色素的質量。黑色素得率計算公式為：

1.3.7 山杏種皮黑色素的穩定性

1.3.7.1 山杏種皮黑色素溶液的配制

稱取5 mg山杏種皮黑色素，用500 mL質量分數為0.3%的氨水超聲波輔助溶解5～6 h，然后用旋轉蒸發儀減壓抽去多余氨氣，直至pH值達7.5，然后將旋轉蒸發后的山杏種皮黑色素溶液以3 500 r/min離心3 min，最后用pH7.5的磷酸緩沖溶液定容至100 mL，即配制成質量濃度為50 mg/L的山杏種皮黑色素溶液。

1.3.7.2 pH值對山杏種皮黑色素穩定性的影響

分別取50 mg/L山杏種皮黑色素溶液15 mL于6 支25 mL具塞刻度試管中，然后用1.0 mol/L NaOH溶液或1.5 mol/L HCl溶液調pH值分別至1.0、3.0、5.0、7.0、9.0、11.0，室溫條件下放置30 min，觀察山杏種皮黑色素溶液顏色的變化，在210 nm波長處測定吸光度（A210nm）。

1.3.7.3 金屬離子對山杏種皮黑色素穩定性的影響

分別配制濃度為0.0、0.1、0.5、1.0、1.5、2.0 mmol/L的NaCl、CuCl2、FeCl2和FeCl3溶液，各取該4 種金屬離子溶液0.5mL，分別與4.5 mL的50 mg/L山杏種皮黑色素溶液混合，使山杏種皮黑色素溶液中的金屬離子濃度為0.00、0.01、0.05、0.10、0.15、0.20 mmol/L，搖勻，室溫條件下放置12 h后測定A210nm。

1.3.7.4 氧化劑、還原劑對山杏種皮黑色素穩定性的影響

分別配制質量濃度為0、0.1、1.0、10、100、1 000 mg/L的H2O2和Na2S2O3溶液，各取這2 種溶液0.5 mL，分別與4.5 mL的50 mg/L山杏種皮黑色素溶液混合，使山杏種皮黑色素溶液中的H2O2和Na2S2O3溶液質量濃度為0、0.01、0.1、1.0、10、100 mg/L，搖勻，室溫條件下放置12 h后測定A210nm。

1.3.7.5 蔗糖、檸檬酸對山杏種皮黑色素穩定性的影響

分別配制質量濃度為0.1、1.0、10、100、1 000 mg/L的蔗糖和檸檬酸溶液，各取這兩種溶液0.5 mL，分別與4.5 mL的50 mg/L山杏種皮黑色素溶液混合，使山杏種皮黑色素溶液中的蔗糖和檸檬酸溶液質量濃度為0、0.01、0.1、1.0、10、100 mg/L，搖勻，室溫條件下放置12 h后測定A210nm。

1.4 數據分析

采用Excel 2010軟件統計分析數據，采用單因素Duncan法進行多重比較，以DPS v7.55軟件進行顯著性分析，顯著水平為P＜0.05。

2 結果與分析

2.1 酶種類的選擇

不同種類酶的酶活范圍、最適工作溫度和最適工作pH值均不同，因此對蛋白質等的提取效果有很大影響。已有研究證明酶的種類對大米蛋白得率有較大影響[18]。本研究以黑色素得率為指標，篩選出輔助提取山杏種皮黑色素最合適的酶，結果見圖2。

圖2 單酶提取效果比較Fig. 2 Comparison of extraction yield of melanin with single enzymes

由圖2可知，在4 種酶中，胃蛋白酶和堿性蛋白酶對山杏種皮黑色素提取具有較好的輔助效果（P＜0.05），黑色素得率分別達到6.8%和6.1%；中性蛋白酶水解效果最差，得率只有4.7%（P＜0.05）。由于胃蛋白酶酶解條件溫和（37 ℃），便于酶解操作，因而將其選為山杏種皮黑色素輔助提取所用酶。

2.2 單因素試驗結果

2.2.1 酶解pH值對提取效果的影響

酶活力受pH值得影響很大，不僅能夠影響酶的構象，還影響底物的解離狀態[19]。因此確定酶的最適工作pH值能更加有效提取山杏種皮黑色素。在酶解溫度37 ℃、酶解時間2 h、加酶量22 000 U/g條件下，分別調節酶解pH值為1、2、3、4、5，分析山杏種皮黑色素的得率，見圖3。

