侯杰榮,侯思奎,楊 欣,姚小東(西南醫科大學衛生科,四川瀘州 646000)
地塞米松納米膠束的制備及體外抗腫瘤作用研究Δ
侯杰榮*,侯思奎,楊 欣,姚小東#(西南醫科大學衛生科,四川瀘州 646000)
目的:制備地塞米松(Dex)納米膠束(簡稱Dex膠束),并研究其體外抗腫瘤作用。方法:以γ-聚谷氨酸(γ-PGA)為載體、二甲基亞砜為有機溶劑,采用透析法制備Dex膠束;觀察并檢測其形態、粒徑、Zeta電位、多分散系數(PDI)、臨界膠束濃度(CMC)、載藥量、包封率;比較pH 5.5、7.4條件下Dex膠束和Dex的體外釋藥情況;比較0.05、0.1、0.2、0.5、1.0 μmol/ml的Dex、γ-PGA、Dex膠束和潑尼松龍(陽性對照)對人肺腺癌A549細胞存活率的影響,比較A549細胞在4、37℃下對0.5 μmol/ml的Dex膠束和Dex的攝取量。結果:所制備Dex膠束呈圓球形、形態規則,粒徑為(76.25±3.74)nm,Zeta電位為5.0 mV,PDI為0.163± 0.38,CMC為7.609 μg/ml,載藥量為(9.56±0.92)%,包封率為(89.25±1.36)%;與Dex比較,Dex膠束在pH 5.5、7.4條件下釋藥時間延長;在0.05~0.2 μmol/ml范圍內,游離Dex、γ-PGA、Dex膠束和潑尼松龍對細胞存活率的影響差異無統計學意義(P>0.05);在0.5、1.0 μmol/ml時,Dex膠束作用下細胞存活率明顯低于游離Dex或潑尼松龍作用(P<0.05)。4℃下,細胞對Dex膠束和Dex的攝取量差異無統計學意義(P>0.05);37℃下,細胞對Dex膠束的攝取量明顯高于游離Dex和4℃下的游離Dex、Dex膠束(P<0.05)。結論:所制備的Dex膠束能延長Dex的釋藥時間,降低A549細胞的存活率和細胞的攝取效率。
地塞米松;γ-聚谷氨酸;納米膠束;制備;抗腫瘤
地塞米松(Dexamethasone,Dex)是臨床最常用的糖皮質激素,主要適應證包括過敏性與自身免疫性炎癥性疾病(如結締組織病,嚴重的支氣管哮喘、皮炎等過敏性疾病)、潰瘍性結腸炎、急性白血病、肺腺癌和惡性淋巴瘤等[1-2],但因其半衰期短,需要反復給藥,且在局部病變部位的滯留時間短,療效較差[3-4],所以患者依從性較差[5]。為了延長Dex的半衰期,延緩釋放速率,增強療效,目前的研究熱點主要是將糖皮質激素類藥物制備成前體藥物、各種緩控釋制劑或者其他長效制劑如膠束[6]、脂質體[7]和納米粒[8]等。相比較普通劑型而言,這些長效劑型不僅可以延緩藥物的釋放[9],而且可以增加其在病變部位的蓄積,增強療效[10-11]。
γ-聚谷氨酸(γ-PGA)是一種由D,L-谷氨酸單體經過γ-酰胺鍵結合而形成的多聚氨基酸,其具有良好的生物相容性、水溶性和可降解性[12-13],并且其側鏈上存在大量游離羧基,其有利于進行化學修飾和攜帶生物活性基團[14-15],因此備受廣大國內外研究者的關注,在生物醫學領域具有較好的應用前景[16-17]。
本研究將γ-PGA與Dex通過透析法制備成Dex納米膠束(簡稱Dex膠束),并對其進行性質表征和抗腫瘤作用研究,以期為進一步的體內研究提供實驗基礎。
1.1 儀器
高效液相色譜儀,包括P680A四元低壓梯度泵(美國戴安公司);Zeta Sizer-Nano ZS90納米粒度儀(英國馬爾文公司);SP-752紫外-可見分光光度計(上海奧析科學儀器有限公司);RF-5301PC熒光分光光度計(日本島津公司);Tecnai G2F-20透射電鏡(上海費爾伯恩實業發展有限公司);DG5031酶聯免疫檢測儀(上海珂淮儀器有限公司)。
1.2 藥品與試劑
Dex對照品(成都艾科達化學試劑有限公司,批號:201305,純度:>99%);γ-PGA(湖北興縱晨科技有限公司,批號:201402,純度:>95%);乙腈為色譜純;水為超純水;其余試劑為分析純。
