蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素的提取及抗氧化活性

邵 穎,陳安徽,劉 輝,胡 模,趙士琛

(江蘇省食品資源開發與質量安全重點建設實驗室,徐州工程學院,江蘇徐州 221008)

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蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素的提取及抗氧化活性

邵 穎,陳安徽*,劉 輝,胡 模,趙士琛

(江蘇省食品資源開發與質量安全重點建設實驗室,徐州工程學院,江蘇徐州 221008)

在比較蛹蟲草子實體類胡蘿卜素的溶劑提取法、超聲波輔助提取法、微波輔助提取法、酸熱提取法的基礎上,對蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素的提取工藝進行了優化,并分析了類胡蘿卜素的體外抗氧化活性。實驗結果表明:酸熱提取法是幾種常見提取方法中類胡蘿卜素提取得率最高的一種方法;酸熱法最優提取工藝為:鹽酸濃度為1 mol/L,鹽酸用量為20 mL/g,酸浸時間為30 min,熱處理時間為5 min,蛹蟲草中類胡蘿卜素的得率達到1387 μg/g。抗氧化實驗結果顯示:蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素具有較好的體外抗氧化活性,在0～10 mg/mL的濃度范圍內抗氧化能力隨著類胡蘿卜素濃度的提高而增加。4 mg/mL類胡蘿卜素的DPPH自由基清除率達到96.57%,類胡蘿卜素對鐵離子螯合能力的EC50值為3.26 mg/mL,且還顯示出了較好的還原能力。

蛹蟲草,子實體,類胡蘿卜素,提取,抗氧化活性

類胡蘿卜素是一類分布廣泛的天然色素,其中β-胡蘿卜素是其中最常見的一種。β-胡蘿卜素是聯合國糧農組織和世界衛生組織食品添加劑聯合專家委員會認定的A類營養食品強化劑,攝入機體后會轉化為維生素A且不會因為過量攝入而造成維生素A的累積中毒現象[1-2];醫學研究發現β-胡蘿卜素具有抑制腫瘤形成、抗輻射的作用,并對治療口腔潰瘍、胃潰瘍、夜盲癥等疾病以及提高免疫能力均具有顯著療效,故美國藥典、歐洲藥典和英國藥典均已將β-胡蘿卜素作為藥物正式收載[3-4]。現代流行病學研究表明,類胡蘿卜素具有抗炎、抗癌、抗氧化活性,能夠降低多種癌癥、代謝綜合征、肥胖、白內障以及黃斑變性等疾病的發病率[5-6]。另有研究發現類胡蘿卜素在促進動物生長發育,提高動物繁殖能力和肌肉品質[7]及預防花粉過敏癥及過敏性皮炎等方面具有良好效果[8]。目前,類胡蘿卜素的保健功效、藥用功能及著色性能已使其在保健品、藥品、化妝品等領域應用廣泛[9]。

蛹蟲草是我國傳統的可媲美冬蟲夏草的藥食兩用真菌,具有擴張氣管、鎮靜、抗炎、降壓、抗病、抗惡性腫瘤等多種藥理活性[10-11],其子實體呈現的橙黃色即為其中所含的類胡蘿卜素所致[12-13]。目前發現的類胡蘿卜素大多為脂溶性物質,但是也有學者從蛹蟲草子實體中分離到了強水溶性類胡蘿卜素,且其含量占到蛹蟲草總類胡蘿卜素的86.7%[14]。常見的類胡蘿卜素提取方法主要有超臨界CO2萃取法、酶法、超聲波提取法、微波輔助提取法、有機溶劑提取法、高效液相色譜法等[15-16],但針對不同的提取原料提取方法會有差別。本研究對蛹蟲草中類胡蘿卜素的提取工藝進行了優化并研究了其體外抗氧化活性,為蟲草源天然保健型色素的多領域應用提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

蛹蟲草子實體 徐州工程學院發酵工程實驗室自行栽培。

丙酮 宜興市第二化學試劑廠;鹽酸 分析純,上海博河精密化學品有限公司;95%乙醇 宜興市第二化學試劑廠;1,1-二苯基-2-苦味肼基自由基(DPPH) 美國sigma公司;其它試劑如硫酸亞鐵、抗壞血酸等均為國產分析純。