圖3 酶解pH值對黑色素得率的影響Fig. 3 Effect of hydrolysis pH on melanin yield

由圖3可知，溶液的pH值在1.0～2.0之間，黑色素的得率升高；pH值為2.0時，達到最大值；pH＞2.0，隨著pH值的升高，黑色素得率呈現下降趨勢。說明pH 2.0左右對黑色素提取有較好的效果（P＜0.05），在其他pH值范圍內，可能由于酶變性或沒有達到最大活性，致使黑色素得率較低。

2.2.2 酶解溫度對提取效果的影響

在加酶量22 000 U/g、酶解pH 2.0、酶解時間2 h條件下，選擇27、37、47、57、67 ℃考察酶解溫度對山杏種皮黑色素提取效果的影響，結果見圖4。

圖4 酶解溫度對黑色素得率的影響Fig. 4 Effect of hydrolysis temperature on melanin yield

由圖4可知，酶解溫度在37 ℃左右時黑色素得率最高（P＜0.05），在其他溫度范圍內可能由于酶失活或沒有達到最大活性，導致黑色素得率較低。

2.2.3 酶解時間對提取效果的影響

在酶解pH 2.0、酶解溫度37 ℃、加酶量22 000 U/g條件下，考察酶解時間2、3、4、5、6 h對山杏種皮黑色素提取效果的影響，見圖5。

圖5 酶解時間對黑色素得率的影響Fig. 5 Effect of hydrolysis time on melanin yield

由圖5可知，隨著酶解時間延長，黑色素得率呈上升趨勢，酶解時間為5 h時，山杏種皮黑色素得率最高（P＜0.05），酶解6 h時得率有所下降（P＜0.05），考慮到黑色素得率和成本，以5 h作為進一步試驗的酶解時間。

2.2.4 加酶量對提取效果的影響

在酶解pH 2.0、酶解溫度37 ℃、酶解時間2 h條件下，考察加酶量22 000、44 000、66 000、88 000、120 000 U/g對提取效果的影響，見圖6。

圖6 加酶量對黑色素得率的影響Fig. 6 Effect of enzyme concentration on melanin yield

由圖6可知，隨著加酶量的加大，黑色素得率呈上升趨勢，但在88 000 U/g以后趨勢變得緩慢。這可能是因為在加酶量較小時，酶與底物充分接觸并且結合，隨著加酶量的加大，底物濃度下降，反應速度降低，導致酶的作用受到抑制[20]。考慮工業生產中的用酶成本，以88 000 U/g為最佳的加酶量（P＜0.05）。

2.3 正交試驗結果

在單因素試驗的基礎上，采用正交試驗優化工藝條件。以酶解溫度、酶解pH值、加酶量、酶解時間作為考察對象，優化工藝條件，每個因素選用4個水平，選用L16（45）正交表，結果見表3，方差分析結果見表4。

由表3、4可以看出，4 個因素對黑色素得率均有影響。影響大小順序為酶解pH值＞酶解溫度＞加酶量＞酶解時間。試驗最佳組合為：A2B3C3D1。組合不在16組試驗內，因此進行驗證實驗，即酶解pH 2、加酶量90 000 U/g、酶解時間5 h、酶解溫度32 ℃條件下，測得山杏種皮黑色素得率為7.4%，高于其他任何一組黑色素得率。因此，在實驗條件范圍內，提取山杏種皮黑色素

最佳工藝為酶解pH 2、加酶量90 000 U/g、酶解時間5 h、酶解溫度在32～37 ℃范圍。

表3 正交試驗設計及結果Table 3 Orthogonal experimental design with experimental results

表4 正交試驗方差分析Table 4 Analysis of variance for the experimental results of orthogonal array dessiiggnn

2.4 加酶方式對黑色素提取效果的影響

當底物濃度一定時，加酶量過大，可能導致酶與底物接觸面積受到限制或者酶本身相互水解，使酶活力降低。在不增加加酶量的情況下，一次性加胃蛋白酶黑色素得率為6.8%，而采用分2 次加入胃蛋白酶，黑色素得率為7.0%，可見2 次加酶對山杏種皮進行酶解效果更加理想。

2.5 pH值對山杏種皮黑色素穩定性的影響

黑色素除了溶于堿溶液，微溶于二甲基亞砜外，幾乎不溶于其他任何常規試劑和有機溶劑[21-22]。因此，溶液的pH值對黑色素的穩定性有很大影響。經1.0 mol/L NaOH溶液和1.5 mol/L HCl溶液調pH值，放置30 min后，測得的吸光度變化結果見圖7。