1.3 細胞
人肺腺癌A549細胞由上海博谷生物科技有限公司提供,以含10%小牛血清、100 u/ml青霉素和100 u/ml鏈霉素的DMEM培養基進行培養,每隔1 d換1次培養基。
1.4 其他
透析袋(美國Sigma公司,截留分子質量:5 000 Da)。
2.1 Dex膠束的制備與性質表征
采用透析法制備Dex膠束。首先將適量γ-PGA固體溶于2.0 ml 0.02 mol/L的磷酸鹽緩沖液(PBS,pH 7.4)中,攪拌30 min,加入3.0 ml有機溶劑二甲基亞砜(DMSO),繼續攪拌1 h后,緩慢滴入適量Dex溶液,使得Dex與γ-PGA的比例為1∶10,再繼續攪拌30 min后,置于4℃去離子水中透析24 h,獲得Dex膠束溶液。將制得的Dex膠束溶液用水稀釋至1 mg/ml,用Zeta Sizer-Nano ZS90納米粒度儀測定其粒徑、多分散系數(PDI)、Zeta電位,再取適量于透射電鏡下觀察Dex膠束形態。
2.2 臨界膠束濃度(CMC)的測定
采用芘熒光探針法測定Dex膠束的CMC。按“2.1”項下方法制備1~10-4mg/ml的Dex膠束溶液,使其每個質量濃度溶液中芘的終濃度為1.0×10-7mol/L,超聲0.5 h,室溫下避光放置24 h。測定各溶液372 nm波長處的峰(I372)與383 nm波長處的峰(I383),其中激發波長(Ex)390 nm,Ex狹縫3 nm,發射波長(Em)狹縫3 nm,計算I383/I372。以I383/I372(y)為縱坐標、膠束濃度對數值(lgc,x)為橫坐標,用Origin 8.0軟件按照Boltzmann公式[18]進行曲線擬合。
2.3 Dex的含量測定方法
2.3.1 色譜條件 色譜柱:Diamonsil C18(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相:乙腈-水(60∶40,V/V),流速:1 ml/min;柱溫:35℃;檢測波長:240 nm;進樣量:20 μl。
2.3.2 專屬性試驗 分別取空白乙腈溶液、Dex溶液、Dex膠束溶液,按“2.3.1”項下色譜條件進樣測定,記錄色譜。
2.3.3 標準曲線的制備 精密稱取Dex 10 g,加乙腈溶液溶解并定容制成1 g/ml貯備液。精密量取上述貯備液適量,用乙腈溶液稀釋至質量濃度1、5、10、25、50、100、150、200 mg/ml后按“2.3.1”項下色譜條件進樣測定,以峰面積(A)對質量濃度(c)進行線性回歸分析。
2.3.4 精密度試驗 取質量濃度55 mg/ml的Dex溶液,按“2.3.1”項下色譜條件進樣測定,重復進樣6次,考察精密度。
2.3.5 回收率試驗 精密吸取不同濃度的Dex溶液于量瓶中,按“2.1”項下方法制備成5、50、200 mg/ml的Dex膠束溶液,按“2.3.1”項下色譜條件進樣測定峰面積,計算回收率和RSD。
2.4 載藥量和包封率的測定
固定γ-PGA的量,將Dex與γ-PGA以1∶5和1∶10投料,溶于適量的DMSO中制得Dex膠束溶液,然后加入3倍量的乙腈溶液,13 500 r/min(離心半徑25 cm)離心10 min,取上清液,按“2.3.1”項下色譜條件進樣測定游離Dex含量。計算載藥量(DL)和包封率(EE),DL(%)=(Dex投入量-游離Dex的量)/ Dex膠束的量×100%,EE(%)=(Dex投入量-游離Dex的量)/Dex投入量×100%。
2.5 體外釋放特性的考察