電熱恒溫鼓風干燥箱 DHG-9140 上海精宏實驗設備有限公司;超聲-微波萃取儀 CW-2000 上海新拓微波溶樣科技有限公司;全波長掃描酶標儀Spectra Max M2 美國Molecular device公司;TGL-16G臺式離心機 上海安亭科學儀器廠;UV2802PC紫外-可見光分光光度計 上海精密儀器儀表有限公司;梅特勒電子天平 AE2000型 上海分析儀器廠。

1.2 實驗方法

1.2.1 蛹蟲草子實體的采收及粉碎 將成熟蛹蟲草子實體自栽種瓶中采收后直接置于40 ℃電熱恒溫鼓風干燥箱中烘干,并用高速粉碎機粉碎過40目篩,蛹蟲草子實體粉存放于密封袋中避光保存備用。

1.2.2 類胡蘿卜素含量測定 參照王陶等[17]的方法并改進。

將提取液適當稀釋后,測定溶液453 nm處吸光度,按下式計算類胡蘿卜素含量:

類胡蘿卜素含量(μg/g)=(Amax×V×D)/(0.16×W)

式中:Amax-453 nm波長處吸光值;V-提取溶劑的用量,mL;D-測定試樣稀釋倍數;0.16-類胡蘿卜素克分子消光系數;W-蛹蟲草樣品干質量,g。

1.2.3 類胡蘿卜素的提取方法選擇

1.2.3.1 有機溶劑浸提法 準確稱取1.000 g蛹蟲草粉末7份,每份分別各加20 mL丙酮、甲醇、乙醇、乙酸乙酯、乙醚、石油醚、氯仿于室溫條件下避光震蕩60 min后于5000 r/min離心10 min,取上清液。上清液適當稀釋測定稀釋液于453 nm處的吸光值并計算類胡蘿卜素的含量。每個處理重復3次。

1.2.3.2 微波輔助提取法 參照張志軍[18]的方法并改進。準確稱取1.000 g蛹蟲草粉末加20 mL丙酮于微波功率200 W時處理3 min,然后于室溫條件下避光震蕩30 min后于5000 r/min離心10 min,取上清液。上清液適當稀釋后測453 nm處吸光值并計算類胡蘿卜素的含量。每個處理重復3次。

1.2.3.3 酸熱處理提取法 準確稱取1.000 g蛹蟲草粉末用10 mL濃度1 mol/L的鹽酸浸泡40 min,然后于沸水浴中處理4 min,迅速冷卻并于5000 r/min離心10 min,用蒸餾水洗滌沉淀2次,殘渣加20 mL丙酮,室溫避光條件下震蕩30 min后于5000 r/min 條件下離心10 min,取上清液。上清液經適當稀釋后測定453 nm處吸光值并計算類胡蘿卜素的含量。實驗重復3次平行。

1.2.3.4 超聲波輔助提取法 參照張志軍[18]的方法并改進。準確稱取1.000 g蛹蟲草粉末加20 mL丙酮浸提,超聲功率200 W,超聲處理30 min后于5000 r/min離心10 min,取上清液。上清液經適當稀釋后測定453 nm處的吸光值并計算類胡蘿卜素的含量。實驗重復3次平行。

1.2.4 類胡蘿卜素酸熱提取法的優化

1.2.4.1 鹽酸濃度的選擇 準確稱取1 g蛹蟲草粉末5份(每份設置3個重復),分別于10 mL濃度為0.1、0.5、1.0、1.5、2.0 mol/L的鹽酸中浸提40 min,然后于沸水浴中處理4 min,迅速冷卻并于5000 r/min離心10 min,用蒸餾水洗滌沉淀2次,殘渣加20 mL丙酮,室溫避光條件下震蕩30 min后于5000 r/min條件下離心10 min,取上清液,經適當稀釋后測定453 nm處吸光值并計算類胡蘿卜素的含量。

1.2.4.2 鹽酸用量的選擇 準確稱取1 g蛹蟲草粉末5份(每份設置3個重復),分別用5、10、15、20、25 mL濃度為0.5 mol/L的鹽酸浸提40 min,然后于沸水浴中處理4 min,迅速冷卻并于5000 r/min離心10 min,用蒸餾水洗滌沉淀2次,殘渣加20 mL丙酮,室溫避光條件下震蕩30 min后于5000 r/min條件下離心10 min,取上清液,經適當稀釋后測定453 nm處吸光值并計算類胡蘿卜素的含量。