圖7 pH值對山杏種皮黑色素穩定性的影響Fig. 7 Effect of pH on melanin stability

由圖7可以看出，山杏種皮黑色素對酸性條件比較敏感，pH1～4時有明顯沉淀，而pH＞5時溶液澄清。此外，肉眼觀察，pH 1～4時顏色較淡，呈現淡褐色，而pH＞5時顏色較深，呈現褐色。由此說明，山杏種皮黑色素在酸性條件不穩定，而在堿性條件下比較穩定，且pH值變化黑色素溶液的色調不會發生變化。這與大多數報道的黑色素性質相同，如張金萍等[23]報道的酶法合成黑色素的穩定性研究，孫玲等[24]報道的黑芝麻黑色素提取條件和穩定性的研究。因此，在食品加工中，添加山杏種皮黑色素時應盡量在堿性環境中。

2.6 金屬離子對山杏種皮黑色素穩定性的影響

黑色素對金屬離子具有很高的結合能力，金屬離子的結合對黑色素的抗氧化活性、團聚體結構等方面產生影響，從而影響黑色素的穩定性[25]。4 種金屬離子對山杏種皮黑色素穩定性的影響如圖8所示。

圖8 金屬離子對山杏種皮黑色素穩定性的影響Fig. 8 Effect of metal ions on melanin stability

由圖8可以看出，Fe2+和Fe3+對山杏種皮黑色素有一定增色作用，Cu2+對山杏種皮黑色素有一定減色作用，Na+對山杏種皮黑色素穩定性無影響。此外，Fe2+和Fe3+濃度大于0.10 mmol/L時開始出現沉淀，Cu2+濃度大于0.15 mmol/L時也出現沉淀。由此說明，Na+對山杏種皮黑色素穩定性無影響，而Cu2+、Fe2+和Fe3+對山杏種皮黑色素穩定性均有影響。在食品加工中，添加或保存山杏種皮黑色素時應避免使用這些金屬容器。

2.7 氧化劑和還原劑對山杏種皮黑色素穩定性的影響

黑色素是一類含有多種官能團的聚合物，在較寬的pH值范圍內既可以作為電子供體，又可以作為電子受體，因此具有氧化還原特性[25]。氧化劑、還原劑對山杏種皮黑色素穩定性的影響見圖9。

圖9 H 9 H2O2和NaNa2S2O3對山杏種皮黑色素穩定性的影響Fig. 9 Effect of H2O2and Na2S2O3on melanin stability

由圖9可以看出，低質量濃度（質量濃度小于10 mg/L）的氧化劑H2O2和還原劑Na2S2O3對山杏種皮黑色素穩定性無太大影響，但氧化劑和還原劑質量濃度大于10 mg/L時，吸光度顯著增大（P＜0.05），可能是由于山杏種皮黑色素在氧化劑、還原劑的作用下，解離或者結合了部分吲哚醌結構。這與張金萍等[23]報道的氧化劑、還原劑對酶法合成黑色素穩定性影響的結果基本一致。

2.8 蔗糖和檸檬酸對山杏種皮黑色素穩定的影響

圖10 蔗糖和檸檬酸對山杏種皮黑色素穩定性的影響Fig. 10 Effect of sucrose and citric acid on melanin stability

由圖10可以看出，蔗糖和檸檬酸對山杏種皮黑色素的穩定性無明顯影響。在食品工業中，添加山杏種皮黑色素可以同時添加蔗糖和檸檬酸。

3 結論與討論

本實驗結果表明，酶解pH值、酶解時間、酶解溫度、加酶量與加酶方式對山杏種皮黑色素得率均有影響，酶法輔助提取山杏種皮黑色素的適宜條件為酶解pH 2、加酶量90 000 U/g、酶解時間5 h、酶解溫度在32～37 ℃范圍，此時山杏種皮黑色素得率為7.4%。采用分2 次加入胃蛋白酶對山杏種皮進行酶解效果較好。山杏種皮黑色素在堿性介質中穩定性好，Na+、蔗糖和檸檬酸、低質量濃度的氧化劑和還原劑（質量濃度小于10 mg/L）對山杏種皮黑色素穩定性影響不大，而高于10 mg/L的氧化劑還原劑、Cu2+、Fe2+和Fe3+對山杏種皮黑色素穩定性均有影響。