取Dex適量,加入DMSO-生理鹽水(3∶8)溶液制成1 mg/ml的Dex溶液。取Dex溶液和“2.1”項下制備的Dex膠束溶液各0.5 ml,分別置于透析袋中,密封后,放入裝有25 ml pH 5.5或7.4的PBS釋放介質的圓底燒瓶中,于37℃下100 r/min恒溫水浴振蕩孵育,于1、2、4、8、16、32、48、60、72 h時吸出各燒瓶中釋放介質300 μl,同時補加等量新鮮釋放介質至燒瓶中。按照“2.3”項下方法測定釋放介質中Dex的含量并作圖。
2.6 細胞存活率的測定
取生長狀態良好的A549細胞,采用0.25%胰酶消化后,再用相應的培養基制成單個細胞懸液,調整密度為1×104個/ml,接種于96孔板,每孔體積為200 μl,待細胞長至80%左右時再進行MTT試驗。分別用無血清無雙抗培養基制備陽性對照溶液(含0.05、0.1、0.2、0.5、1.0 μmol/ml的潑尼松龍)、游離Dex溶液(0.05、0.1、0.2、0.5、1.0 μmol/ml)、γ-PGA溶液(0.05、0.1、0.2、0.5、1.0 μmol/ml)和Dex膠束溶液(0.05、0.1、0.2、0.5、1.0 μmol/ml),并用0.22 μm濾膜過濾除菌。然后分別加入至接種有A549細胞的96孔板中,每個濃度設5個復孔,另設陰性對照孔(加入培養基和細胞,不加藥物)和空白孔(只加培養基,不加細胞和藥物),置于37℃、5%CO2下培養24 h。吸出孔內液體,PBS洗滌3次,加入180 μl培養基和20 μl MTT液(5 mg/ml),再繼續培養4 h。取出培養板并吸出上清液,再加入DMSO 150 μl,最后將培養板置于37℃下振搖15 min,使結晶物甲瓚充分溶解后,于酶聯免疫檢測儀上570 nm波長處測定各孔的吸光度(A),計算細胞存活率[(A加藥孔-A空白孔)/(A陰性對照孔-A空白孔)×100%][19]。
2.7 細胞攝取量的測定
將1×104個/ml的A549細胞接種于96孔板,待細胞貼壁80%左右時進行細胞攝取試驗。吸出培養皿中的培養基,加入4℃或37℃預熱的含相同濃度(0.5 μmol/ml)的Dex膠束溶液或Dex溶液,設3個復孔,分別于4℃或37℃孵育1 h。吸出含有Dex膠束或游離Dex的培養基,用PBS洗滌3次,用0.25%胰酶消化細胞后,吸取細胞懸液入1.5 ml的EP管中,5 000 r/min(離心半徑15 cm)離心10 min,收集細胞沉淀,并用0.5 ml的RIPA細胞裂解液裂解細胞15 min,取20 μl用二喹啉甲酸(BCA)法測定蛋白含量。然后再取其中500 μl,加入乙腈沉淀蛋白,13 500 r/min(離心半徑25 cm)離心10 min,取上清液20 μl進樣,測定Dex含量。
3.1 Dex膠束的粒徑、PDI、Zeta電位
所制備的Dex膠束呈圓球形、形態規則,粒徑為(76.25± 3.74)nm,PDI為0.163±0.38,Zeta電位為5.0 mV。Dex膠束的透射電鏡圖見圖1,粒徑和Zeta電位分布見圖2。
3.2 Dex膠束的CMC
I383/I372-lgc的曲線圖見圖3。
由圖3可知,曲線方程為y=(A1-A2)/[1+e(x-x0)/dx]+A2,式中,A1為低濃度下的I383/I372(1.926 4),A2為高濃度下的I383/I372(1.037 8),x0是曲線突變中點(-2.118 4),dχ=0.525 8。由于χ0/dχ<10,χ0就是CMC的對數值[20],即CMC=10-2.1184mg/ml=0.007 609 mg/ml=7.609 μg/ml。

圖1 Dex膠束的透射電鏡圖Fig 1 TEM of Dex micelles

圖2 Dex膠束的粒徑和Zeta電位分布Fig 2 Particle size and Zeta potential of Dex micelles

圖3 I383/I372-lgc的曲線圖Fig 3 Curves for I383/I372-lgc
3.3 Dex的含量