1.2.4.3 鹽酸浸提時間的選擇 準確稱取1 g蛹蟲草粉末5份(每份設置3個重復),分別用15 mL濃度為0.5 mol/L的鹽酸分別浸提10、20、30、40、50 min,然后于沸水浴中處理4 min,迅速冷卻并于5000 r/min離心10 min,用蒸餾水洗滌沉淀2次,殘渣加20 mL丙酮,室溫避光條件下震蕩30 min后于5000 r/min條件下離心10 min,取上清液,經適當稀釋后測定453 nm處吸光值并計算類胡蘿卜素的含量。

1.2.4.4 熱處理時間的選擇 準確稱取1 g蛹蟲草粉末5份(每份設置3個重復),分別用15 mL濃度為0.5 mol/L的鹽酸分別浸提30 min,然后于沸水浴中分別處理0、2、4、6、8 min,迅速冷卻并于5000 r/min離心10 min,用蒸餾水洗滌沉淀2次,殘渣加20 mL丙酮,室溫避光條件下震蕩30 min后于5000 r/min條件下離心10 min,取上清液,經適當稀釋后測定453 nm處吸光值并計算類胡蘿卜素的含量。

1.2.4.5 酸熱提取法正交實驗 在單因素實驗的基礎上,設計L9(34)正交實驗方案以確定最佳酸熱提取工藝。因素水平表見表1。

表1 酸熱法正交實驗設計方案

Table 1 The factors and levels of orthogonal test of heat acid method

水平因素A鹽酸濃度(mol/L)B鹽酸用量(mL)C酸浸時間(min)D熱處理時間(min)102510253205153043120355

1.2.5 類胡蘿卜素的抗氧化活性

表2 溶劑對類胡蘿卜素提取率的影響

Table 2 The effect of different solvent on extraction of carotenoids

有機溶劑丙酮甲醇乙醇乙醚石油醚乙酸乙酯氯仿類胡蘿卜素含量(μg/g)25017±103--13596±23716480±0747245±20922792±180

注:-表示未檢測到類胡蘿卜素。

表3 幾種常見提取方法的比較

Table 3 Comparison result of common extraction methods

提取方法有機溶劑法微波提取法酸熱提取法超聲波法色素含量(μg/g)24867±273c29024±681d128995±936a30328±405b

注:a、b、c、d表示四種提取方法在95%置信度下的顯著水平分析。1.2.5.1 DPPH自由基清除活性分析 參照Wu[19],將類胡蘿卜素稀釋至不同的質量濃度,制備成樣品溶液。分別量取各樣品溶液樣液1.5 mL,加入1.5 mL含0.2 mmol/L DPPH的95%(v/v)乙醇,搖晃均勻,置于常溫,遮光處理30 min,再于波長517 nm處檢測它的吸光度值。

清除率計算公式如下:

清除率(%)=[1-(Ai-Aj)/Ac]×100

式中:Ac-為對照組吸光度,1.5 mL蒸餾水加1.5 mL含0.2 mmol/L DPPH的95%乙醇;Ai-為樣品組吸光度,1.5 mL樣品液加1.5 mL含0.2 mmol/L DPPH的95%乙醇;Aj-為空白組吸光度,1.5 mL樣品液加1.5 mL 95%乙醇。

1.2.5.2 鐵離子螯合能力的測定 參照武守華等的文獻[20]。量取2 mL各質量濃度的樣液,加入0.1 mL 5 mmol/L的氯化亞鐵,然后再加入0.2 mL 5 mmol/L Ferrozine,混勻,然后在室溫下靜置10 min,然后加入相同體積的去離子水并在562 nm下檢測吸光度。以去離子水作空白調零。吸光值越低代表鰲合能力越好。去離子水為空白對照,陽性對照是EDTA。

按如下公式計算各濃度樣液鐵離子的鰲合能力:

鐵離子鰲合能力(%)=[(A0-A1)/A0]×100

式中:A0-空白對照的吸光度;A1-加有樣液或者EDTA后的吸光度。

1.2.5.3 還原力的測定 采用Oyaizu[21]的文獻中所提的方法。量取不同質量濃度的樣液2 mL,加入2 mL 0.2 mol/L磷酸緩沖液(pH6.6),再加入2 mL 1%(w/w)的鐵氰化鉀溶液,震蕩,50 ℃水浴20 min后加入10%(w/w)的TCA溶液2 mL,混勻后以3000 r/min離心10 min。離心后,取2 mL的上清液,再加2 mL去離子水和0.4 mL 0.1%(w/w)的FeCl3溶液,震蕩,50 ℃熱水浴下保持溫度10 min,當液體由黃變成藍時,在700 nm下檢測其吸光度,則其還原能力隨其樣品吸光度變化。空白對照用去離子水替代樣液,VC作為陽性對照。

1.3 數據處理方法

采用DPS7.05版軟件對實驗結果進行統計分析,所有數據均采用均值±標準差表示。

2 結果與分析

2.1 類胡蘿卜素提取溶劑的確定

選取7種有機溶劑按照1.2.3.1的方法提取蛹蟲草子實體中的類胡蘿卜素,結果如表2所示。

由實驗結果可知,供試的7種有機溶劑中,丙酮最有利于類胡蘿卜素的提取,其次是氯仿。類胡蘿卜素在不同極性的溶劑中溶解性能不同,所以使用不同的溶劑提取類胡蘿卜素其得率會不同。類胡蘿卜素為脂溶性成分,所以非極性溶劑的提取效果要優于極性溶劑。雖有報道顯示蛹蟲草子實體中存在水溶性類胡蘿卜素,但在本實驗條件下使用甲醇、乙醇等極性溶劑并未提取到類胡蘿卜素。所以,后續實驗中選擇提取效果最優的丙酮作為類胡蘿卜素的提取溶劑。

2.2 提取方法的選擇

以蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素的提取率為指標,比較了幾種常見提取方法的提取效果以選擇較優的提取方法。具體的實驗結果見表3。

由表3的實驗結果可知,酸熱提取法更有利于蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素的提取,含量達到1289.95±9.36 μg/g,顯著高于其他三種供試方法(p<0.05)。酸熱法有效提取類胡蘿卜素的原因可能是鹽酸及沸水后的冷卻處理可有效破壞蛹蟲草的細胞壁結構,使得胞內物質得以溶出。超聲波和微波輔助提取方法雖然工藝簡單并且可以節約提取時間,不會破壞提取物的活性,但其提取效率太低。所以本研究選擇酸熱法作為最優提取方法。

2.3 酸熱提取工藝的優化

2.3.1 單因素實驗

2.3.1.1 鹽酸濃度的確定 按照1.2.4.1的方法進行實驗以考察鹽酸濃度對類胡蘿卜素提取的影響。具體的實驗結果如圖1所示。

圖1的實驗結果顯示,當鹽酸濃度為0.5 mol/L時,蛹蟲草中類胡蘿卜素的提取量達到1333.67±6.65μg/g,顯著高于其他濃度下的提取量。隨著鹽酸濃度的提高,類胡蘿卜素的提取量卻明顯下降。所以,本實驗條件下選擇鹽酸的濃度為0.5 mol/L。

圖1 鹽酸濃度對類胡蘿卜素含量的影響Fig.1 Effect of concentration of hydrochloric acidon the content of carotenoids

2.3.1.2 鹽酸用量的確定 按照1.2.4.2的方法考察了鹽酸用量對類胡蘿卜素提取的影響。具體的實驗結果如圖2所示。

圖2 鹽酸用量對類胡蘿卜素含量的影響Fig.2 Effect of volume of hydrochloric acidon the content of carotenoids

圖2的實驗結果顯示,隨著鹽酸用量的增加蛹蟲草中類胡蘿卜素的提取量呈現緩慢增加的趨勢,直至鹽酸的用量達到15 mL。隨后,類胡蘿卜素的提取量隨著鹽酸用量的增加而明顯下降。所以,鹽酸的最佳用量為15 mL。

2.3.1.3 鹽酸浸提時間的確定 在鹽酸濃度和用量確定的基礎上,考察了鹽酸浸提時間對蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素提取的影響。具體的實驗結果如圖3所示。

圖3 鹽酸浸提時間對類胡蘿卜素含量的影響Fig.3 Effect of immerse time of hydrochloric acidon the content of carotenoids

圖4 熱處理時間對類胡蘿卜素提取的影響Fig.4 Effect of heat treatment timeon the content of carotenoids