雖然酶法輔助提取黑色素最高得率能達到7.4%，無需投入昂貴設備，如微波機器[12]等，但是由于酶的成本較高，與NaOH提取法（最高得率達到7.2%）[17]無顯著差異，因此酶法輔助提取不是最理想的提取方式，探索一條更加經濟、合理、高得率的黑色素提取方法也是后續研究的重點。天然黑色素是不溶于水和一般有機溶劑的多聚化合物，是在植物、動物和微生物細胞中合成的最廣的一類色素，它的基礎結構是一些共價交聯的吲哚環。酪氨酸是合成黑色素的前體物，酪氨酸在酪氨酸氧化酶的催化作用下氧化生成二羥苯丙氨酸（多巴），繼續氧化生成多巴醌，再進一步氧化閉環生成5,6-二羥吲哚，再轉化生成5,6-吲哚二醌，在酶的作用下，最后氧化聚合而形成黑色素[23,26]。在酶法輔助提取過程中，一部分黑色素可能被酶解，因此有望通過其他方法避免酶解從而提高山杏種皮黑色素的得率。

天然黑色素具有重要的生物活性、無毒無害，具有作為天然食用色素的巨大潛力，雖然Wang Hengshan等[27]研究表明桂花種皮黑色素對紫外線和可見光非常穩定，紫外線或可見光照射15 d對桂花種皮黑色素無顯著影響，但是不同來源的黑色素結構和性質差異很大，有關天然黑色素穩定性的資料相當有限。山杏種皮黑色素適用于許多領域，比如食品、化妝品、漆類或其他燃料，但其在堿性介質中穩定性好，這就局限了黑色素的應用范圍，在應用過程中應該控制好pH值范圍。本研究表明在210 nm波長處Na+、低質量濃度的氧化劑和還原劑（質量濃度小于10 mg/L）、蔗糖和檸檬酸對山杏種皮黑色素穩定性影響不大，但Cu2+、Fe3+、Fe2+等離子具有增色或減色作用，可能是由于這些金屬離子與黑色素形成了不同的配合物，姚增玉[25]報道的山杏種皮黑色素在200 nm波長處的穩定性與210 nm波長處基本一致。總的來說，山杏種皮黑色素有望成為一種新型的天然色素，但是由于其在一些方面不甚穩定，因此必須采取一定的穩定化技術，如盡量避免加工、運輸、貯藏過程中使用金屬容器，控制好pH值范圍等。另外，對黑色素進行適當的修飾或者改性，增大其溶解度，對進一步探索山杏種皮黑色素的功能效用有很重要的作用，也是后續研究的重點。

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Optimization of Enzyme-Assisted Extraction of Melanin from Testae of Wild Apricots and Evaluation of Its Stability

LI Hongjiao1,2, LI Juxiu3,*, ZHAO Zhong1,*
(1. Key Laboratory of Environment and Ecology in Western China, Ministry of Education, College of Forestry, Northwest A&F University, Yangling 712100, China; 2. College of Forestry, Agricultural University of Hebei, Baoding 071000, China; 3. College of Food Science and Engineering, Northwest A&F University, Yangling 712100, China)

Melanin, a complex, high molecula r weight substance composed of phenolic or indolic compounds, is widespread in the biosphere. In this work, we isolated melanin from the testae of wild apricots (MTWA) using an enzyme-assisted procedure. Pepsase was selected to optimize the extraction conditions. The stability of MTWA was analyzed. The results showed that the optimal conditions for MTWA extraction was found to be extraction with 0.5 mol/L NaOH after enzymatic hydrolysis with 90 000 U/g pepsase at 32 ℃ and pH 2 for 5 h. Under these conditions, the maximum yield of MTWA of 7.4% was obtained. MTWA was stable in alkaline medium. Cu2+, Fe2+and Fe3+affected its stability while oxidants, reducing agents, sucrose and citric acid had no effect on MTWA.

enzyme; testae of wild apricots; melanin; extraction; stability

10.7506/spkx1002-6630-201610012

S789.9

A

2015-07-08

國家林業局林業公益性行業科研專項（200904020）

李紅姣（1987—），女，博士，研究方向為森林食品、林產品加工。E-mail：lihongjiao0103@163.com

*通信作者：李巨秀（1972—），女，副教授，博士，研究方向為食品化學和功能食品。E-mail：juxiuli@msn.com趙忠（1958—），男，教授，博士，研究方向為森林培育理論與技術。E-mail：zhaozh@nwsuaf.edu.cn