在“2.3.1”項色譜條件下,Dex溶液和Dex膠束溶液的出峰時間一致,均為5.0 min,且空白乙腈溶液不干擾Dex的含量測定。Dex檢測質量濃度的線性范圍為1~200 mg/ml,回歸方程為A=7.549c+25.676(r=0.999 7);精密度試驗的RSD=0.82%(n=6);平均回收率為98.42%(RSD=0.93%,n=9)。色譜圖見圖4。

圖4 高效液相色譜圖Fig 4 HPLC chromatograms
3.4 Dex膠束的DL和EE
不同Dex和γ-PGA投料比對DL無顯著影響,但對EE的影響較大。當投料比例從1∶5減小到1∶10時,EE從35%增大到89.25%,因此選擇Dex和γ-PGA的投料比為1∶10。按此比例制備的3批Dex膠束的DL為(9.56±0.92)%,EE為(89.25± 1.36)%。
3.5 體外釋藥特性
Dex在pH 5.5、7.4的PBS中48 h內的累積釋放度均達到100%;Dex膠束在pH 5.5的PBS中48 h內的累積釋放度僅為87.65%,而在pH 7.4的PBS中48 h的累積釋放度為85.19%,在兩種PBS中72 h內的累積釋放度才達到100%。由此可見,在相同的時間點Dex膠束在兩種釋放介質中的累積釋放度均低于Dex的累積釋放度,說明以γ-PGA包載Dex并制備成膠束后,可延長Dex的釋藥時間。Dex和Dex膠束在pH 5.5、7.4的介質中的釋放曲線見圖5。

圖5 Dex和Dex膠束在pH 5.5、7.4的介質中的釋放曲線(n=3)Fig 5 Release curves of Dex and Dex micelles under pH 5.5 and 7.4(n=3)
3.6 細胞存活率
游離Dex、γ-PGA、Dex膠束和潑尼松龍在0.05~0.2 μmol/ ml濃度范圍內對A549細胞的存活率均無明顯影響(P>0.05)。在0.5、1.0 μmol/ml時,Dex膠束作用下細胞存活率明顯低于游離Dex或潑尼松龍(P<0.05)。不同濃度游離Dex、γ-PGA、Dex膠束和潑尼松龍對A549細胞存活率的影響見圖6。

圖6 不同濃度游離Dex、γ-PGA、Dex膠束和潑尼松龍對A549細胞存活率的影響(n=5)Fig 6 Effects of different concentrations of free Dex,γ-PGA,Dex micelles and prednisolone on survival rate ofA549 cells(n=5)
3.7 細胞攝取量
4℃下,A549細胞對Dex膠束和游離Dex的攝取量差異無統計學意義(P>0.05);37℃下,A549細胞對游離Dex膠束的攝取量明顯高于游離Dex和4℃下的游離Dex、Dex膠束(P<0.05)。A549細胞對游離Dex和Dex膠束的攝取結果見圖7。

圖7 A549細胞對游離Dex和Dex膠束的攝取結果(n=3)Fig 7 Uptake of A549 cells to free Dex and Dex micelles(n=3)
本研究中體外釋放結果顯示,γ-PGA與Dex形成膠束后,增加了Dex的水溶性,而且延緩了Dex的釋放,增強了其在局部細胞的滯留時間。在進一步的MTT試驗中,證明在低劑量時,游離Dex和Dex膠束對A549細胞均無顯著抑制作用(P>0.05);而在高劑量時游離Dex和Dex膠束均表現出對A549細胞的抑制作用和毒性,Dex膠束的抑制作用顯著強于游離Dex(P<0.05)。這說明利用γ-PGA作為游離Dex的一種新型載體材料制備納米膠束,能夠顯著增強對A549細胞的抑制作用。這與體外釋放試驗結果一致,說明Dex膠束對A549細胞的顯著抑制作用是通過增強在細胞局部的滯留時間而實現的。