由圖3可知,隨著鹽酸浸提時間的延長,蛹蟲草中類胡蘿卜素的提取量逐漸增加,但浸提時間超過30 min,類胡蘿卜素的提取量卻顯著降低。可能是因為類胡蘿卜素自蛹蟲草子實體中被提取出來之后較長時間地暴露于空氣中被氧化所致。所以本研究選擇鹽酸浸提的最優時間為30 min。

2.3.1.4 熱處理時間的確定 按照1.2.4.4的方法考察了熱處理時間對類胡蘿卜素提取的影響。實驗結果見圖4。

由圖4可知,蛹蟲草經鹽酸浸提后,浸提液于沸水中處理時間的長短會影響到類胡蘿卜素的提取效果。浸提液在沸水中處理4 min時提取出的類胡蘿卜素的含量最高,熱處理時間超過4 min提取率顯著降低。所以,最佳熱處理時間為4 min。

2.3.2 酸熱提取法正交實驗結果 在單因素實驗的基礎上對酸熱提取法進行正交實驗以優化類胡蘿卜素的最佳提取工藝。正交實驗結果如表4所示。

表4 正交實驗結果

Table 4 Result of orthogonal test

實驗號A鹽酸濃度(mol/L)B鹽酸用量(mL)C酸浸時間(min)D熱處理時間(min)色素含量(μg/g)11111957212221135313331283421231251522311176623121214731321198832131365933211322Ⅰ/31125000113533311786671151667Ⅱ/31213667122533312360001182333Ⅲ/31295000127300012190001299667R17000013766757333148000

由表4可知:影響酸熱法提取結果的主次因素為A>D>B>C,即鹽酸濃度>熱處理時間>鹽酸用量>酸浸時間;最優條件組合為A3B3C2D3,即鹽酸濃度1 mol/L、鹽酸用量20 mL/g、酸浸時間30 min、熱處理時間5 min,在此條件下進行驗證實驗,蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素提取量為1387μg/g,高于正交實驗結果。

2.3.3 蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素的抗氧化活性

2.3.3.1 DPPH自由基清除活性 蛹蟲草子實體中提取的類胡蘿卜素的DPPH自由基清除活性如圖5所示。

圖5 蛹蟲草中類胡蘿卜素對DPPH自由基清除率的影響Fig.5 Effect of carotenoids from Cordyceps Militarieson DPPH scavenging rate

由圖5可知,蛹蟲草子實體中提取出的類胡蘿卜素對DPPH自由基具有明顯的清除活性。在一定的濃度范圍內,DPPH自由基清除活性隨著類胡蘿卜素濃度的提高而增強,當類胡蘿卜素濃度為4 mg/mL時,清除率達到96.57%。隨后,自由基清除率卻隨著樣品濃度的提高而呈現緩慢下降的趨勢。

2.3.3.2 鐵離子螯合能力 鐵離子螯合能力是抗氧化活性評價的重要指標之一。蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素的鐵離子螯合能力實驗結果如圖6所示。

圖6 蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素對鐵離子的螯合作用Fig.6 Chelating ability of carotenoids on iron ions

由圖6可知,鐵離子螯合能力隨著樣品濃度的增加而增加。當類胡蘿卜素濃度為4 mg/mL時,鐵離子螯合率已達到69.25%,隨后螯合率隨著樣品濃度的增加呈現緩慢上升的趨勢。經數據統計分析發現,蛹蟲草中提取出的類胡蘿卜素對鐵離子螯合能力的EC50值為3.26 mg/mL。說明蛹蟲草中類胡蘿卜素具有較好的鐵離子螯合能力,但低于陽性對照EDTA對鐵離子的螯合效果。

2.3.3.3 還原力 還原力是一個表明化合物潛在抗氧化活性的重要指標。還原力越強,抗氧化活性越強。

由圖7可以看出,在測定的樣品質量濃度范圍內,蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素的還原能力隨著樣品濃度的增加而增加。當類胡蘿卜素濃度為10 mg/mL,吸光度達到0.4712,且還原力曲線還呈現緩慢上升的趨勢,說明類胡蘿卜素具有一定的還原能力。但效果明顯沒有陽性對照VC好。

圖7 蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素的還原力Fig.7 Reducing power of carotenoidsfrom the fruiting body of Cordyceps Militaries

3 結論與討論

研究了蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素的提取工藝。通過比較幾種常見的類胡蘿卜素的提取方法對蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素的提取效果,發現酸熱法顯著優于其他提取方法。采用正交實驗法優化了酸熱法提取工藝,其最佳提取條件為:每g蛹蟲草添加濃度為1 mol/L鹽酸20 mL浸提30 min后于沸水中熱處理5 min,浸提液迅速冷卻后于5000 r/min條件下離心10 min取殘渣,殘渣使用蒸餾水洗滌2次后添加20 mL丙酮,室溫避光條件下震蕩30 min后于5000 r/min條件下離心10 min。在此提取工藝下,蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素提取量達到1387 μg/g。同樣采用酸熱法對蛹蟲草子實體中的類胡蘿卜素進行提取,陳銀岳[22]等人提取的類胡蘿卜素的平均得率僅為986.05 μg/g,而張志軍[18]等人的提取得率卻高達2158 μg/g,本研究條件下的類胡蘿卜素得率介于二者之間。分析其中的原因可能是由于蛹蟲草自身種質的差別,子實體中自身含有的類胡蘿卜素含量間的差別造成的,因為不同來源、不同種的蛹蟲草中含有的活性成分的種類及含量之間會存在一定的差異。值得對不同區域范圍、不同種質資源、不同培養條件下的人工子實體、野生蛹蟲草子實體中的類胡蘿卜素含量進行系統分析。

以DPPH自由基清除能力、鐵離子螯合能力及還原能力為指標對蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素進行了體外抗氧化活性檢測。蛹蟲草子實體中類胡蘿卜素在特定的濃度范圍內其抗氧化能力隨其濃度的提高而增加。當類胡蘿卜素濃度為4 mg/mL時,對濃度為0.2 mmol/L DPPH的清除率達到96.57%,類胡蘿卜素對鐵離子螯合能力的EC50值為3.26 mg/mL,且本實驗條件提取的蛹蟲草源類胡蘿卜素還顯示了較好的還原能力。

本研究從蛹蟲草子實體中提取出的類胡蘿卜素是具有抗氧化活性的蟲草源色素,可以作為天然抗氧化型保健色素被廣泛應用,具有巨大的應用前景。

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Optimization of extraction process and antioxidant activity of carotenoids from fruiting body ofCordycepsMilitaris

SHAO Ying,CHEN An-hui*,LIU Hui,HU Mo,ZHAO Shi-chen

(Jiangsu Key Construction Laboratory of Food Resource Development and Quality Safe, Xuzhou Institute of Technology,Xuzhou 221008,China)

OrthogonalexperimentwasusedtooptimizetheextractionprocessofcarotenoidsfromthefruitingbodyofCordyceps Militarisbasedonthecomparisonresultsofsolventextractionmethod,ultrasonicassistedextractionmethod,microwaveassistedextractionmethodandacidheatextractionmethod,andtheantioxidantactivityofcarotenoidswasalsodetected.Theexperimentresultsshowedthattheacidthermalmethodwasbetterthanotherextractionmethods,andtheoptimalextractingconditionsofacidthermalmethodwere:theconcentrationofhydrochloricacidof1mol/mL,theusageofhydrochloricacidof20mLpergramfruitingbody,timeofdigestionof30min,timeofthermaltreatmentof5min.Theyieldofcarotenoidsreachedto1387μg/g.Anti-oxidationexperimentresultsshowedthatcarotenoidsfromfruitingbodyofCordyceps Militarishadbetterantioxidantabilityandtheabilitywasincreasedwithhigherconcentrations.Atconcentrationof4mg/mL,thecarotenoidscoulddecrease96.57%ofDPPHradicalsandvalueofEC50oftheChelatingabilityonironionswas3.26mg/mL.Inaddition,thecarotenoidsofCordyceps Militarisalsorevealedbetterreducingcapacity.

Cordyceps Militaris;fruitingbody;carotenoids;extraction;antioxidantactivity

2016-03-01

邵穎(1979-)，女，博士，副教授，研究方向：微生物資源的開發與應用，E-mail：shyzhbo2005@126.com。

*通訊作者:陳安徽(1979-)，男，博士，副教授，研究方向：應用微生物學，E-mail:chenah201@163.com。

江蘇省科技計劃項目(BN2015012)；江蘇省高校自然科學研究重大專項(15KJA180008)聯合資助。

TS202.3

B

1002-0306(2016)19-0221-06

10.13386/j.issn1002-0306.2016.19.035