在體外細胞攝取試驗中發現,37℃時Dex膠束在A549細胞中的攝取量顯著高于4℃時的攝取量,而且也顯著高于37℃和4℃時游離Dex在A549細胞中的攝取量。該結果表明,Dex膠束在A549細胞中的攝取具有溫度依賴性,所以其進入細胞是依靠能量依賴性的主動靶向作用;而游離Dex的攝取不具有溫度依賴性,是被動靶向進入細胞的。
以上研究均證明,γ-PGA作為Dex的一種新型載體,可以增強Dex對A549細胞的抑制作用,提高細胞對Dex的攝取量,從而有希望發展為其他糖皮質激素類藥物的載體,為增加糖皮質激素類藥物在疾病部位的滯留作用、提高其治療效果提供研究思路。
[1] 李倩.地塞米松聯合拉米夫定治療重型乙型肝炎的近期療效觀察[J].中國藥房,2013,24(12):1 100.
[2] 王麗杰,盧煒,周田彥.地塞米松應用于腫瘤治療的研究進展[J].藥學學報,2015,50(10):1 217.
[3] 吳軍,楊秀萍.我院2013年糖皮質激素類藥物專項處方點評干預分析[J].中國藥房,2014,25(42):3 970.
[4] 馬輝,朱寶玉.地塞米松致藥品不良反應158例文獻分析[J].中國藥房,2011,22(48):4 588.
[5] 林彬,林雨婷,張羽.納洛酮聯合地塞米松對腦缺血再灌注損傷模型小鼠腦組織的保護作用[J].中國藥房,2015,26(10):1 325.
[6] 胡鈺,羅潔麗,黃艷芳.藥物利用評估方法在腫瘤科糖皮質激素類藥物使用評價中的作用[J].中國藥房,2016,27(8):1 081.
[7] Danhier F,Ansorena E,Silva JM.PLGA-based nanoparticles:an overview of biomedical applications[J].J Control Release,2012,161(2):505.
[8] Duncan R,Gaspar R.Nanomedicine(s)under the microscope[J].Molecular Pharmaceutics,2011,8(6):2 101.
[9] Crielaard BC,Rijcken CJ,Quan L,et al.Glucocorticoidloaded core-cross-linked polymeric micelles with tailorable release kinetics for targeted therapy of rheumatoid arthritis[J].Angew Chem Int Ed Engl,2012,51(29):7 254.
[10] Yuan F,Quan L,Cui L,et al.Development of macromolecular prodrug for rheumatoid arthritis[J].Adv Drug Deliv Rev,2012,64(12):1 205.
[11] Quan L,Zhang Y,Crielaard BJ,et al.Nanomedicines for inflammatory arthritis:head-to-head comparison of glucocorticoid-containing polymers,micelles,and liposomes [J].ACS Nano,2013,8(1):458.
[12] 甘李,余義義,徐蓓,等.載紫杉醇的甲氧基聚乙二醇-膽固醇膠束的研究[J].華西藥學雜志,2014,29(6):613.
[13] 高春媛,惠明,杜小波,等.γ-聚谷氨酸水凝膠制備方法和應用研究進展[J].河南科技學院學報:自然科學版,2013,41(3):24.
[14] 疏秀林,施慶珊,黃小茉,等.γ-聚谷氨酸及其衍生物在生物醫學領域中的應用[J].中國組織工程研究,2012,16(16):3 009.
[15] Yu SH,Wu SJ,Tang DW,et al.Stimuli-responsive materialsprepared from carboxymethyl chitosan and poly(γ-glutamic acid)for protein delivery[J].Carbohydr Polym,2012,87(1):531.
[16] 彭英云,張濤,繆銘,等.γ-聚谷氨酸的合成、性質和應用[J].食品與發酵工業,2012,38(6):133.
[17] Curleya AA,Eggan SM,Lazarus MS,et al.Role of glutamic acid decarboxylase 67 in regulating cortical parvalbumin and GABA membrane transporter 1 expression:implications for schizophrenia[J].Neurobiol Dis,2013,50(1):179.
[18] 萬強,楊玉萍,劉中勇.小檗堿對PM2.5誘導的血管內皮細胞損傷的抑制作用及其p38MAPK通路機制研究[J].
中國藥房,2016,27(25):3 464.
[19] Aguiar J,Carpena P,Molina-Bol?var JA,et al.On the determination of the critical micelle concentration by the pyrene 1∶3 ratio method[J].Journal of Colloid and Interface Science,2003,258(1):116.
[20] Sakai-Kato K,Nishiyama N,Kozaki M,et al.General considerations regarding the in vitro and in vivo properties of block copolymer micelle products and their evaluation[J].J Control Release,2015,210(1):76.
Preparation of Dexamethasone Nano-micelles and Study on Its in vitro Anti-tumor Effect
HOU Jierong,HOU Sikui,YANG Xin,YAO Xiaodong(Dept.of Health,Southwest Medical University,Sichuan Luzhou 646000,China)
OBJECTIVE:To prepare Dexamethasone(Dex)nano-micelles(called Dex micelles for short),and to study its in vitro anti-tumor effect.METHODS:Using γ-PGA as carrier,DMSO as organic solvent,Dex micelles were prepared by dialysis method.The morphology,particle size,Zeta potential,PDI,CMC,drug-loading amount and entrapment efficiency(EE)of micelle were observed and detected.Drug release of Dex micelles and Dex were compared under pH 5.5,7.4.The effects of free Dex,γ-PGA,Dex micelles and prednisolone(positive control)(0.05,0.1,0.2,0.5,1.0 μmol/ml)on the survival rate of human lung adenocarcinoma A549 cells were compared.The uptake amount of A549 cells to 0.5 μmol/ml Dex micelles and free Dex were compared at 4,37℃.RESULTS:Prepared Dex micelles were spheroidal and completely round with particle size of(76.25±3.74)nm,Zeta potential of 5.0 mV,PDI of 0.163±0.38,CMC of 7.609 μg/ml,drug-loading amount of(9.56±0.92)%and EE of(89.25±1.36)%.Compared with free Dex,the duration of drug release for Dex micelles prolonged under pH 5.5,7.4.When the concentration ranged 0.05-0.2 μmol/ml,the effects of free Dex,γ-PGA,Dex micelles and prednisolone on cellular survival rate had no statistically significant difference(P>0.05).When the concentration was 0.5,1.0 μmol/ml,survival rate of A549 cells treated with Dex micelles was significantly lower than that treated with free Dex or prednisolone(P<0.05).At 4℃,the uptake amount of A549 cells to Dex micelles and free Dex had no statistically significant difference(P>0.05).At 37℃,the uptake amount of A549 cells to Dex micelles was significantly higher than that of cells to free Dex,and that of A549 cells to Dex micelles and free Dex at 4℃.CONCLUSIONS:Prepared Dex micelles can prolong the duration of drug release of Dex,and decrease the survival rate of A549 cells and cellular uptake efficacy.
Dexamethasone;γ-glutamic acid;Nano-micelles;Preparation;Anti-tumor
R943
A
1001-0408(2016)31-4425-04
2016-01-29
2016-09-20)
(編輯:鄒麗娟)
四川省教育廳重點項目(No.12ZB245)
*主管中藥師,碩士。研究方向:藥物制劑工藝。E-mail:2632892465@qq.com
#通信作者:助理研究員,碩士。研究方向:醫院制劑。E-mail:114408231@qq.com
DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2016.31.31